Summary

Gemodificeerde Langendorff-perfusie voor verlengde perfusietijden van harttransplantaten van knaagdieren

Published: June 14, 2024
doi:

Summary

Dit artikel toont de haalbaarheid aan van het bereiken van langere perfusietijden (4 uur) van muizenharttransplantaten zonder functieverlies door tijdens Langendorff een lagere (30-35 mmHg) dan fysiologische (60-80 mmHg) perfusiedruk te gebruiken.

Abstract

Ondanks belangrijke vooruitgang in de diagnose en behandeling van hart- en vaatziekten (HVZ), heeft het veld dringend behoefte aan meer onderzoek en wetenschappelijke vooruitgang. Als gevolg hiervan kan innovatie, verbetering en/of herbestemming van de beschikbare onderzoekstoolset verbeterde testbeds bieden voor de vooruitgang van onderzoek. Langendorff-perfusie is een uiterst waardevolle onderzoekstechniek voor het gebied van CVD-onderzoek die kan worden aangepast om aan een breed scala aan experimentele behoeften te voldoen. Dit maatwerk kan worden bereikt door een groot aantal perfusieparameters te personaliseren, waaronder perfusiedruk, debiet, perfusaat, temperatuur, enz. Dit protocol demonstreert de veelzijdigheid van Langendorff-perfusie en de haalbaarheid van het bereiken van langere perfusietijden (4 uur) zonder verlies van transplantaatfunctie door gebruik te maken van lagere perfusiedrukken (30-35 mmHg). Het bereiken van langere perfusietijden zonder transplantaatschade en/of functieverlies veroorzaakt door de techniek zelf heeft het potentieel om verstorende elementen uit experimentele resultaten te elimineren. In wetenschappelijke omstandigheden waar langere perfusietijden relevant zijn voor de experimentele behoeften (d.w.z. medicamenteuze behandelingen, immunologische responsanalyse, genbewerking, transplantaatbehoud, enz.), kan een lagere perfusiedruk de sleutel zijn tot wetenschappelijk succes.

Introduction

Op het gebied van cardiovasculair onderzoek is belangrijke vooruitgang geboekt in de diagnose en behandeling van hart- en vaatziekten (HVZ’s). Ondanks de algemene daling van de incidentie- en sterftecijfers blijven hart- en vaatziekten echter wereldwijd de belangrijkste doodsoorzaak 1,2. Dit alarmerende feit benadrukt de noodzaak van meer onderzoek en wetenschappelijke vooruitgang, die ongetwijfeld afhankelijk is van de nauwkeurigheid en voorspelbaarheid van de beschikbare onderzoeksinstrumenten. Als gevolg hiervan is er een constante behoefte aan innovatie, verbetering en/of herbestemming van de onderzoekstoolset. Bijvoorbeeld, retrograde of Langendorff-hartperfusie, een techniek die al meer dan een eeuw beschikbaar is voor het veld, kan gemakkelijk worden aangepast om een groter scala aan wetenschappelijke behoeften te dekken en een breder scala aan toepassingen te bereiken.

De isolatie van het harttransplantaat van de rest van het organisme tijdens de Langendorff-perfusie biedt een belangrijke mate van controle over een breed scala aan experimentele parameters, waaronder temperatuur, circulerende oplossing, coronaire perfusiedruk, enz.3,4,5,6,7. De manipulatie van deze parameters vergemakkelijkt de simulatie van een groot aantal cardiale scenario’s die kunnen worden gebruikt om de wetenschappelijke vooruitgang te bevorderen 5,8,9,10. Van deze parameters is de perfusiedruk waarschijnlijk de meest over het hoofd geziene experimentele instelling11.

Tijdens Langendorff vertoont de perfusiedruk een directe correlatie met de hartslag, de systolische/diastolische piekdruk en het zuurstofverbruik11. Deze correlatie biedt directe en nauwkeurige controle over de hoeveelheid werk die door de harttransplantaten wordt geproduceerd, die kan worden aangepast om aan individuele experimentele behoeften te voldoen. Ondanks deze waardevolle controlecapaciteit is het veld van oudsher aangetrokken tot het gebruik van hogere perfusiedrukken (60-80 mmHg), waardoor alle harttransplantaten aan een hoge werkvraag worden onderworpen, ongeacht de experimentele behoeften 8,12,13,14,15. De gevolgen van deze onnodig hoge vraag naar werk komen voort uit het overkoepelende principe dat overwerk de neiging heeft om voortijdig falen te veroorzaken. Dit lijkt met name het geval te zijn voor harttransplantaten die via Langendorff zijn doorbloed, aangezien de niet-fysiologische aard van deze methode en het gebrek aan herstelondersteuning die in vivo aanwezig is, het falen van het transplantaat lijken te verergeren. Dit voortijdige verlies van de transplantaatfunctie beperkt de perfusie en experimentele tijden aanzienlijk. In omstandigheden waarin langere perfusietijden relevanter zijn voor de experimentele behoeften (d.w.z. medicamenteuze behandelingen, immunologische responsanalyse, genbewerking, transplantaatbehoud, enz.), kan in feite minder hartwerk worden geboden in ruil voor een grotere duurzaamheid van het transplantaat.

