罕见原代细胞的靶向代谢组学

新陈代谢是发生在所有活细胞中的基本生物过程。代谢过程涉及一个庞大的生化反应网络，这些反应受到严格调节和相互连接，使细胞能够产生能量并合成必需的生物分子¹。为了了解代谢网络的功能，研究人员测量了细胞内小分子中间体的水平。这些中间体是代谢活动的重要指标，可以揭示对细胞功能的关键见解。

质谱 （MS） 是特异性检测复杂样品中代谢物的最常用选择 ^1,2。核磁共振（NMR）在化合物的绝对定量和结构解析方面具有优势，但MS通常可以分离复杂混合物（如生物流体或细胞提取物）中的更多组分。通常情况下，MS与通过毛细管电泳（CE）、气相色谱（GC）或液相色谱（^LC）3对化合物的先前分离相结合。分离平台的选择主要取决于目标代谢物的范围和样品类型，在实际环境中，还取决于机器和专业知识的可用性。这三种分离平台都具有广泛且重叠的合适代谢物范围，但局限性不同。简而言之，CE 只能分离带电分子，需要大量的专业知识才能对大量样品进行稳健分析⁴.GC 仅限于小且无极性的分子，足以在分解前蒸发³.考虑到所有市售的液相色谱柱，该技术可以分离任何两种代谢物⁵。然而，许多液相色谱方法的分辨能力低于类似长度的 CE 或 GC 方法。

代谢组学测量的典型起始材料量通常为每个样品 5 x 10⁵ 至 5 x 10⁷ 个细胞、5-50 mg 湿组织或 5-50 μL 体液⁶。然而，在处理稀有细胞类型的原代细胞（例如造血干细胞 （HSC） 或循环肿瘤细胞）时，获得如此数量的起始材料可能具有挑战性。这些细胞通常以非常低的数量存在，并且不能在不损害关键细胞特征的情况下进行培养。

造血干细胞和多能祖细胞 （MPP） 是造血系统中分化程度最低的细胞，在生物体的整个生命周期中不断产生新的血细胞。造血的调节在白血病和贫血等疾病中具有临床意义。尽管它们很重要，但 HSC 和 MPP 是造血系统中最稀有的细胞之一。通常，从单只小鼠中可以分离出大约 5000 个 HSC ^7,8,9。由于传统的代谢组学方法需要更多的输入材料，因此通常需要混合来自多只小鼠的细胞来分析稀有细胞类型^10,11。

在这里，我们旨在开发一种方案，能够测量每个样品中低至 5000 个细胞中的代谢物，以便能够从单只小鼠¹² 的 HSC 生成代谢组学数据。同时，这种方法允许从单个小鼠生成多个重复，以获得更丰富的细胞类型，如淋巴细胞。这种方法减少了给定项目所需的动物数量，从而有助于动物实验的“3R”（减少、替换、改进）。

细胞中的代谢物可以具有非常高的周转率，通常在秒级¹³.然而，制备用于荧光激活细胞分选 （FACS） 的样品可能需要数小时，而 FACS 分选本身可能需要几分钟到几小时，导致非生理条件导致代谢组的潜在改变。该方案中使用的一些试剂（如氯化铵钾[ACK]裂解缓冲液）可以具有类似的效果。这些条件会导致细胞应激并影响细胞内代谢物的水平和比率，导致细胞代谢测量不准确或有偏差 14,15,16。由于样品制备引起的代谢变化有时被称为分选伪影。从坚硬或坚韧的组织中生产单细胞悬浮液可能需要的长消化方案和刺激性试剂会加剧这个问题。可能发生的变化可能取决于细胞类型和处理条件。这些变化的确切性质仍然未知，因为无法测量活组织中未受干扰细胞的代谢状态。

与传统方法相比，这里介绍的方案涉及几个关键差异，即使用 5 g/L NaCl 作为鞘液，直接分选到提取缓冲液中，在亲水作用液相色谱-质谱 （HILIC-MS） 上进样大量样品，并利用靶向定量、严格使用内标和背景控制（图 1).该方案有可能在很大程度上保留细胞类型之间以及药物治疗和载体控制之间的差异¹²。即使对于培养的细胞，它也优于其他方法，例如更成熟的离心和手动去除上清液。但是，由于仍可能出现排序伪影，因此必须谨慎解释数据。尽管存在这种局限性，但该协议代表了代谢分析领域的重大改进，允许更准确和全面地测量稀有原代细胞的细胞代谢¹²。

在罕见的原代细胞中稳健地测量广泛代谢谱的能力为涉及这些细胞的生物医学研究的新实验打开了大门。例如，造血干细胞中代谢介导的调节已被证明会影响休眠自我更新能力，对贫血和白血病有影响^11,17。在患者来源的循环肿瘤细胞中，肿瘤和邻近细胞之间代谢基因表达的差异已显示^18,19。该协议现在允许研究人员在代谢水平上系统地研究这些差异，这通常被认为比基因表达更接近细胞表型。