Questo protocollo descrive in dettaglio una procedura chirurgica per l’esecuzione della chirurgia del midollo spinale e per l’impianto e il fissaggio di un gambo ottico sopra il midollo spinale nei roditori.
La neuromodulazione può fornire applicazioni diagnostiche, modulatorie e terapeutiche. Mentre un ampio lavoro è stato condotto nel cervello, la modulazione del midollo spinale rimane relativamente inesplorata. Il tessuto del midollo spinale, intrinsecamente delicato e mobile, impone vincoli che rendono difficile l’impianto preciso delle sonde neurali. Nonostante i recenti progressi nei dispositivi di neuromodulazione, in particolare nella bioelettronica flessibile, le opportunità di espanderne l’uso nel midollo spinale sono state limitate dalle complessità chirurgiche dell’impianto di dispositivi. In questo caso, forniamo una serie di protocolli chirurgici su misura per l’impianto di un dispositivo optoelettronico su misura che si interfaccia con il midollo spinale nei roditori. I passaggi per posizionare e ancorare un gambo ottico su un segmento specifico del midollo spinale tramite due diversi metodi di impianto chirurgico sono descritti in dettaglio qui. Questi metodi sono ottimizzati per una vasta gamma di dispositivi e applicazioni, che possono richiedere o meno il contatto diretto con il midollo spinale per la stimolazione ottica. Per chiarire la metodologia, si fa riferimento all’anatomia vertebrale per identificare i punti di riferimento prominenti prima di eseguire un’incisione cutanea. Vengono dimostrati i passaggi chirurgici per fissare un gambo ottico sopra il rachide cervicale nei roditori. Vengono quindi delineate le procedure per fissare il dispositivo optoelettronico collegato al gambo ottico in uno spazio sottocutaneo lontano dal midollo spinale, riducendo al minimo il contatto diretto non necessario. Gli studi comportamentali che confrontano gli animali che hanno ricevuto gli impianti con quelli sottoposti a interventi chirurgici fittizi indicano che i gambi ottici non hanno influenzato negativamente la funzione degli arti posteriori o anteriori sette giorni dopo l’impianto. Il presente lavoro amplia il kit di strumenti di neuromodulazione per l’uso in studi futuri volti a studiare vari interventi del midollo spinale.
Il midollo spinale facilita una serie di funzioni essenziali del sistema nervoso centrale, dal coordinamento dei comportamenti motori alla regolazione dei processi omeostatici come la respirazione 1,2. Per chiarire il ruolo della sofisticata rete di circuiti attraverso il midollo spinale sono necessarie interfacce, sia per la stimolazione elettrica, la registrazione, la somministrazione di farmaci o la stimolazione ottica in aree mirate 3,4,5,6. Sebbene siano stati sviluppati dispositivi per consentire tali interrogatori 7,8,9,10,11, sono necessarie tecniche chirurgiche specializzate per il loro impianto cronico nel midollo spinale4. In particolare, il midollo spinale e le vertebre associate hanno una maggiore suscettibilità alle deformazioni meccaniche causate da movimenti naturali come l’estensione e la flessione 8,12,13. Queste caratteristiche uniche del midollo spinale rendono intrinsecamente difficile garantire che le sonde impiantate rimangano stabili, funzionali e fissate in un segmento specifico per lunghi periodi di tempo.
In questo articolo, viene descritto un protocollo chirurgico per l’inserimento e il fissaggio di un gambo ottico in un segmento mirato del midollo spinale (Figura 1A). Poiché è stato dimostrato che l’interfacciamento con la regione cervicale in particolare introduce sfide uniche9, le fasi di impianto sono specificamente dimostrate sulla regione cervicale C5. Si ipotizza che la complessità del rachide cervicale derivi dal suo posizionamento più profondo e dall’abbondanza di muscolatura, una caratteristica non così prominente lungo il resto del midollo spinale. Indipendentemente da ciò, le procedure descritte in questo protocollo sono progettate per essere adattabili per interventi chirurgici in varie regioni del midollo spinale. Vengono fornite istruzioni dettagliate per localizzare e identificare i segmenti del midollo spinale utilizzando “punti di riferimento” anatomici pronunciati identificabili da sopra la pelle (Figura 1B). Il protocollo chiarisce quindi due tecniche per l’impianto chirurgico: una su misura per le sonde che richiedono il contatto diretto con il midollo spinale e un’altra per le sonde che potrebbero non richiedere il contatto diretto. I passaggi descritti sono progettati per essere riprodotti da qualsiasi ricercatore con formazione in chirurgia della sopravvivenza dei roditori.