Dit protocol toont de haalbaarheid aan van het gebruik van lagere perfusiedrukken (30-35 mmHg) tijdens Langendorff, evenals het significante effect dat deze vormen voor de harttransplantaatfunctie in de loop van de tijd in vergelijking met hogere perfusiedrukken (60-80 mmHg). Bovendien benadrukken de bevindingen in dit manuscript het belang van het prioriteren van de aanpassing van het brede scala aan perfusieparameters om beter aan de experimentele behoeften te voldoen.

Protocol

Deze studie wordt uitgevoerd in navolging van het Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van het Massachusetts General Hospital. 1. Systeem ontwerp Monteer het systeem met de drie dubbelwandige componenten, waaronder een bellenvanger, een reservoir, een oxygenator, een peristaltische pomp en een watercirculatiepomp. Bevestig alle dubbelwandige componenten aan één clamp standaard. Verbind de componenten achtereenvolgens met siliconenslangen in twee verschillende volgordes (Figuur 1A).Sequentie 1 – Stromingspatroon van water door de mantel (ononderbroken lijnen in figuur 1A):Sluit de uitstroom van de watercirculatiepomp aan op de bodeminlaat van de bellenopvangmantel met behulp van 36 G-slangen. Dit garandeert dat het perfusaat op de juiste temperatuur (37 °C) wordt gehouden voordat het het hart bereikt, omdat het water warmte verliest terwijl het door de andere componenten van het systeem reist. Sluit de bovenste inlaat van de bellenvangmantel aan op de onderste inlaat van de reservoirmantel met behulp van slangen van dezelfde maat. Sluit vervolgens de bovenste inlaat van de reservoirmantel aan op de onderste inlaat van de oxygenatormantel. Sluit ten slotte de bovenste inlaat van de oxygenator aan op de instroom van de watercirculatiepomp. Sequentie 2 – Stromingspatroon van het perfusaat door het systeem (stippellijnen in figuur 1A)Bevestig de luer-connectoren aan beide zijden van de 16 G-slang. Bevestig het eerste uiteinde aan de bodem van het reservoir en voer het door de peristaltische pompkop. Sluit het andere uiteinde aan op een van de inlaten van de siliconenspoel in de oxygenator. Sluit een tweede stuk 16 G-slang, voorzien van luer-lock-connectoren aan beide uiteinden, bij de tweede inlaat van de siliconenspoel van de oxygenator aan op de inlaat in de bellenvanger met het lange uitsteeksel. Sluit een korter stuk 16 G-slang, voorzien van luer-connectoren, aan op de ongebruikte uitlaat van de bellenvanger op een drieweg luer-lock-klep. Verbind aan de andere kant van de driewegklep een stuk slang van 16 G met een tweede luer-klep aan het andere uiteinde. Deze tweede klep ligt direct boven het reservoir. Sluit de andere kant van het ventiel aan op meer 16 G-slangen, gevolgd door de druksensor. Sluit een buis met een kleinere diameter ( ̃3,7 mm) aan op de verticale poort van de driewegklep met een connector op de canule (14 G angiocath). Het perfusaat stroomt van het reservoir naar de oxygenator door de bellenvanger voordat het via de aortacanuleverbinding terug in het reservoir circuleert. 2. Bereiding van perfusaat Bereid basisperfusaat, 0,96% Krebs-Henseleit Buffer, 9,915 mM Dextran, 25 mM Natriumbicarbonaat, 1,054 mM Bovine Serum Albumine, 1% Pen-streptokokken, 0,13% insuline, 0,02% Hydrocortison, 0,5% Heparine en 2,75 mM calciumchloride en breng op volume met gedestilleerd water. 3. Instelling van het perfusiesysteem Sluit twee spuiten van 10 ml aan op de ventilatieopeningen aan de boven- en zijkant van de bellenvanger. Voeg het basisperfusaat (75 ml) toe aan het reservoir. Zet de slangenpomp aan en stel de watercirculatiepomp in op 37 °C. Sluit een zuurstofleiding (95% O2 en 5% CO2) aan op de derde inlaat in de oxygenator en oxygeneer het perfusaat tot een minimum pO2 van 400 mmHg. Bevestig een injectiepoort aan de verticale poort van de driewegklep direct voorbij de bellenvanger. Sluit een gevleugelde infuusnaald met een spuit van 1 ml aan op de injectiepoort (gebruikt voor bemonstering). Tik zachtjes op de injectiepoort of zuig perfusaat op met de spuit van 1 ml om eventuele luchtbellen die in het circuit zijn gekomen te verwijderen. Zodra het basisperfusaat op temperatuur en zuurstofniveau is, voert u een eerste meting van de biochemische parameters