ファージおよびロボット工学支援による近連続進化(PRANCE)は、迅速で頑健なタンパク質進化のための技術です。ロボティクスは、実験の並列化、リアルタイムモニタリング、フィードバック制御を可能にします。
ロボティクスアクセラレーテッドエボリューション技術は、フィードバック制御を使用して進化の信頼性と速度を向上させ、タンパク質と生物の進化実験の結果を改善します。本稿では、ファージおよびロボティクス支援による近連続進化(PRANCE)の実装に必要なハードウェアとソフトウェアのセットアップガイドを紹介します。PRANCEは、ファージベースの高速分子進化と、何百もの独立したフィードバック制御進化実験を同時に実行する能力を兼ね備えています。このホワイトペーパーでは、リキッドハンドリング機器、プレートリーダー、補助ポンプ、ヒーター、3Dプリント容器など、PRANCEのハードウェア要件とセットアップについて説明します。Pythonベースのオープンソースソフトウェアと互換性を持つようにリキッドハンドリングロボットを構成する方法について説明します。最後に、新たに構築したPRANCEシステムを用いて、その能力を発揮し、多重進化を行う準備が整ったことを検証する最初の2つの実験について提案する。このガイドは、ロボット工学によって加速された進化の実施に関連する重要な機器のセットアップをナビゲートするためのハンドブックとして役立つことを目的としています。
PRANCEは、2つの強力な指向性進化技術を組み合わせたものです。1つ目はPACE1で、遺伝子の多様化と選択をM13バクテリオファージの速いライフサイクルに結びつける分子技術であり、液体ファージ培養において急速な進化のラウンドが連続的に起こることを可能にします。この選択は、進化するタンパク質の機能を、ファージの繁殖に必要なM13のテールコートタンパク質であるpIIIの発現に結合するプラスミドコード遺伝子回路の使用によって推進されます。実験レベルでは、液体ファージ培養物の連続希釈により、連続的な選択が可能になります。したがって、選択の厳格さは、ファージ培養の希釈速度を制御することにより、遺伝子回路のレベルと実験レベルの両方で調節できます。したがって、PACEは、大腸菌の所望の活性を検出してpIII発現を誘導できる分子センサーがあるあらゆる生体分子工学の課題に適用できます。アプリケーションには、タンパク質-タンパク質結合2,3,4、タンパク質-DNA結合5、タンパク質溶解度6、および多数の特定の酵素機能7の進化が含まれます。2つ目は、ロボティクスで加速された進化8,9で、フィードバックコントローラを使用して、指向性進化の2つの一般的な故障モード、つまり、環境が厳しすぎるときに発生する絶滅と、環境が緩すぎるときに発生する進化の欠如を排除します。PANCE(ファージ支援非連続進化)7,10で行われるファージの逐次継代とは異なり、ロボット工学で加速された「ほぼ連続的」進化では、培養を中期に維持する迅速なピペッティングが行われ、集団が感染と増殖の連続的なサイクルを経験することができます。これら2つの技術を併用すると、PHAGEとRobotics-assisted Near-continuous Evolution8の略でPRANCEと呼ばれ、堅牢で多重化された迅速な連続進化が可能になります。PRANCEは、ポリメラーゼ、tRNA、アミノアシルtRNA合成酵素を進化させ、それらの進化中にフィードバック制御を行い、それらの速度と信頼性を向上させるために使用されています8。
PRANCEのハードウェアとソフトウェアのセットアップには、リキッドハンドリングロボットでバクテリオファージを使用できるようにするためのいくつかの詳細があります。ロボットメーカーが提供するデフォルトのソフトウェアを使用する代わりに、Pythonベースのオープンソースソフトウェアパッケージ11を使用しており、高速な同時実行を可能にし、半連続バイオリアクターを中間対数相に維持することができます。研究者のハンズオフ時間は、デッキ上のいくつかのコンポーネントを定期的に自己滅菌することで数日に延長することができ、これはこれらのコンポーネントを漂白およびすすぐことができるポンプの自動制御によって達成されます。ファージのクロスコンタミネーションは、フォースフィットチップを使用しないリキッドハンドリングロボットを使用し、リキッドハンドリング設定を慎重に調整することで排除できます。
