In dieser Studie werden Verfahren zur Feststellung einer chronisch ähnlichen Verletzung der Kaninchenrotatorenmanschette (RC) beschrieben. Konkret entsteht die Verletzung in der Muskel-Sehnen-/Myotendinus-Einheit des Subscapularis (SSC), um die menschliche RC-Anatomie und Pathophysiologie nachzuahmen, einschließlich schwerer Muskelfettdegeneration (FD). Dieses Protokoll kann angewendet werden, um RC-Verletzungen zu untersuchen und regenerative Therapien zu bewerten.
Die Pathophysiologie der Kaninchenrotatorenmanschette (RC) kann zu fortschreitenden und stark degenerativen Veränderungen der zugehörigen Muskulatur und Sehnen führen, was klinisch relevante Parameter wie Kraft und Retraktion der Muskel-Sehne/myotendinösen Einheit negativ beeinflusst, was letztendlich zu einem Verlust der Schulterfunktion führt und sich negativ auf die Ergebnisse der RC-Reparatur auswirkt. Tiermodelle, die Aspekte der menschlichen RC-Anatomie und Pathophysiologie nachahmen, sind entscheidend für die Verbesserung des konzeptionellen Verständnisses des Verletzungsverlaufs und die Entwicklung wirksamer Therapeutika auf Basis von Tissue Engineering und regenerativer Medizin.
In diesem Zusammenhang eignet sich ein Kaninchen-Subscapularis-Modell (SSC) aufgrund (i) seiner anatomischen Ähnlichkeit mit der Knochen-Sehnen-Muskel-Einheit des menschlichen Supraspinatus (SSP), die die am häufigsten verletzte RC-Stelle ist; (ii) seine pathophysiologische Ähnlichkeit mit dem Menschen in Bezug auf Fibrose und Muskelfettdegeneration (FD); und (iii) seine Eignung für chirurgische Eingriffe. Daher ist es das Ziel dieser Studie, die Operationstechniken zur Induktion von SSC-RC-Verletzungen zu beschreiben. Kurz gesagt beinhaltet das Verfahren die Isolierung des SSC durch Identifizierung des Musculus coracobrachialis, gefolgt von einer vollständigen Durchtrennung an der Muskel-Sehnen-Verbindung und der Umhüllung des freien Endes der Muskel-Sehnen-Verbindung mit einem Penrose-Schlauch auf Silikonbasis, um eine spontane Wiederanhaftung zu verhindern. Histologische Auswertungen werden durchgeführt, um das Fortschreiten der Muskel-FD 4 Wochen nach der Operation unter Verwendung von Hämatoxylin und Eosin (H&E) sowie Masson-Trichrom-Färbung zu überwachen.
Der Verlust von Muskel und FD war 4 Wochen nach Durchtrennung der SSC-Muskel-Sehnen-Verbindung offensichtlich, ähnlich wie bei der menschlichen RC pathophysiologische Bedingungen. Dieses Protokoll demonstriert die Schritte zur erfolgreichen Etablierung eines chronisch-ähnlichen SSC-RC-Verletzungsmodells für Kaninchen, das als leistungsfähiges Werkzeug zur Untersuchung von Skelettmuskelveränderungen im Zusammenhang mit der RC-Pathophysiologie dienen und die Entwicklung neuer therapeutischer Strategien für chronisch-ähnliche RC-Risse unterstützen kann.
Chronische Risse der Rotatorenmanschette (RC) sind gekennzeichnet durch degenerative Veränderungen der Muskulatur und der Sehnen, einschließlich Muskelatrophie, Ansammlung von Fettgewebe und Fibrose, die das Ergebnis der RC-Reparatur beeinträchtigen und letztendlich Schulterschmerzen und Funktionsstörungen verursachen können 1,2,3,4,5 . Um die Pathogenese des RC-Risses besser zu verstehen und die chirurgischen Ergebnisse zu verbessern, ist es entscheidend, geeignete Tiermodelle zu entwickeln, die Aspekte der menschlichen RC-Anatomie und Pathophysiologie nachahmen können. Insbesondere sollten RC-Verletzungsmodelle die folgenden Kriterien erfüllen: (i) keine spontane Heilung nach einer Verletzung; (ii) ein signifikantes Vorhandensein von Fibrose, Muskelatrophie und Ansammlung von Fettgewebe aufweisen; und (iii) von ausreichender Größe sein, um die Annäherung an die beim Menschen angewandten chirurgischen Techniken zu ermöglichen6.
