核内基因直接注射是有效的有丝分裂后细胞转染技术。此方法提供从单个或多个基因结构的外源蛋白的表达水平高,使蛋白质的功能与生理有关环境的各种单细胞分析研究。
主神经元细胞培养,都是宝贵的工具来研究蛋白质的功能,因为它们代表了永生细胞株的生物学相关的系统相比。然而,初级神经元的有丝分裂后的性质,防止有效的外源蛋白的表达,使用常用的程序,如电或化学介导的转染。因此,必须采用其他技术,以有效地在这些非分裂细胞中表达的蛋白质。
在这篇文章中,我们描述了执行分离成人交感神经元核内注射基因结构所需的步骤。这种技术已经应用到不同类型的神经元,可以成功地诱导外源蛋白的表达。为显微注射过程中所必需的设备包括一个可视化的细胞,注射玻璃吸管充满cDNA的解决方案, 连接到一个N 2(G)的压力传递系统,一个显微的倒置显微镜。显微坐标与弹出吸管尖端的cDNA解决方案的一个简短的脉冲加压N 2注射微量注射吸管的议案。
这种技术没有相关的毒性与许多其他的转染方法,使多个DNA结构是一致的比例来表示。注射细胞的数量很少,使得非常适合,如单细胞电生理记录和光学成像研究的显微注射过程,但未必需要大量的细胞和转染效率较高的生化分析的理想选择。虽然细胞核内microinjections需要时间和设备的投资,有关生理环境的能力,实现外源蛋白的表达水平高,使得这种技术非常有用的工具来研究蛋白质的功能。
遇到的常见问题和建议:
如前所述,成功的核注射依赖于组织培养板的细胞粘附。推迟注射开始后,细胞分离程序的几个小时,使神经元坚持的菜肴底部。此外,0.1毫克/毫升的超高分子量聚- L -赖氨酸(Sigma公司,圣路易斯,密苏里州)艾滋病神经元的菜肴底部表面的粘附涂层的菜肴。
显微注射吸管堵塞,尤其是当试图注入高浓度的DNA,可以是一个经常出现的问题。使用高品质分离柱分离和纯化质粒DNA,并提到(旋转过滤器,血细胞比容管纺丝)执行额外的净化步骤,可以帮助到注射前去除颗粒。在注射剂,“干净”的压力,喷油器的功能可以使用(0.2秒就足够了),但如果不解决这个问题,一个新的注射吸管,应使用。如果大多数显微注射吸管成为堵塞注射会议期间,考虑改变玻璃吸管拉马的设置,以生产具有较大的开放显微注射吸管提示。
在核注射产生的另一个问题是组织培养皿的底部表面的不平衡。这种差异直接影响定位精度注射吸管的小窍门到细胞核内,在注射吸管穿越以来的深度是固定的。因此,Z轴的限制,在注射在同一盘过程中必须调整。这将是明显的调整是必要的:不会有核注的迹象(没有细胞核或细胞是完全错过的白色羽),或注射吸管尖接近底部的菜(压缩单元甚至轰然到吸管尖盘底部)。在神经元的电镀玻璃克隆气瓶(外径10毫米,猫号2090-01010,Bellco玻璃,葡萄园,新泽西州),可用于限制在一个较小,多局限于区域,因此,最大限度地减少需要移动的距离之间的注射剂注射吸管。这些克隆气瓶被删除之前执行microinjections。
技巧的缺点:
核内microinjections技术要求高,这需要耐心和手巧由运营商的高度。这种技术的熟练程度,与任何其他技能一样,是与实践。因此,建议尝试实际的实验之前,记者基因的核注射单独练习。为了进一步协助注射过程中,它可能会巩固到计算机程序中的显微操纵器和高压注射器的步骤。伊戈尔临(WaveMetrics,奥斯威戈湖,或),如程序可以利用存储显微注射的设置和程序注射过程半自动化多功能控制器(ShuttlePro,外形设计,温德姆,NH)(见6,7,8细节)。
核内显微注射技术的另一个缺点是成功率很低。企图核注射约为10-20%,导致蛋白的表达。虽然这种效率可能是足够的应用程序,不需要大量表达的细胞,例如电,各种生化分析,这可能不足以的。
应用技术:
尽管它的缺点,细胞核内的DNA显微注射法是一个极为有用的方法,为异源表达蛋白在神经元。
蛋白的表达水平高,是实现核microinjections因为大量的过程中释放到细胞核内注射,一个高度活跃的CMV启动子调节基因的转录,并在细胞核中的质粒的长期稳定的质粒。蛋白质的过度表达显性负的外源蛋白的高层次需要压倒的内源性蛋白的实验,尤其是在有用的。核内注射的另一个优点是能够提供一致的基因结构比例注入到细胞核内,当多个构造的。与其他转染方法,是很难再现介绍每个DNA相同的比例,构建成不同的细胞在同一盘之间的转染。细胞核的cDNA溶液直接注入消除这种变异的来源,并允许有效滴度表达的蛋白质的比例。
传统的转染方法在有丝分裂后细胞的成效有限,因为DNA 的细胞核9转REAG化学毒性低纳入经济需求测试10。核microinjections克服这些问题,通过引入到细胞核内的遗传物质机械。虽然更多地参与,这种技术是研究蛋白质功能的生物系统的影响的能力,完成与内源性信号通路,多费力这项技术的性质进行补偿。
所有实验动物的程序进行,按照与美国国立健康的动物护理和使用指南研究院。
我们的实验室研究是由美国国立卫生研究院院内研究计划,国家酒精滥用和酒精中毒研究所的支持。
Material Name | Tipo | Company | Catalogue Number | Comment |
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Ultrafree-MC Filter Unit | Millipore | UFC30VV00 | Durapore PVDF filter; 0.1 μm pore-size | |
TE buffer | Quality Biological, Inc | 351-010-131 | 10 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 8.0 | |
Micro-hematocrit capillary tubes | Fisher Scientific | 22-362-574 | Unheparinized Preparation: Soak in 100% ethanol overnight. Wash thoroughly with deionized water three times and dry bake glass in an oven (95°C). Cut the cleaned hematocrit tubes into 3-4 cm length pieces using a diamond-tipped scriber, and seal one end closed with a flame and forceps to hold the glass. Store in a clean glass beaker and cover to prevent dust build-up. |
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Microcentrifuge | Eppendorf | 5417 R | With a fixed angle or swinging-bucket rotor | |
Microloader 20 μl pipet tips | Eppendorf | 5242 956.003 | ||
Microinjection capillary glass | World Precision Instruments | TW120F-4 | Thin-walled with filament, 1.2 mm outer-diameter, 0.9 mm inner-diameter, 100 mm length | |
Flaming/Brown Micropipette Puller | Sutter Instrument Co. | P-97 | With platinum-iridium box filament (part # FB330B) | |
Nikon Diaphot TMD Inverted Microscope | Nikon | 20x and 40x phase-contrast objective lenses, mounted on a vibration isolation table | ||
Charge-coupled device (CCD) camera | Cohu Inc. | 6410 | ||
Video monitor | Sony Corporation | PVM-122 | Black and White, 9” screen | |
Micromanipulator system | Eppendorf | 5171 | ||
Microinjection Unit | Eppendorf | FemtoJet Express | ||
Microinjection controller | Contour Design | S-PROV2 | Programmable multimedia controller | |
Igor Pro | WaveMetrics | Version 4.05A | Command program to control the microinjection controller written by S. Ikeda |