uit om de juiste ionenconcentratie (tabel 1) en de juiste oxygenatie te garanderen.OPMERKING: De ionen- en pH-waarden moeten worden afgelezen nadat de oplossing op temperatuur is gebracht (37 °C) en is geoxygeneerd met het juiste gasmengsel (95% O2, 5% CO2). Zet de druksensor op nul door de aangesloten buis los te klemmen en laat de perfusaatstroom door de open sensor en de canule in evenwicht komen. Eenmaal in evenwicht, drukt u op de nulknop in de sensorbox en klemt u de slang opnieuw vast. Registreer de basisdruk voordat het hart aan het systeem wordt gehecht voor stromen van 1 ml/min tot 15 ml/min. Lage druk perfusieAdenosine infuus: Maak een eerste voorraad van 20 mM adenosine in het basisperfusaat. Los de adenosine op door de tube in een warmwaterbad te plaatsen en te mengen door inversie. Verdun de voorraad adenosine verder tot een afstemming van 0,06 mg/ml in basisperfusaat en voeg dit toe aan een spuit van 50 ml. Bevestig een gevleugelde infuusnaald aan de spuit van 50 ml en sluit deze aan op de injectiepoort in het driewegventiel. Bevestig de spuit aan een spuitpomp en stel deze in op een infusiesnelheid van 166,6 μl/min.OPMERKING: Er komen luchtbellen vrij uit de infuuspoort door lichtjes op de poort te tikken of te tikken. Hoge druk perfusie:Isolatie van verpakte rode bloedcellen (pRBC’s):Verzamel 10-12 ml volledig rattenbloed via een hartpunctie van een donorrat. Centrifugeer het bloed op 2000 x g gedurende 10 minuten. Verwijder de plasma- en buffy-vachtlaag via pipetteren. Resuspendeer de pRBC’s in perfusaat zonder calciumchloride in een verhouding van 1:1 (bijv. 5 ml pRBC’s: 5 ml perfusaat) door inversiemenging. Herhaal de stappen 3.8.1.2-3.8.1.4 twee keer voor in totaal 3 wasbeurten. Na de laatste wasbeurt resuspendeert u de cellen in perfusaat in een verhouding van 1:1 en voegt u het mengsel toe aan het perfusiesysteem, dat al de 75 ml basisperfusaat bevat. Laat de cellen gelijkmatig door het systeem verdelen en meet de hematocriet van het perfusaat met behulp van een hematologiemachine. De hematocriet varieert van 5%-7%. 4. Voorbereiding van de verkrijging van een harttransplantaat Bereid het perfusiesysteem volledig voor voordat de verkrijging begint om de tijd van koude ischemie te minimaliseren. Bereid de chirurgische instrumenten voor. Chirurgische instrumenten zijn onder meer blauwe pads, chirurgische tape, zijden 5-0 hechtingen, wattenstaafjes, zoutoplossingspuiten (50 ml en 10 ml), operatieschaar, pincet, microschaar, micropincet, Halstead-klem, 30 U heparine, 16 G-slang voor portaalspoeling, 14 G-slang voor kanulatie van het hart, 16 G angiocath, gemodificeerde 14 G angiocath met manchet, druksensor, IJsemmer met ijs, 47 mm Petrischaaltje, gaas. Maak een aangepaste canule door een dunne ring van slangen (binnendiameter [ID] 0,167 mm, buitendiameter [OD] 2,42 mm) op de 14 G-canule te plaatsen, waardoor een mancheteffect ontstaat.Verwijder de naald van de canule en doe een druppel secondelijm onder de ring. Schuif de ring voorzichtig tot 1/4 inch boven de basis van de canule. Laat de lijm drogen voor gebruik. Knip de canule schuin zo dicht mogelijk bij de manchet af en verwijder scherpe randen. Vul een spuit van 60 ml met gehepariniseerde zoutoplossing (0,03 E/ml) voor poortaderspoeling. Sluit de spuit aan op de druksensor, gevolgd door de 16 G-spoelslang. Sluit een spuit van 10 ml gehepariniseerde zoutoplossing (0,03 E/ml) aan op de 14 G-slang. Sluit het andere uiteinde van de buis aan op de aortacanule en spoel deze door om eventuele luchtbellen te verwijderen. Plaats de aortacanule in een petrischaaltje van 47 mm met gaas en gevuld met zoutoplossing. Laat het petrischaaltje op ijs staan totdat het hart is aangesloten op het perfusiesysteem. 