In diesem Zusammenhang kann der Musculus subscapularis (SSC) des Kaninchens aufgrund seiner einzigartigen Anatomie, pathophysiologischen Reaktion und biomechanischen Eigenschaften als genaues und zuverlässiges Tiermodell für die Untersuchung der RC-Pathophysiologie verwendet werden7. In der Tat ähnelt die Anatomie der SSC-RC bei Kaninchen der menschlichen Supraspinatus (SSP) RC, der Muskel-Sehnen-Einheit, die am häufigsten mit Verletzungen aufgrund von Überlastung in Verbindung gebracht wird 8,9. Konkret verläuft der SSC-Sehnenkomplex des Kaninchens durch einen knöchernen Tunnel und unter dem Musculus coracobrachialis, was analog zur Situation beim Menschen ist, in der der SSP-Sehnenkomplex durch den subacromialen knöchernen Tunnel und unter dem Ligamentum coracoacromialis verläuft7. Diese anatomische Ähnlichkeit führt dazu, dass die SSC des Kaninchens ähnliche muskuloskelettale Bewegungen durchläuft wie die menschliche SSP, bei der die Sehne während der Hebung und Abduktion des Oberarmknochens unter das Schulterdach wandert 7,10.
Darüber hinaus wurden beim Kaninchen nach SSC-Rissen pathohistologische Veränderungen beobachtet, ähnlich wie bei humanen RC-Rissen11. Insbesondere der Muskelbauch erfährt eine schwere FD mit einem signifikanten Verlust an Muskelmasse, einer verringerten Querschnittsfläche der Muskelfasern und einer erhöhten Adipositas. Darüber hinaus bewerteten Otarodifard et al. die biomechanischen Eigenschaften des SSC des Kaninchens nach (1) einreihigen, (2) zweireihigen und (3) transossär-äquivalenten RC-Reparaturtechniken und stellten fest, dass die anfänglichen biomechanischen Eigenschaften dieser Reparaturen denen menschlicher SSP-RC-Reparaturen ähnelten, die an Leichenproben durchgeführt wurden12. Die anatomische, physiologische und biomechanische Ähnlichkeit der SSC von Kaninchen mit der menschlichen SSP macht sie daher nützlich für die Modellierung von RC-Verletzungen.
Obwohl viele Tierarten, darunter Ratten, Mäuse, Hunde und Schafe, bei der Untersuchung von RC-Erkrankungen und -Reparaturen verwendet wurden 6,13,14,15, ist der Grad der Verletzungschronizität ein wichtiger Aspekt. Dies liegt daran, dass RC-Risse asymptomatisch sein können und oft viel später diagnostiziert werden, wenn sich der Riss vergrößert hat und chronischer Natur ist, wobei sowohl die Sehne als auch der Muskel eine schwere Degeneration aufweisen16,17,18. Die meisten RC-Reparaturmodelle verwenden jedoch akute Verletzungsmodelle, bei denen die gesunde Sehne durchtrennt und dann sofort repariert wird 19,20,21,22. Dies geschieht vor allem aus Gründen der logistischen Zweckmäßigkeit und der technischen Einfachheit, was dazu führt, dass es nur wenige Studien gibt, die die Pathophysiologie der RC in einem chronisch ähnlichen Setting untersuchen. Darüber hinaus können mehrere Tiermodelle Eigenschaften aufweisen, die ihre Verwendung für chronische RC-Studien erschweren.
