レーザーポレーションと微小電極アレイ(MEA)の組み合わせにより、培養された初代および幹細胞由来の心筋細胞の活動電位のような記録が可能になります。波形形状は、標準的な記録よりもテスト化合物の作用モードに関する優れた洞察を提供します。パッチクランプとMEA読み出しをリンクして、将来の心臓安全性研究をさらに最適化します。
生命を脅かす薬物誘発性心不整脈は、しばしば長期の心臓活動電位(AP)が先行し、一般に小さな不整脈膜電位の変動を伴う。APの再分極画分の形状および経時変化は、不整脈の有無にとって極めて重要であり得る。
微小電極アレイ(MEA)は、細胞外電界電位(FP) を介して 心毒性化合物の影響に容易にアクセスできるようにします。FP波形は、研究および心臓安全性薬理学において強力で確立されたツールですが、細胞外記録原理と結果として生じる固有の交流(AC)フィルタリングにより、元のAP形状を推測することはできません。
ここで説明する新しいデバイスは、高度に集束されたナノ秒レーザービームを使用して、複数の培養時点でMEA電極上で培養された心筋細胞の膜を繰り返し開くことができます。レーザーポレーションは、電気生理学的シグナルをFPから細胞内様AP(レーザー誘起AP、liAP)に変換し、経細胞電圧偏向の記録を可能にします。この細胞内アクセスにより、AP形状をよりよく記述し、通常のMEA記録よりも整脈電位をより良く、より感度の高い分類することができます。このシステムは、既存の電気生理学的方法の革新的な拡張であり、MEAベースの記録のすべての利点(簡単、急性、慢性実験、シグナル伝播分析など)を備えた心毒性効果の正確な評価を可能にします。
心拍の電気的寄与は、多くの心臓チャネルとトランスポーターの複雑で正確なタイミングの相互作用、および心筋を通る電気信号の正確に調整された伝播に起因します1。これらの密接に調整されたメカニズムの変更(薬物の使用など)は、心臓の機能に深刻な結果をもたらす可能性があります(すなわち、生命を脅かす不整脈)2,3。不整脈は、心臓の正常なリズムを変える不整脈として定義され、生命を脅かす結果をもたらす可能性があります。それらは、心臓興奮の波の開始障害または心臓興奮の異常な伝播4のいずれかによって引き起こされる可能性があり、その結果、心臓のポンプ機構の機能不全が生じます。
多くの非常に強力な薬剤候補は、その(プロ)不整脈の可能性のために、医薬品開発の初期段階でさらなる調査から除外されなければなりません2,3。それらは、正常な心臓活動電位の形成と終結、およびその後のシグナル伝播に関与する主要な心臓チャネル(例えば、ヒトエーテルゴーゴー関連遺伝子チャネル[hERG])を調節します5。
製薬会社は、パッチクランプ測定または微小電極アレイ(MEA)を日常的に使用して、薬剤候補によって誘発される潜在的な心毒性のオフターゲット効果を調査しています。パッチクランプ記録により、心臓イオンチャネルに対する物質の影響を解読し、高い時空間分解能で経細胞的心臓活動電位を分析することができます6,7。しかしながら、この技術の欠点には、手動パッチクランプによる低スループットおよびこの方法の懸濁細胞への依存性による自動化の適用性の制限が含まれる。さらに、この方法の侵襲性のために慢性的な影響を調査することはできません。最後に、通常、心臓合胞体全体ではなく、単一の細胞のみが同時に研究されるため、シグナル伝播に関する情報に対処することは不可能です。
電位感受性色素は、心臓活動電位および薬物誘発性不整脈を非侵襲的に調査するのに有用です8。それらは、単一細胞活性とシンシチウム活性の両方の調査を可能にします。この方法の欠点は、照明中の色素自体または反応生成物のいずれかの細胞毒性効果である。それらは急性実験に使用され、長期研究にはほとんど適用できません9,10,11。代替としての電位感受性タンパク質は、使いやすさと感度の点で過去数年間で大きな進歩を遂げましたが、目的の細胞の遺伝子改変が必要であり、電気生理学的手法と比較して高い時間分解能が不足しています12。
最新のCiPAイニシアチブ13からの情報によると、MEAは、心機能と安全性薬理学を調査するための強力で確立されたツールであるため、代替の電気生理学的アプローチとして心臓安全性スクリーニングで広く使用されています。心筋細胞はチップ上に直接シンシチウムとして培養され、細胞外電界電位(FP)は基板集積微小電極を介して非侵襲的に記録されます。この記録原理により、数日間にわたってスループットスクリーニングを実施できるため、慢性疾患に関する医薬品研究に適しています。得られたFP波形は、細胞内AP14の導関数である。ビートレート、FPの最初の部分の振幅、FP持続時間などのパラメータに簡単にアクセスできます15。FP(不整脈の重要なマーカー16,17)の延長と三角測量の区別などの他の重要な基準は、技術のACフィルタリング効果のためにアクセスできません。さらに、早期および遅延後脱分極(それぞれEADおよびDAD)などの他の小さな不整脈イベントの検出は、振幅が小さいため見落とされがちです。