5. Verkrijging van harttransplantaat Verdoof de ratten in een verdovingskamer met 3% isofluraan. Zodra reflexen niet worden opgemerkt, verwijdert u de rat uit de kamer, plaatst u deze in de operatiekamer en dient u continu isofluraan (3%) toe via een gezichtsmasker. Na de teenknijptest hepariniseert u het dier via de penisader met 30 U heparine. Scheer de rat over de hele buik en de bovenkant van de borst. Verwijder de vachtkrullen uit het operatieveld. Plak elk ledemaat vast om ervoor te zorgen dat er tijdens de operatie geen beweging is. Maak een horizontale incisie in de middellijn in de huid van de onderbuik, waarbij de buikspieren bloot komen te liggen. Maak een tweede horizontale incisie in de buikspieren, waarbij de inwendige organen bloot komen te liggen. Onthul het borstbeen, zet het vast met een hemostaat en trek het craniaal terug om de lever en poortader bloot te leggen. Annuleer de poortader met behulp van een angiocath van 16 gauge. Bevestig de spuit van 60 ml met gehepariniseerde zoutoplossing aan de angiocath en maak een incisie in de inferieure vena cava en abdominale aorta voor ontluchting. Spoel de volledige hoeveelheid zoutoplossing door de poortader.OPMERKING: De spoeldruk moet rond de 10 mmHg blijven. Maak een horizontale snede in het middenrif, gevolgd door een proximale snede door de ribben aan beide zijden van het borstbeen om de borstholte te onthullen. Haal het hart uit de holte en leg het direct op de petrischaal met zoutoplossing op ijs. Identificeer de aortaboog, klem met hemostaten en leg de dalende aorta bloot door eventueel achtergebleven bindweefsel te reinigen. Maak een horizontale snede halverwege de dalende aorta en cannuleer met de 14 G angiocath.NOTITIE: Breek de aortaklep niet met de canule. Zet de canule vast via een hechting boven de manchet en laat de hemostaat los. Laat het hart op ijs liggen totdat het in het perfusiesysteem wordt geplaatst. 6. Initiatie van perfusie Stel het debiet van de slangenpomp in op 1,0 ml/min.OPMERKING: De aortacanule wordt altijd in een hoek van 90° ten opzichte van het hart gehanteerd om te voorkomen dat er belletjes in de kransslagaders terechtkomen (Figuur 1B). Weeg het hart met de canule voordat u het hart op het systeem bevestigt.OPMERKING: De aortacanule moet volledig vrij zijn van luchtbellen. Sluit de canule aan op de connector in het systeem en start een timer. Zodra het hart volledig is samengetrokken, verhoogt u de stroom met stappen van 0,2 ml/min terwijl u de druk nauwlettend in de gaten houdt. Stop met het verhogen van het debiet wanneer de gewenste druk is bereikt of totdat een minimum van 3.5 ml/min is bereikt.Lage druk perfusieGebruik voor drukken tussen 30-35 mmHg een debiet van 4,5 ml/min. Start de pomp van de adenosinespuit. Perfusie onder hoge drukGebruik voor drukken tussen 70-80 mmHg een minimaal debiet van 5.0 ml/min. Start de pomp van de adenosinespuit. 7. Intraventriculaire ballon: Bevestig een kleine (50 μL) latexballon aan een ballonkatheter (2 mm diameter, 15 cm lang) met een taps toelopende punt (1,4 mm diameter). Sluit de katheter aan op een druksensor via een luer lock-connector en bevestig de hele opstelling aan een clampstandaard. Vul de ballon/katheter/druksensor met ongeveer 200 μL zoutoplossing via een spuit die aan het bovenste uiteinde van de druksensor is bevestigd en verwijder luchtbellen uit de sensor, katheter en ballon. Kalibreer de druksensor met behulp van een bloeddrukmeter. Maak een kleine horizontale incisie boven het linker atrium. Laat de ballon leeglopen door de spuit aan de bovenkant van de druksensor af te trekken en in de linker ventrikel te plaatsen. Start gegevensverzameling en blaas de ballon op totdat de diastolische druk 0 mmHg aangeeft. 8. Bemonstering Verzamel hartslag, aortastroom en coronaire druk na de eerste 20 minuten perfusie en daarna elk uur. 9. Einde/opruimen Aan het einde van de perfusie verwijdert u het hart uit het systeem en weegt u het voor een schatting van het oedeem. Snijd de top van het hart via een omtreksnede en vries deze snel in vloeibare stikstof voor analyses na perfusie. Snijd een omtrekstuk van het hart af voor histologische beeldvorming en kleuring. Gooi de rest van het hart en de canule weg. Spoel alle componenten van het systeem af door grote hoeveelheden gedeïoniseerd (DI) water aan het reservoir toe te voegen en de peristaltische pomp te laten draaien. Vang het water op in een externe emmer. Herhaal stap 9.4 twee tot drie keer. Spoel alle monsterpoorten en de slang van de druksensor grondig af. Vul het reservoir met 600 ml DI-water en 3 ml reinigingsmiddelpomp van laboratoriumkwaliteit door het hele systeem. Schakel de boiler, zuurstoftank en peristaltische pomp uit.