Obwohl beispielsweise die Ratte ausgiebig zur Modellierung von RC-Rissen und Eingriffen verwendet wurde, steht das Fehlen einer signifikanten Fettansammlung nach einer Verletzung im Gegensatz zum menschlichen Zustand, und ihre geringe Größe macht wiederholte chirurgische Eingriffe zu einer Herausforderung23. Obwohl Gerber et al. den Infraspinatus von Schafen verwendeten, um Muskelatrophie und FD nach chronischem RC-Riss zu untersuchen24, gibt es einige anatomische Unterschiede zwischen dem Infraspinatus von Schafen und dem menschlichen SSP sowie zahlreiche logistische Herausforderungen für die Untersuchung und Unterbringung eines so großen Tiermodells. Darüber hinaus entwickelten Gerber et al. ein verzögertes RC-Verletzungsmodell bei Schafen, indem sie den oberflächlichen Kopf des Musculus infraspinatus und der Sehne freisetzten, um die Merkmale eines chronischen RC-Risses nachzuahmen, und dann die Wirksamkeit verschiedener Reparaturtechniken an der Sehne nach 4 bis 6 Wochen bewerteten. Leider besaß dieses chronisch ähnliche Schafmodell eine Einschränkung, da das Ende der gelösten Sehne während des zweiten chirurgischen Eingriffs nicht mehr von Narbengewebe zu unterscheidenwar 25.
Coleman et al. entwickelten auch ein chronisches RC-Rissmodell bei Schafen, indem sie das durchtrennte Sehnenende zum Zeitpunkt der ersten Operation mit einer synthetischen Membran bedeckten, was eine Nährstoffdiffusion ermöglichte und die Bildung von Narbengewebe um das verletzte Gewebe herum effizient minimierte, während gleichzeitig die Unterscheidung zwischen Sehne und Narbengewebe verbessertwurde 26. In der Zwischenzeit schlugen Turner et al. vor, dass eine verzögerte Reparatur innerhalb von 4 Wochen durchgeführt werden sollte, da eine direkte Wiederbefestigung bei einer massiven Sehnenretraktion selten vorkommt27. Zusammen haben diese Studien zu reproduzierbaren und zuverlässigen Protokollen für die erfolgreiche Etablierung eines chronisch-ähnlichen SSC-RC-Verletzungsmodells für Kaninchen beigetragen.
In diesem Protokoll wird nach 4 Wochen ein chronisch ähnliches Kaninchen-RC-Verletzungsmodell etabliert, in dem pathologische Veränderungen im Zusammenhang mit Fibrose und FD-vermittelter Muskelatrophie durch histologische Untersuchungen untersucht werden können. Insbesondere das Umwickeln des freien Endes des Muskel-Sehnen-Übergangs mit einem silikonbasierten Penrose-Schlauch zum Zeitpunkt der ersten Operation ermöglicht eine eindeutige Identifizierung des RC-Gewebes während des zweiten chirurgischen Eingriffs und erleichtert somit eine sichere Reparatur, um die RC-Heilung mit und ohne Gerüstaugmentation zu untersuchen. Insgesamt kann ein chronisch ähnliches Kaninchen-SSC-Modell die Pathophysiologie der RC besser nachahmen und minimale technische und logistische Anforderungen stellen.
Ein reproduzierbares und physiologisch relevantes Tiermodell bietet die Möglichkeit, das Verständnis der Krankheitspathogenese zu verbessern, die Ergebnisse klinischer Therapien zu bewerten und chirurgische Behandlungen zu verbessern und weiterzuentwickeln35. In dieser Studie wurde ein zuverlässiges und genaues SSC-Modell für Kaninchen entwickelt, das Aspekte der menschlichen RC-Anatomie und Pathophysiologie nachahmt. RC-Risse stehen im Zusammenhang mit fortschreitenden und wahrscheinlich irreversiblen muskulären degenerativen Veränderungen, die zu einem verminderten Heilungspotenzial führen. Ko et al. zeigten beispielsweise, dass das Wiederanheften von Kaninchen-SSP nach 6 Wochen die Muskelatrophie oder FD in den folgenden 6 Wochen nicht rückgängig machte. Eine solche FD-vermittelte Muskelatrophie beeinflusst mehrere wichtige klinische Parameter, einschließlich der Sehnenmuskelkraft und des Bewegungsumfangs der Gelenke, was die chirurgischen Ergebnisse beeinflussen kann36,37.