Questo protocollo comprende istruzioni dettagliate per l’impianto di un dispositivo optoelettronico (18 mm x 13 mm) con un gambo ottico flessibile attaccato sopra il livello cervicale C5. Il dispositivo impiantabile è fissato per via sottocutanea caudale a C5 ed è costituito da un indicatore a diodo a emissione di luce (μLED) su microscala, che si illumina quando si verifica la stimolazione ottica del midollo spinale, fornendo un feedback in tempo reale della funzionalità del dispositivo. L’effetto del gambo ottico impiantato sulla funzione motoria naturale è stato valutato su roditori che avevano ricevuto impianti ed è stato confrontato con roditori con interventi chirurgici fittizi. I risultati indicano che le sonde non influenzano negativamente la naturale funzione degli arti posteriori e anteriori dell’animale sette giorni dopo l’impianto.
La neuromodulazione e gli interventi terapeutici del midollo spinale richiedono spesso il posizionamento di sonde in segmenti precisi e mirati 3,4,7,13. Data la mobilità intrinseca del midollo spinale, la sonda deve essere fissata in modo affidabile per consentire studi cronici. In base all’applicazione specifica, può essere importante controllare se la sonda è a contatto fisico con il midollo spinale o se il contatto può essere ridotto per ridurre la risposta infiammatoria del tessuto quando possibile. Pertanto, vengono descritte le fasi chirurgiche per ciascuna delle due metodiche. Il protocollo descrive in dettaglio come posizionare una sonda nel segmento cervicale del midollo spinale a C5. Tuttavia, utilizzando il punto di riferimento descritto per T2 o T10 del midollo spinale, la sonda può essere posizionata in modo simile in una posizione precisa sopra la regione toracica o lombare contando le vertebre da T2 o T10, rispettivamente, una volta che sono state esposte. Inoltre, per ridurre al minimo i danni al tessuto del midollo spinale, abbiamo fissato il corpo del dispositivo, che è spesso più grande e più rigido rispetto alla sonda collegata, in uno spazio sottocutaneo lontano dal midollo spinale.
Ci sono alcuni punti critici per l’impianto del dispositivo accoppiato alla sonda. Innanzitutto, è fondamentale decidere la posizione del corpo del dispositivo prima di cementare la sonda. Ciò garantisce che la distanza tra la punta della sonda e il corpo del dispositivo sia ottimizzata per ridurre la tensione sulla sonda ed evitare di avere una lunghezza extra della sonda, che può, ad esempio, causare la torsione o lo spostamento della sonda. In sostanza, l’obiettivo è garantire che la lunghezza della sonda sia simile alla distanza tra lo spazio sottocutaneo in cui è posizionato il corpo del dispositivo e la regione del midollo spinale mirata in cui è cementata la sonda. Eseguendo procedure di chirurgia terminale in cui vengono testate varie lunghezze della sonda, è possibile determinare la dimensione ottimale per un segmento mirato.
Per mantenere la sterilità, il dispositivo deve essere maneggiato con cura per evitare il contatto con lo strato esterno della pelle durante l’inserimento nella tasca sottocutanea. Tale contatto può compromettere la sterilità del dispositivo, portando potenzialmente a infezioni post-operatorie. Inoltre, è importante ridurre al minimo la quantità di forza applicata al dispositivo quando lo si tiene con una pinza per evitare di danneggiarne il rivestimento, che in genere è un sottile strato protettivo, isolante e sterile 20,21. La rimozione del rivestimento può ridurre drasticamente la durata del dispositivo, ad esempio, accorciando il circuito, causando scosse elettriche all’animale e/o provocando una risposta infiammatoria nel corpo. Maneggiare il dispositivo con una pinza a punta in plastica può aiutare a ridurre tali complicazioni.
Quando si sutura il dispositivo sui tessuti molli, è importante evitare di suturare il tessuto adiposo sottocutaneo. Come osservato nelle prove preliminari, gli strati di grasso non sono un punto di ancoraggio affidabile per le suture poiché sono inclini a rompersi. Invece, il corpo del dispositivo è stato suturato a uno strato muscolare adiacente nello spazio sottocutaneo utilizzando suture non assorbibili per il posizionamento permanente del dispositivo nel corpo. D’altra parte, quando si fissa la sonda ai processi spinosi, è importante assicurarsi che il sito a cui viene fissata la sonda sia asciutto prima di applicare il cemento. L’osso/sonda bagnati prolunga il tempo di polimerizzazione e può causare il completo fallimento del processo.