Representative Results

Harten van volwassen mannelijke Lewis-ratten (250-300 g lichaamsgewicht) werden geoogst en geperfundeerd bij hoge (70-80 mmHg) of lage (30-35 mmHg) perfusiedrukken (n = 3 per groep). De effecten van perfusiedruk op de algehele hartfunctie en gezondheid werden bepaald door het verzamelen van hartslag, oedeem en linkerventrikelfunctie. Er werd een duidelijke correlatie vastgesteld tussen de hartslag en de perfusiedruk (figuur 2). De hartslag was statistisch hoger in harten met hoge druk in vergelijking met harten met lage druk voor alle tijdstippen, behalve de eerste (60 min, figuur 2A,B). Interessant is dat lagedrukharten aan het begin van de perfusie een periode van aanpassing lijken te ondergaan, waarbij het ongeveer 30 minuten duurde voordat de hartslag zich stabiliseerde en de niveaus bereikte die gedurende de rest van de perfusie werden gehandhaafd (Figuur 2A). Er werd ook een groot verschil in linkerventrikelpolsdruk (LVPP) waargenomen tussen de groepen, waarbij de LVPP van hogedrukharten op elk tijdstip statistisch hoger was dan lagedrukharten (Figuur 3B). Deze aanhoudend hoge vraag naar werk resulteerde in een progressief functieverlies in hogedrukharten met een statistische afname van LVPP na 2 uur perfusie (Figuur 3A,B). Als alternatief was er geen functieverlies aanwezig in harten die met lage druk waren geperfundeerd, waarbij LVPP gedurende de perfusietijd onveranderd bleef (Figuur 3A,B). Net als bij LVPP vertoonden hogedrukharten een hogere samentrekking van de hartspier (dP/dtmax) en ontspanning (dP/dtmin) gedurende de perfusietijd in vergelijking met lagedrukharten (Figuur 3C,D). In overeenstemming hiermee ondergingen hogedrukharten een progressief verlies van contractiliteit en ontspanningsvermogen, waarbij beide parameters statistisch hoger waren 1 uur in de perfusietijd in vergelijking met het laatste uur van de perfusie. Anders waren de contractiliteit van de hartspier en het ontspanningsvermogen vergelijkbaar laag in de lagedrukgroep en bleven ze onveranderd gedurende 4 uur perfusietijd (Figuur 3C,D). Naast de functionele effecten verergert hoge perfusiedruk gedurende langere tijd ook het vasthouden van interstitiële vloeistof in de harttransplantaten, wat leidt tot oedeem. Dit oedeem werd semi-gekwantificeerd in procentuele gewichtsverandering en resulteerde in harten onder hoge druk met een statistisch hogere gewichtstoename in vergelijking met harten die bij lage druk werden geperfundeerd (Figuur 2C). Afbeelding 1: Instelling van het perfusiesysteem. (A) Algehele opstelling van de perfusie. Stippellijnen geven de volgorde weer waarin de componenten van het systeem zijn verbonden om de perfusaatcirculatie te optimaliseren. Effen, gekleurde lijnen geven de volgorde weer waarin de componenten zijn aangesloten om de perfusaattemperatuur te optimaliseren. (B) De juiste manier om het hart na canulatie te behandelen om te voorkomen dat de katheter wordt geleegd en er lucht in de kransslagaders wordt gebracht. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken. Figuur 2: Effecten van druk op hartslag en oedeem. (A) Hartslag verkregen uit de intraventriculaire ballonmetingen. De ononderbroken lijn is de mediaan van de experimentele groepen. Het gearceerde gebied is de interkwartielafstand. (B) Gebied onder de curve (AUC) van hartslaggegevens voor elk uur perfusie. (C) Percentage gewichtstoename na 4 uur perfusie bij lage en hoge druk. Alle gegevens worden uitgedrukt als mediaan ± interkwartielbereik (IQR). *p < 0,01, **p < 0,05, ***p < 0,001. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken. Figuur 3: Effecten van druk op de linkerventrikelfunctie. (A) Maximale systolische druk uitgezet in de tijd, aangeduid als linkerventrikelpolsdruk (LVPP). De ononderbroken lijn is de mediaan van de experimentele groepen. Het gearceerde gebied is de interkwartielafstand. (B) Het gebied onder de LVPP-curve (AUC) voor elk uur perfusie. (C) Contractiliteit van de hartspier, gekwantificeerd aan de hand van de maximale afgeleide van de drukpuls. (D) Ontspanning van de hartspier gekwantificeerd op basis van de minimale afgeleide van de drukpuls. Alle gegevens worden uitgedrukt als mediaan ± interkwartielafstand. *p < 0,01, **p < 0,05, ***p < 0,001, ****p < 0,0001. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken. Ion Concentratie (mmol/L) Na+  135–145 K +  <6.00 uur Ca +2  1.0–1.3 Cl –  96–106 Tabel 1: Aanvaardbaar bereik van ionenconcentratie in het perfusaat.