Das hier etablierte Protokoll zeigte signifikante chronisch ähnliche Merkmale nach der Durchtrennung von SSC-Muskel-Sehnen-Einheiten. Zu diesen Veränderungen gehören insbesondere eine sichtbar verringerte Muskelmasse und ein erhöhter Fettgehalt und fibrotisches Gewebe (Abbildung 2, Abbildung 3 und Abbildung 4). Diese Befunde stehen im Einklang mit degenerativen Veränderungen, die in menschlichen RC-Rissen berichtet wurden38. In den letzten Jahren hat sich die Ratte aufgrund ihrer hohen anatomischen Ähnlichkeiten mit menschlichen und Ratten-SSPs, die unter dem Schulterdach reisen, zu einem der am intensivsten untersuchten Tiermodelle für RC-Erkrankungen und -Verletzungen entwickelt38,39,40. Es sollte jedoch beachtet werden, dass der Teil der SSP der Ratte, der unter dem Schulterdachbogen verläuft, muskulär ist, im Gegensatz zu tendinös, was beim Menschen der Fall ist41. Am wichtigsten ist, dass Barton et al. einen Mangel an signifikanter Fettansammlung nach SSP-Sehnenablösung bei Ratten feststellten23, was im Gegensatz zum menschlichen Zustand steht42. Daher wird angenommen, dass der SSC-Komplex des Kaninchens ein geeignetes Modell darstellen könnte, um den chronischen RC-Riss des Menschen nachzuahmen.
Um die Reproduzierbarkeit dieses Modells zu gewährleisten, sind bei der Durchführung dieses Protokolls zwei Punkte zu beachten. Erstens kann nach der Durchtrennung von Muskel-Sehnen-Einheiten das freie Ende der durchtrennten Sehne Gefahr laufen, Verwachsungen zu bilden, was die Sehnenentnahme für nachfolgende Manipulationen erschweren kann. Um dieses Problem zu vermeiden, wurde ein nicht resorbierbarer Silikonschlauch verwendet, um das freie Ende der Muskel-Sehnen-Verbindung nach der Durchtrennung zu umwickeln, um eine spontane Adhäsion an das umgebende Gewebe sowie eine spontane Heilung zu vermeiden (Abbildung 1E). Ferner kann die durchtrennte Muskel-Sehnen-Einheit während eines zweiten Eingriffs (d. h. zur Durchführung einer sicheren Reparatur; Daten nicht gezeigt) eindeutig identifiziert werden, indem das Ende des verletzten Gewebes zum Zeitpunkt der ersten Operation eingewickelt wird. Diese Technik ist wirtschaftlich, effektiv und kann leicht in der Chirurgie implementiertwerden 43. Zweitens sind Kaninchen eine hochempfindliche Spezies, die nach einer Operation schädliches Verhalten zeigen kann. Um solche Probleme zu vermeiden, wird dringend empfohlen, auch ein weiches Halsband anzulegen, um unerwünschtes Verhalten zu verhindern, einschließlich Selbstverstümmelung, Lecken von Operationsstellen und Entfernen von Nähten (Abbildung 1I). Im Vergleich zu handelsüblichen E-Halsbändern, die aus starrem Kunststoff bestehen, verursachte das selbst hergestellte weiche Halsband keine Hautverletzungen oder andere Nebenwirkungen, die das Tierwohl oder die Qualität der wissenschaftlichen Forschung beeinträchtigten. Zusammen sind solche Schritte entscheidend, um ein genau reproduzierbares RC-Verletzungsmodell für Kaninchen zu erstellen und die Möglichkeit zu bieten, die regenerativen Reparaturstrategien zu untersuchen.