機器の標準化は図られていますが、実際には、機器の供給、ハードウェア、ソフトウェアのバージョン変更により、PRANCEのセットアップは毎回異なります。その結果、各PRANCEセットアップには固有のセットアップの課題があり、効果的なモジュール式トラブルシューティングのためには、各コンポーネントの目的を包括的に理解する必要があります。
この方法では、確立されたPRANCEシステムのセットアップとテストのためのステップバイステップのプロトコルについて説明します。まず、ハードウェアとソフトウェアの重要な要素に焦点を当て、次に、システムがPRANCEの準備ができていることを確認するための一連のテスト実行の準備と実施に不可欠な手順を詳しく説明します。
ハードウェアの本質的な特徴は、バクテリオファージを使用したマルチプレックス実験中のサンプルのクロスコンタミネーションのリスクを低減するための最適化です。チップの再利用に対応し、チップの強制フィットを回避することで、チップの排出時に発生するエアロゾルを最小限に抑えると考えられているロボットチップ技術を備えた、フィルターのみのチップを使用することをお勧めします。このプロトコルに従った堅牢なチップ洗浄により、チップの再利用が可能になりますが、各システムの感染テストの一環として、この妥当性を検証する必要があります。自己滅菌は、システムへの水と漂白剤の一貫した供給にも依存しています。これらはタンク/バケツに保管され、枯渇すると自己滅菌が損なわれ、急速な二次汚染が発生します。プログラムの実行前と実行後に撮影したタンク/バケツの写真を撮影して、特定のポンプ設定で洗浄装置が水と漂白剤を消費する速度をベンチマークできます。
このシステムのもう一つの重要な要素は、細菌の増殖段階と温度の維持です。PRANCE実験は、S2060大腸菌株(Addgene:#105064)を用いて行われます。これは、バイオフィルムを還元するために最適化されたK12由来のFプラスミド含有株です7。さらに、この菌株のFプラスミドは、プラスミド維持のためのテトラサイクリン耐性カセット、luxABを介した発光モニタリングを補完するluxCDEおよびluxR、およびプラークの比色可視化を可能にするファージショックプロモーター下のlacZを追加して編集されています。FプラスミドにコードされたF線毛は、M13ファージ感染に必要です。したがって、PACEで使用される細菌は、F-pilus12が発現し、M13ファージの感染、増殖、および進化が可能な37°Cおよび中対数期で培養する必要があります。静的温度調節には、既製の加熱プレートキャリアを使用できます。別の方法としては、安価なヒーターを使用してHEPAフィルターに入る空気を加熱するだけですが、これはハードウェアの摩耗や損傷を加速する可能性があるため、お勧めしません。さらに、これにより、漂白剤/水バケツやインデューサーなどの甲板上の補助液の蒸発が促進されます。
ソフトウェアパッケージのキャリブレーションも、システムが適切に機能するために不可欠です。ソフトウェアデッキのレイアウトと実際のロボットデッキの相違は、動作中のシステム障害の最も一般的な原因です。バクテリア培養、漂白剤、排水を供給する補助ポンプは、チューブの摩耗や液量の変化につながる可能性があるため、システムの定期的な校正が不可欠です。
水圧試験では、不適切なリキッドハンドリング設定、流路系の漏れ/接続不良、ソフトウェアの不安定性など、多くの一般的なセットアップの問題が迅速に明らかになります。水がうまく使えば、予期せぬ液漏れがなく、一晩中エラーなく安定して稼働します。特定の液体処理ステップの実行の失敗、ピペットからの滴下、実行の途中でのプロトコルの停止など、水やり中に発生する可能性のある一般的な問題が多数あります。特定の液体処理手順の実行に失敗した場合は、すべての液体クラスがインストールされていることを確認してください。これらには、適切な粘度とピペッティング速度が記載されており、メーカーが提供するロボット制御ソフトウェアで調整されます。ピペットから滴り落ちる場合は、ロボットのピペッティングアームの設定を正しくして、クリーンなピペッティングを可能にし、ファージのクロスコンタミネーションを排除することが重要です。ロボットピペッティングを成功させるには、正しい液体クラスに加えて、すべての実験器具の正しいデッキレイアウトの高さ、およびPRANCEロボットメソッドプログラムで指定された適切なピペッティング高さオフセットが必要です。これらの高さオフセットは、直接調整が必要な場合があります。プロトコルが実行の途中で停止した場合、多くの場合、デッキ レイアウト ファイルが実際のデッキ構成と一致しない可能性があることを示すさまざまなエラーによって生成されます。