Discussion

Langendorff-perfusie is een uiterst buigzame techniek die een indrukwekkende aanpassing en aanpassing mogelijk maakt om aan een breed scala aan experimentele behoeften te voldoen. Dit maatwerk wordt mogelijk gemaakt door de aanzienlijke instelbaarheid van de meeste perfusieparameters, inclusief de perfusiedruk. Vanwege het retrograde karakter van Langendorff is de perfusiedruk gelijk aan de coronaire perfusiedruk, die een essentiële rol speelt in de hartfunctie. Het is bekend dat coronaire perfusiedruk (CPP) het hartwerk rechtstreeks regelt, aangezien een breed scala aan cardiale indices (d.w.z. linkerventrikeldruk, contractiliteit (dP/dtmax), wandspanning, ventriculaire stijfheid) recht evenredig is met CPP 16,17,18. Historisch gezien heeft het veld perfusiedrukken gebruikt, en in feite CPP, tussen 60 mmHg en 80 mmHg in een poging om fysiologische omstandigheden na te bootsen 5,8,15,19,20,21. Het niet-fysiologische karakter van retrograde ex vivo machineperfusie, in combinatie met de hoge vraag naar werk, leidt echter tot een overtijds verlies van de hartfunctie (figuur 3). Als alternatief vermindert een lagere perfusiedruk (30-35 mmHg), ondanks het feit dat de fysiologische omstandigheden van rattenharten in vivo niet nauwkeurig worden nagebootst, inherent de vraag naar hartarbeid en bereikt u langere perfusietijden (4 uur) zonder het functieverlies na verloop van tijd (Figuur 3), en verminderde transplantatoedeem (Figuur 2C). Het gebruik van lagere perfusiedrukken, hoewel het een afwijking van fysiologische CPP betekent, lijkt belangrijke voordelen te bieden ten opzichte van het gebruik van fysiologische perfusiedrukken, aangezien de eliminatie van bestaand techniekafhankelijk functieverlies tijdens Langendorff-perfusie de techniek verbetert tot een nauwkeuriger en voorspelbaarder modelsysteem met een aanzienlijk potentieel om cardiovasculair onderzoek vooruit te helpen. Met name de onderzoeksgebieden die baat hebben bij en/of langere perfusietijden vereisen om wetenschappelijke relevantie te bereiken (d.w.z. medicamenteuze behandelingen, immunologische responsanalyse, genbewerking, normotherme transplantaatbehoud, enz.) worden steeds belangrijker in de strijd tegen HVZ’s.

Langendorff-perfusie is onbetwistbaar een essentieel hulpmiddel op het gebied van cardiovasculair onderzoek. Daarom, naast de aanzienlijke voordelen die deze wetenschappelijke techniek biedt voor de onderzoeksgemeenschap, gaat het gepaard met een belangrijk niveau van wetenschappelijke complexiteit. In feite zijn er verschillende kritieke stappen binnen dit protocol die zorgvuldige standaardisatie vereisen, voornamelijk om schade aan het harttransplantaat vóór, tijdens en onmiddellijk na het starten van de perfusie te voorkomen. De eerste kans op transplantaatschade is onopvallend tijdens de poortaderspoeling. Deze spoeling met gehepariniseerde zoutoplossing heeft tot doel zoveel mogelijk volbloed uit het harttransplantaat te verwijderen met een dubbel doel. Ten eerste dient het als een manier van euthanasie via verbloeding. Ten tweede minimaliseert het de kans op stolling in het harttransplantaat tijdens het ophalen, canuleren en transporteren, aangezien bekend is dat volbloed van ratten extreem korte kledingtijden heeft22,23. Na honderden succesvolle hartperfusies werd echter duidelijk dat de druk die tijdens het spoelen op het rattenorganisme wordt uitgeoefend van het grootste belang is, waarbij de ideale spoeldruk rond de 10 mmHg ligt. Hogere druk bij het spoelen van de poortader lijkt te resulteren in schade aan het vaatstelsel van het harttransplantaat, wat leidt tot verhoogde vasculaire weerstand (Equation 1). Een hogere vasculaire weerstand leidt er in feite toe dat de doelperfusiedruk wordt bereikt bij lagere stroomsnelheden. Deze onbalans tussen druk en coronaire stroom wordt overgebracht in de geproduceerde linkerventrikelpolsdruk (LVPP), wat resulteert in aanzienlijke variabiliteit.

Het volgende geval van mogelijke schade aan het harttransplantaat is tijdens de verbinding van het transplantaat met het systeem via de introductie van luchtbellen in de kransslagaders. Luchtbellen kunnen gemakkelijk worden geïntroduceerd door verkeerd gebruik van het gecanuleerde hart (Figuur 1B) of door onjuiste verwijdering van luchtbellen uit het perfusiesysteem stroomopwaarts van de bellenvanger24. Vanwege de retrograde aard van deze opstelling, zal elke introductie van lucht resulteren in cardiale luchtembolie, wat leidt tot ischemische beledigingen, fibrillatie en, heel vaak, transplantaatdood. Ten slotte vindt de laatste cruciale stap om het succes van het protocol te garanderen, plaats tijdens het initiëren van de perfusie. In tegenstelling tot de overgrote meerderheid van de manuscripten die melden dat Langendorff als techniek wordt gebruikt, wordt de initiatie van perfusie in dit protocol uitgevoerd bij relatief lage stromen (1 ml/min) met stapsgewijze verhogingen (+0,2 ml/min), die volledige controle over de perfusiedruk garanderen 5,8,15,19,20,21 . Deze stapsgewijze toename van het debiet, en dus de druk, is van cruciaal belang, aangezien abrupte veranderingen in druk de vasculaire weerstand onomkeerbaar verhogen en de delicate stroming/drukbalans veranderen.