Um die Pathophysiologie und Heilung von Sehnen in einem Tiermodell zu untersuchen, muss eine eindeutige und reproduzierbare Verletzung erstellt und die Untersuchungszeitpunkte sorgfältig ausgewählt werden. Die überwiegende Mehrheit der Studien zur Sehnenverletzung und -heilung wurde an vollständig durchtrennten tierischen Sehnen durchgeführt44, da die Durchtrennung ein einfaches Verfahren ist, das hochgradig reproduzierbar ist und das klinische Szenario adäquat simulieren kann45,46. Huegel et al. zeigten, dass die Verletzung einer teilweise durchtrennten Sehne weniger schwerwiegend war als die einer vollständig durchtrennten Sehne, und die Ruhigstellung wirkte sich nachteilig auf die Sehnenmechanik aus, einschließlich einer erhöhten Gelenksteifigkeit47. Um die Atrophie und FD zu bewerten, die im Rahmen eines massiven RC-Risses beobachtet wird, ist es wichtig, die experimentell beobachteten charakteristischen Zeitpunkte zu definieren. Gupta et al. haben ein RC-Verletzungsmodell beim männlichen Kaninchen validiert und eine Muskelatrophie nach 2 und 6 Wochen beobachtet, mit erhöhtem Fettgehalt zu späteren Zeitpunkten (weniger als 5 % Fettgehalt nach 2 Wochen vs. mehr als 10 % Fettgehalt nach 6 Wochen), was mit dem pathologischen Prozess übereinstimmt, der bei menschlichen RC-Rissen beobachtet wurde11. In dieser Studie wurde durch Durchtrennung der SSC-Muskel-Sehnen-Einheit bei männlichen und weiblichen Kaninchen über 4 Wochen ein massiver RC-Riss erzeugt, der zu einer SSC-Muskel-FD (36,5 % Fettgehalt) führte. Daher ist ein 4-wöchiger Zeitpunkt für die Generierung von SSC-Muskel-FD bei männlichen und weiblichen neuseeländischen weißen Kaninchen angemessen.
Es gibt mehrere Einschränkungen für diese Studie. Dazu gehören: (i) Schritte, die mit der Generierung von Tiermodellen verbunden sind, wie z. B. ein relativ kurzer Zeitpunkt und potenziell entzündliche Materialien (Penrose-Schläuche auf Silikonbasis) für die Erzeugung chronisch ähnlicher Verletzungen; (ii) Charakterisierung und Analyse von Tiermodellen, wie z. B. fehlende Ganganalyse und Elektromyographie zur Beurteilung der Gelenkkinematik und der Erzeugung von Muskelkontraktionskraft; und (iii) Vergleich von Tiermodellen, wie z. B. fehlender Vergleich mit anderen RC-Verletzungsstellen.
In Bezug auf die Modellgenerierung beinhalten menschliche RC-Verletzungen typischerweise eine progressive Atrophie und FD, die über einen Zeitraum von mehreren Jahren auftreten können, was relativ länger ist als der hier beschriebene 4-Wochen-Zeitpunkt. Dies wird als akzeptabel erachtet, da ein Tiermodell, das in relativ kurzer Zeit etwa 36,5 % intramuskuläres Fett erzeugt, logistisch bequem ist und bei Bedarf verlängert werden kann. Darüber hinaus ist die Biokompatibilität von Implantaten auf Silikonbasis, wie z. B. Penrose-Schläuchen, aufgrund von Berichten über zelluläre Immunantworten und Entzündungen seit langem umstritten47; Daher kann ein alternatives inertes Material, wie z. B. Polyethylenglykol (PEG), für die Umhüllung der resezierten Sehne ersetzt werden, wenn entzündungsassoziierte RC-Studien durchgeführt werden.
In Bezug auf die Charakterisierung und Analyse von Tiermodellen kann das Fehlen von Ganganalysen49 und elektromyographischen Studien50 die Ergebnisse der Studie auf qualitative histologische Daten beschränken. Diese Aspekte können in zukünftigen Studien unter Verwendung der Videobewegungsanalyse51 und der Oberflächenelektromyographie50 behandelt werden, um quantitative Daten über die Schulterkinematik und die RC-Muskelleistung zu erzeugen.