バクテリアのみのランテストでは、プレートリーダーの設定とリアルタイムのデータ視覚化の問題、漂白剤の濃度が高すぎるかすすぎが不十分である問題、および温度安定性が明らかになります。バクテリアのみの分析が成功すると、最初の3サイクルでラグーンの吸光度の平衡が示され、その後、分析期間中は安定した吸光度が続きます。さらに、いくつかの一般的な問題が明らかになる場合があります。これは、プレートリーダーによって生成されたデータがプロットされる最初のステップです。プレートリーダーデータベース内のデータが正しく保存されていないか、正しくプロットされていない可能性があります。バクテリアが吸光度で平衡化できない場合、これは漂白剤の濃度が高すぎることを示している可能性があります。漂白剤が多すぎたり、洗浄が不十分だったりすると、実験器具だけでなく、実験全体が滅菌されてしまう可能性があります。これが疑われる場合は、漂白剤検出ストリップを使用してラグーンをテストできます。培養液の温度の安定性は、温度計ガンで確認することができます。
感染テストが成功すると、システムが PRANCE を実行する準備ができていることを示します。感染試験は、細菌培養物を含むラグーンのサブセットに接種することによって実施することができる。これらの細菌は、pIIIの遺伝子(ΔgIII)を欠く適切なファージに感染するとpIIIを発現し、ファージの増殖を可能にします。試験の可能な組み合わせの1つは、任意のΔgIIIファージのファージショックプロモーターの下でpIIIを発現するプラスミドで形質転換されたS2060細菌を使用することです。図1に示すように、pIIIとluxABがT7プロモーター(プラスミドpJC173b13)によって駆動されるS2060細菌をアクセサリープラスミドで形質転換した野生型T7 RNAポリメラーゼを有するΔgIIIファージの使用を推奨します。これにより、テストラン中の感染のプレートリーダーを介したモニタリングも可能になります。感染試験の成功と交差汚染の欠如の決定的な証拠は、試験および対照ラグーンのファージ力価から得られます。ルシフェラーゼレポーターを使用する場合、図3に見られるように、試験ウェルのみで発光が増加することも、ファージの感染と増殖が成功したことを示す指標となります。ファージ力価定量のゴールドスタンダードはプラークアッセイです7。また、qPCR7によるM13定量プロトコルもありますが、これは感染性ファージ粒子と非感染性ファージ粒子を区別しないため、力価を過大評価する可能性があります。
メインプログラムはマニフェストファイルを参照し、これはプレーンテキストのデータベースファイルであり、各増殖培養のサイクルあたりの希釈量と、選択の厳密さが異なる可能性のある潜在的な細菌培養原料の任意の数の選択を決定します。このようにして、マニフェスト ファイルは PRANCE 実行のパラメーターの多くを定義します。このファイルは、オペレーターまたはシステムのいずれかが実行中に編集できるため、手動または自動のフィードバック制御が可能であることに注意する必要があります。
完全に機能するPRANCEセットアップの有用性は、注意深く監視および制御された環境で大規模な個体群を急速に進化させる能力にあります。プレートベースのフォーマットは、PRANCEを、より小型の既製のタービドスタットベースのシステムを使用するような他の技術とは区別します14,15。プレートベースのセットアップにより、追加のロボット処理ステップとの統合が容易になるだけでなく、遠心分離機などの他の実験装置との互換性も容易になります。さらに、複数のインスタンスで加速進化を同時に行うことができるため、実験に新たな次元が加わり、多様で堅牢な結果が得られる可能性が高まります。PRANCEに不可欠なきめ細かな制御とフィードバックシステムは、実験の予測可能性と信頼性をさらに強化し、指向性進化技術の分野で大きな進歩を遂げました。ただし、この手法では、実行できる並列実験の数が制限されます。構成にもよりますが、PRANCEのセットアップは、通常、ロボットのピペッティング速度または利用可能なデッキスペースによって制限されます。
PRANCEに用いるのと同じハードウェアとソフトウェアを、バクテリオファージを使わない進化法にも適用できます。多濁水槽法11で実証されたように、この同じ装置を細菌のみに用いることができ、全ゲノム適応進化実験を可能にする。この適応性は、この装置の範囲を広げ、ロボット工学で加速された進化の新しい形への道を開きます。
The authors have nothing to disclose.