Een hoge vasculaire weerstand bij drukgecontroleerde Langendorff-perfusies heeft grote gevolgen, aangezien de doelperfusiedruk bij lagere stromen wordt bereikt en transplantaten onderdoorbloed zijn. De grote afhankelijkheid van deze perfecte balans tussen stroming en druk is waarschijnlijk de grootste beperking van dit protocol, aangezien elke eerdere transplantaatschade, opzettelijk (d.w.z. verlengde koudebehoud, warme ischemie-belediging, myocardinfarct, enz.) of onopzettelijk, leidt tot verhoogde vasculaire weerstand. In feite is dit protocol vooral nuttig voor onderzoek waarbij het experiment begint na de start van de perfusie (d.w.z. medicamenteuze behandelingen, immunologische responsanalyse, genbewerking, normotherme transplantaatbehoud, enz.) maar niet eerder. Deze beperking is een perfect voorbeeld van een Langendorff die niet voor alle doeleinden geschikt is en er moet speciale zorg worden besteed aan het aanpassen van perfusieparameters om beter aan de experimentele behoeften te voldoen.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door genereuze financiering aan S.N.T. van de Amerikaanse National Institutes of Health (K99/R00 HL1431149; R01HL157803) en de American Heart Association (18CDA34110049). We zijn ook dankbaar voor de financiering van het Amerikaanse National Institute of Health (R01DK134590; R24OD034189), National Science Foundation (EEG 1941543), Harvard Medical School Eleanor en Miles Shore Fellowship, Polsky Family Foundation, de Claflin Distinguished Scholar Award namens het MGH Executive Committee on Research en Shriners Children’s Boston (Grant #BOS-85115).

Materials

5-0 Suture Fine Scientific Tools 18020-50
14 G Angiocath Becton Dickinson 381867
16 G Angiocath Becton Dickinson 381957
24 mm Heart Chamber adaptors Radnoti 140132
Balloon Catheter  Radnoti 170423
BD Slip Tip Sterile Syringes- 10 mL Fisher Scientific 14-823-16E
BD Slip Tip Sterile Syringes- 1 mL Fisher Scientific 14-823-434
BD Slip Tip Sterile Syringes- 50 mL Fisher Scientific 14-820-11
Bovine Serum Albumin Sigma A7906
Bubble Trap Compliance Chamber Radnoti 130149
Calcium Chloride Sigma C7902
Clamp Holder United Scientic RTCLMP1
Dextran Sigma 31389
DIN8 Extension Cable Iworx SKU C-DIN-EXT
Falcon High Clarity 50 mL conical tubes Fisher Scientific 14-432-22
GSC Go Science Crazy Cast Iron Support Ring Stand Fisher Scientific S13748
Heart  Chamber Radnoti 140160
Heated Water Circulator bath Cole Parmer N/A
Heparin sodium Injection Medplus G-0409-2720-0409-2721
Hydrocortisone Solu-Cortef MGH Pharmacy
Insulin Humulin R MGH Pharmacy
Insvasive Fluid Filled Blood Pressure Sensor Iworx SKU BP-10x
Iworx Data Acquisition System Iworx IX-RA-834
Krebs-Henseleit Buffer Sigma K3753
Left Ventricular Pressure Balloon Radnoti 170404
Masterflex L/S Easy-Load II Pump Head for Precision Tubing, PPS Housing, SS Rotor VWR MFLX77200-60
Masterflex L/S Standard Digital Pump Systems VWR MFLX07551-30
Membrane Oxygenating Chamber Radnoti 130144
Penicillin-Streptomycin ThermoFisher Scientific 15140122
Polyethylene Tubing Fisher Scientific 14-170-12H
Precision Pump Tubing-16 VWR MFLX96410-16
Sodium Bicarobonate Sigma 5761
Standard PHD ULTRA CP Syringe Pump Harvard Aparatus 88-3015
Tygon Transfer Tubing VWR MFLX95702-03