Da die SSP- und Infraspinatussehnen bei den Kaninchen auch häufig für RC-Studien verwendet wurden, wird der Vergleich der Verletzungsschwere, einschließlich FD zwischen diesen verschiedenen Verletzungsstellen in der Zukunft, zusätzliche Stellen für die Modelloptimierung identifizieren.
Zusammenfassend lässt sich sagen, dass in dieser Studie ein Protokoll zur Modellierung chronisch-ähnlicher RC-Verletzungen bei männlichen und weiblichen Kaninchen entwickelt wurde. Dieses Modell ist für Untersucher aufgrund seiner Einfachheit (Durchtrennung) und des relativ kurzen Zeitraums zur Induktion der Chronizität (4 Wochen) bei gleichzeitiger Erzeugung eines hohen Grades (36,5 %) intramuskulärer FD geeignet. Daher wird erwartet, dass dieses Protokoll den Forschern bei der Untersuchung der RC-Pathophysiologie hilft und die Entwicklung neuartiger Therapeutika für die Reparatur und Regeneration von Muskelsehnen erleichtert.
The authors have nothing to disclose.
Die Forschung von Dai Fei Elmer Ker wird durch Mittel des Food and Health Bureau, Hong Kong SAR (Health Medical and Research Fund: 08190466), der Innovation and Technology Commission, Hong Kong SAR (Tier 3 Award: ITS/090/18; Health@InnoHK Programm), Research Grants Council of Hong Kong, Hong Kong SAR (Early Career Scheme Award: 24201720 und General Research Fund: 14213922) und The Chinese University of Hong Kong (Faculty Innovation Award: FIA2018/A/01). Dan Wangs Forschung wird durch Mittel des Food and Health Bureau, Hong Kong SAR (Health Medical and Research Fund, 07180686), der Innovation and Technology Commission, Hong Kong SAR (Tier 3 Award: ITS/333/18; Health@InnoHK-Programm) und dem Research Grants Council of Hong Kong, Hong Kong SAR (General Research Fund: 14118620 and 14121121).
Surgical tools | |||
4-0 Poly glycolic acid (PGA) | e-Sutures | GBK884 | |
Forceps with teeth | Taobao, China | ||
Fine scissors | Taobao, China | ||
Hemostatic forceps | Taobao, China | ||
Needle holders | Taobao, China | ||
Surgical scalpel with handle | Taobao, China | 11 | |
Suture (4-0 Silk) | Taobao, China | 19054 | |
Surgical accessories | |||
Cotton balls | Taobao, China | ||
Gauze | Taobao, China | ||
Razor | Taobao, China | ||
Surgical heating pad | Taobao, China | ||
Surgical lamp | |||
Syringe with needles | Taobao, China | 1 mL, 5 mL, 10 mL | |
Drugs | |||
Buprenorphine | LASEC, CUHK | 0.12 mg/kg | |
Bupivacaine | Tin Hang Tech | b5274-5g | 1-2 mg/kg |
Cephalexin | Santa Cruz Biotechnology (Genetimes) | sc-487556 | 20 mg/kg |
Ketamine | LASEC, CUHK | 35 mg/kg | |
Sodium pentobarbital | LASEC, CUHK | more than 60 mg/kg | |
Xylazine | LASEC, CUHK | 5 mg/kg | |
Equipment | |||
Nikon Ni-U Eclipse Upright Microscope | Nikon Instruments Inc, USA | ||
Software | |||
Adobe Photoshop 20.01 | Adobe Inc, USA | ||
Other reagents | |||
Betadine | Taobao, China | 5% | |
Ethanol | Taobao, China | 70% | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Sigma-Aldrich | EDS-1KG | 10% |
Paraformaldehyde (PFA) | Electron Microscopy Sciences | 15713 | 4% |
Silicone tubing | Easy Thru, China | ISO13485 | |
Saline | Taobao, China | ||
Histological staining reagents | |||
Eosin Stain Solution | Sigma-Aldrich | R03040 | 5% Aqueous |
Hematoxylin Solution | Sigma-Aldrich | HHS32 | |
Trichrome Stain (Masson) Kit | Sigma-Aldrich | HT15 |