Ci sono alcune considerazioni critiche associate a un dispositivo impiantabile che devono essere affrontate con attenzione prima dell’intervento chirurgico di impianto. (1) Le parti elettricamente attive del dispositivo devono essere incapsulate da uno strato isolante di passivazione. Qualsiasi deprivazione nello strato passivante potrebbe causare un guasto funzionale del dispositivo. (2) L’impiantabile deve essere accuratamente sterilizzato secondo il protocollo animale della struttura. (3) La giunzione tra il dispositivo e le sonde neurali o i gambi stimolatori deve essere formata in modo sicuro. La connessione subirà sollecitazioni meccaniche ripetibili dovute ai costanti movimenti degli animali. (4) Le sonde neurali o i gambi stimolatori attaccati al dispositivo devono essere sufficientemente flessibili ed estensibili da evitare che si spezzino in vari punti.
Il protocollo descritto può essere esteso a dispositivi impiantabili in modelli animali di diverse dimensioni. Dopo aver identificato i punti di riferimento anatomici, i metodi chirurgici descritti possono essere metodicamente personalizzati per fissare eventuali sonde neurali o stinchi stimolatori su segmenti mirati del midollo spinale e impiantare i moduli di controllo associati. Tuttavia, a seconda dell’applicazione, dispositivi diversi possono avere dimensioni, materiali e spessori diversi da quello impiantato in questa carta; Ad esempio, i dispositivi collegati a un modulo di controllo esterno richiedono ulteriori considerazioni. Inoltre, va notato che mentre questo protocollo è adattato per la stimolazione optogenetica, altre applicazioni neuromodulatorie, come la somministrazione di farmaci o la stimolazione/registrazione elettrica, richiedono procedure chirurgiche leggermente diverse. In particolare, queste applicazioni richiedono l’impianto subdurale per garantire il contatto diretto con il midollo spinale sotto la dura madre7. Tuttavia, per l’optogenetica, il contatto intimo con il tessuto è in genere non necessario perché la dura madre del roditore non ostacola in modo significativo la penetrazione della luce, il che consente di posizionare le sorgenti luminose per via epidurale10.
The authors have nothing to disclose.
S.S. è parzialmente finanziato da una borsa di dottorato quadriennale dell’Università della British Columbia. A.M. è parzialmente supportato da una borsa di studio per laureati canadesi – Master del Canadian Institute of Health Research (CIHR). D.S. riconosce il finanziamento del Michael Smith Health Research British Columbia Scholar Award. Questo lavoro è stato parzialmente finanziato dal New Frontiers in Research Fund – Transformation del governo canadese (NFRFT-2020-00238). Lo schema nella Figura 1 è stato generato utilizzando Biorender.com e il modello 3D è stato ottenuto con l’autorizzazione di sketchfab.com.
Adson Forceps | Fine Science Tools | 11027-12 | |
Alm 3 Point Retractor | Fine Science Tools | 17010-10 | |
Buprenorphine / Vetergesic | CDMV | 124918 | Manufacturer provides at 0.3 mg/mL but must be diluted to 0.03 mg/kg for use in rats |
Chlorhexidine 2% Solution | Partnar | PCH-020 | |
Curved Long Hemostat Forceps | KaamKaaj Tools | 14.5 | Curved Long Hemostat Forceps with A Stainless Steel Ratchet Locking Tweezer |
CVD Parylene Machine: SCS Labcoter 2 | Specialty Coating Systems | PDS 2010 | |
Dental Cement – Catalyst | Parkell, Inc | S371 | |
Dental Cement – Metabond | Parkell, Inc | S398 | |
Dental Cement – Powder | Parkell, Inc | S396 | |
Forceps with Replaceable Plastic Tips | Fine Science Tools | 11980-13 | |
Friedman-Pearson Rongeurs | Fine Science Tools | 16121-14 | |
Isoflurane USP | Fresenius Kabi | CP0406V2 | Provided at 5% for induction and 2% for mainentance through precision vaporizer |
Isopropyl Alcohol 70% | McKesson | 350600 | |
Lacri-Lube Sterile Eye Ointment | Refresh | ||
Long Evans Rats | Charles River Laboratories | 6 | |
Low temperature solder paste | Chip Quik Inc. | 11.38 | |
Magnets | Radial Magnets, Inc. | 0.53 | Magnet Neodymium Iron Boron (NdFeB) N35 (3.00 mm x 1.00 mm) |
Olsen-Hegar Needle Holders with Suture Cutters | Fine Science Tools | 12002-12 | |
PDMS: SYLGARD 184 | Sigma Aldrich | 761036 | |
Scalpel Blades – #15 | Fine Science Tools | 10015-00 | |
Scalpel Handle – #3 | Fine Science Tools | 10003-12 | |
Solder flux | Chip Quik Inc. | 14.25 | |
Stereotaxic Frame | David Kopf Instruments | Model 900 | |
Sterile Kwik-Sil Adhesive | World Precision Instruments | KWIK-SIL-S | |
UV Flashlight | Vansky | 19.99 | |
Wireless Charger | Nilkin | NKT06 | |
Wireless Charging coil | TDK Corporation | WT202012-15F2-ID |
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