References

  1. Cardiovascular Diseases (cvds). World Health Organization Available from: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/cardiovascular-diseases-(cvds) (2021)
  2. Amini, M., Zayeri, F., Salehi, M. Trend analysis of cardiovascular disease mortality, incidence, and mortality-to-incidence ratio: Results from global burden of disease study 2017. BMC Public Health. 21 (1), 401 (2021).
  3. Aune, S. E., Yeh, S. T., Zelinski, D. P., Angelos, M. G. Measurement of hydrogen peroxide and oxidant stress in a recirculating whole blood-perfused rat heart model. Resuscitation. 82 (2), 222-227 (2011).
  4. Lateef, R., Al-Masri, A., Alyahya, A. Langendorff’s isolated perfused rat heart technique: A review. Int J Basic Clin Pharmacol. 4 (6), 1314-1322 (2015).
  5. Herr, D. J., Aune, S. E., Menick, D. R. Induction and assessment of ischemia-reperfusion injury in Langendorff-perfused rat hearts. J Vis Exp. (101), e52908 (2015).
  6. Vervoorn, M., et al. Extended normothermic ex situ heart perfusion without functional decline. J Heart Lung Transplant. 43 (4), S156 (2024).
  7. Moeslund, N., et al. Ex-situ oxygenated hypothermic machine perfusion in donation after circulatory death heart transplantation following either direct procurement or in-situ normothermic regional perfusion. J Heart Lung Transplant. 42 (6), 730-740 (2023).
  8. Testai, L., Martelli, A., Cristofaro, M., Breschi, M. C., Calderone, V. Cardioprotective effects of different flavonoids against myocardial ischaemia/reperfusion injury in Langendorff-perfused rat hearts. J Pharm Pharmacol. 65 (5), 750-756 (2013).
  9. Watanabe, M., Okada, T. Langendorff perfusion method as an ex vivo model to evaluate heart function in rats. Methods Mol Biol. 1816, 107-116 (2018).
  10. Chang, X., et al. Cardioprotective effects of salidroside on myocardial ischemia-reperfusion injury in coronary artery occlusion-induced rats and Langendorff-perfused rat hearts. Int J Cardiol. 215, 532-544 (2016).
  11. Neely, J. R., Liebermeister, H., Battersby, E. J., Morgan, H. E. Effect of pressure development on oxygen consumption by isolated rat heart. Am J Physiol. 212 (4), 804-814 (1967).
  12. Matsuura, H., et al. Positive inotropic effects of atp released via the maxi-anion channel in Langendorff-perfused mouse hearts subjected to ischemia-reperfusion. Front Cell Dev Biol. 9, 597997 (2021).
  13. Louradour, J., et al. Simultaneous assessment of mechanical and electrical function in Langendorff-perfused ex-vivo mouse hearts. Front Cardiovasc Med. 10, 1293032 (2023).
  14. Ueoka, A., et al. Testosterone does not shorten action potential duration in Langendorff-perfused rabbit ventricles. Heart Rhythm. 19 (11), 1864-1871 (2022).
  15. Reichelt, M. E., Willems, L., Hack, B. A., Peart, J. N., Headrick, J. P. Cardiac and coronary function in the Langendorff-perfused mouse heart model. Exp Physiol. 94 (1), 54-70 (2009).
  16. Abel, R. M., Reis, R. L. Effects of coronary blood flow and perfusion pressure on left ventricular contractility in dogs. Circ Res. 27 (6), 961-971 (1970).
  17. Arnold, G., Morgenstern, C., Lochner, W. The autoregulation of the heart work by the coronary perfusion pressure. Pflugers Arch. 321 (1), 34-55 (1970).
  18. Iwamoto, T., Bai, X. J., Downey, H. F. Coronary perfusion related changes in myocardial contractile force and systolic ventricular stiffness. Cardiovasc Res. 28 (9), 1331-1336 (1994).
  19. Rossello, X., Hall, A. R., Bell, R. M., Yellon, D. M. Characterization of the Langendorff perfused isolated mouse heart model of global ischemia-reperfusion injury: Impact of ischemia and reperfusion length on infarct size and LDH release. J Cardiovasc Pharmacol Ther. 21 (3), 286-295 (2016).
  20. Headrick, J. P., Peart, J., Hack, B., Flood, A., Matherne, G. P. Functional properties and responses to ischaemia-reperfusion in Langendorff perfused mouse heart. Exp Physiol. 86 (6), 703-716 (2001).
  21. Noly, P. E., Naik, S., Tang, P., Lei, I. Assessment of ex vivo murine biventricular function in a Langendorff model. J Vis Exp. (190), e64384 (2022).
  22. Garcia-Manzano, A., Gonzalez-Llaven, J., Lemini, C., Rubio-Poo, C. Standardization of rat blood clotting tests with reagents used for humans. Proc West Pharmacol Soc. 44, 153-155 (2001).
  23. Lewis, J. H., Van Thiel, D. H., Hasiba, U., Spero, J. A., Gavaler, J. Comparative hematology and coagulation: Studies on rodentia (rats). Comp Biochem Physiol A Comp Physiol. 82 (1), 211-215 (1985).
  24. Motayagheni, N. Modified Langendorff technique for mouse heart cannulation: Improved heart quality and decreased risk of ischemia. MethodsX. 4, 508-512 (2017).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Cite This Article
Pendexter, C. A., Bolger-Chen, M., Lopera Higuita, M., Cronin, S. E. J., Rabi, S. A., Osho, A. A., Tessier, S. N. Modified Langendorff Perfusion for Extended Perfusion Times of Rodent Cardiac Grafts. J. Vis. Exp. (208), e66815, doi:10.3791/66815 (2024).

View Video