Emma Chory と Kevin Esvelt には、ハードウェアとソフトウェアのセットアップに関する支援とアドバイスをいただいたことに感謝します。Samir Aoudjane、Osaid Ather、Erika DeBenedictis は、Steel Perlot Early Investigator Grant の支援を受けています。この研究は、Cancer Research UK(CC2239)、UK Medical Research Council(CC2239)、Wellcome Trust(CC2239)から中核的な資金提供を受けているFrancis Crick Instituteの支援を受けました。
3D printed bacterial reservoir "waffle" | – | – | https://drive.google.com/file/d/16ELcvfFPzBzNSto0xUrBe-shi23J9Na7/view; For Robot deck |
3D printer | FormLabs | Form 3B+ | 3D printer components |
3D printer resin (clear) | FormLabs | RS-F2-GPCL-04 | consumable for 3D printer |
8-1,000 µL head | Hamilton | 10140943 | For Liquid handling robot |
96-1,000 µL pipetting head | Hamilton | 10120001 | For Liquid handling robot |
Black polystyrene plate reader microplates | Millipore Sigma | CLS3603 | For Robot deck |
BMG Labtech Spectrostar FLuorstar Omega | BMG Labtech | 10086700 | For Liquid handling robot |
Cleaning solution | Fluorochem Limited | F545154-1L | used to clean the liquid handling parts of the robot |
Deep Well plates | Appleton Woods | ACP006 | these are used to contain evolving bacteria on the deck of the robot |
encolsure heater | Stego | 13060.0-01 | heats inside robot enclosure |
Hamilton STAR | Hamilton | 870101 | For Liquid handling robot |
Heater | Erbauer | BGP2108-25 | For Liquid handling robot |
HIG Bionex centrifuge | Hamilton | 10086700 | For Liquid handling robot |
iSWAP plate gripper | Hamilton | 190220 | For Liquid handling robot |
laboratory tubing | Merck | Z280356 | to construct liquid handling manifold |
luer to barb connector | AIEX | B13193/B13246 | for connectorizing tubing |
Magnetic stir plate | Camlab | SKU – 1189930 | For Auxiliary Fridge |
Molcular pipetting arm | Hamilton | 173051 | For Liquid handling robot |
Omega | BMG labtech | 5.7 | plate reader control software |
One way Check Valves | Masterflex | MFLX30505-91 | to one way sections of liquid handling manifold |
pyhamilton | MIT/Open source | https://github.com/dgretton/std-96-pace%20PRANCE | open source python robot control software |
pymodbus | opensource | 3.5.2 | python pump software interface |
Refrigetator | Tefcold | FSC175H | allows cooled bacteria to be used instead of turbidostat |
S2060 Bacterial strain | Addgene | Addgene: #105064 | E. coli |
temperature controller | Digiten | DTC102UK | Used to control heaters thermostatically |
Thermostat switch controller | WILLHI | WH1436A | WILLHI WH1436A 10 A Temperature Controller 110 V Digital Thermostat Switch Sous Vide Controller NTC 10K Sensor Improved Version; for Liquid handling robot |
Venus | Hamilton | 4.6 | proprietary robot control software |
Wash Station for MPH 96/384 | Hamilton | 190248 | For Liquid handling robot |
Suggested pump manufacturers | |||
Company | Catalog number | Notes | Documentation |
Agrowtek | AD6i Hexa Pump | https://www.agrowtek.com/doc/im/IM_ADi.pdf | |
Amazon | INTLLAB 12V DC | ||
Cole-Parmer | EW-07522-3 | Masterflex L/S Digital Drive, 100 RPM, 115/230 VAC | https://pim-resources.coleparmer.com/instruction-manual/a-1299-1127b-en.pdf |
Cole-Parmer | EW-07554-80 | Masterflex L/S Economy variable-speed drive, 7 to 200 rpm, 115 VAC | https://pim-resources.coleparmer.com/instruction-manual/a-1299-1127b-en.pdf |