ここでは、心筋細胞の膜を開口して細胞内膜電位にアクセスする方法について説明する。IntraCellデバイス(以下、細胞内記録デバイス)は、特定の物理現象(表面プラズモン共鳴) を介して 、高度に集束されたナノ秒レーザービームを使用して、MEA電極上で培養した心筋細胞の膜開口部を繰り返し行うことができます18。その結果、記録は通常のFPから細胞内様AP(レーザー誘導AP、liAP)に移行します。このプロトコルは、FPの解析では容易に捉えられない波形の運動的側面へのアクセスを可能にする方法を示しています。この方法は、従来の細胞内パッチクランプとMEA記録の間の架け橋を表しています。したがって、この技術は、現在の心臓安全性評価方法の強力な拡張です。
この革新的な方法は、心活性薬理学的ツール化合物の適用中の心臓活動電位の薬理学的調節を in vitro で調査する新しい方法を示しています。
古典的なMEA記録は、心臓AP14の派生物であるFP記録を可能にする。この間接的な記録により、脱分極と再分極の時間経過が複雑になり、AP の本質的な特性が排除されます。さらに、APの経細胞間電圧変化は通常約100mVの値に達しますが、全体のFP振幅は比較的低く、ピーク振幅は数100μVから1桁のmV値の間にあります。記録原理により、再分極位相は小さい。多くの場合、それは単に検出可能であり、しばしば不明確な形状であるため、FPの終わりを定義することは困難です。細胞膜の開口部により、細胞内電圧へのアクセスが可能になり、それによって心臓APの時間経過が明らかになります。FP記録と比較して、この記録方法には複数の利点があります。まず、信号振幅がより顕著になり、優れた信号対雑音比を提供します。第二に、波形は再分極の検出をより良くします。第三に、再分極相の形状は、信号緩和の急峻さによって提供される試験化合物の作用機序への洞察に寄与する。そして最後に、この方法は、図6に示されているように、LIAPでは発生するがFPでは発生しないEADの発生について図 6 に示されているように、重大な薬物副作用を検出するための感度が向上しています。
これまでのところ、細胞内APにアクセスする方法は2つあります。第1のものは、エレクトロポレーション26,27によって達成される。ここで、記録電極を介して印加される短くて強い電圧パルスは、細胞膜28を開くことができる。第2の可能性は、表面プラズモン共鳴という物理現象を利用したレーザーパルスによる膜開口です。エレクトロポレーションと比較した利点の1つは、連続した開口部の可能性が高いことです。高度に集束されたレーザースポット(1〜3μm)のため、この効果は目的の電極に非常に局所的に制限されます。興味深いことに、liAPの開始は、培養されたシンシチウムのシグナル伝播を変えませんでした。これは、細胞の完全性が損なわれているが、心筋細胞が膜の穴を介して脱分極していないように見えることを示しています。
この方法には制限があります。エレクトロポレーションと同様に、膜の開口部は、ほとんどの場合、実験コース全体にわたって持続しません。目的の特定の細胞タイプの安定した開口部に必要なレーザーパルスの最小パワーと持続時間の設定は、実験の前に独立して定義する必要があります。我々は、パラメータが異なる細胞タイプ(我々の場合、いくつかのhiPS由来および初代心筋細胞)間で劇的に異なることを見出した(図示せず)。これにより、化合物試験実験中の細胞への不必要なストレスを回避し、より信頼性が高く再現性の高いデータが得られます。セルと電極に明確に焦点を合わせるためにz軸を調整することは非常に重要です。焦点の合っていないカメラ画像は、最適ではないレベルにあるレーザースポットを生成し、細胞膜を開くことができない可能性があります。パラメータを最適に調整しても、liAP効果は過渡的であり、振幅は時間とともに減少します。さらに、細胞の細胞内空間へのアクセスは、同じ電極の連続した開口部内および電極間の両方で、liAP誘導間で変化する。これにより、LiAP振幅の変動性が高くなります。その理由はまだ完全には理解されていません。考えられる説明には、レーザー焦点のドリフトや膜開口部の異なる細胞内局在などの機械的問題が含まれます。これにより、この時点では、試験化合物の振幅効果の分析が複雑になります。また、MEAシステムによる電気的活動の記録には、避けられないベースラインドリフトを補償するためのハイパスフィルタリングが必要です。ここで使用したシステムでは、このフィルタリングは0.1 Hz(このシステムで利用可能な最も低いフィルター設定)に設定されていましたが、プラトー期中のフィルタリング効果は依然として見られ、その結果、心臓APのプラトー期にはベースラインへの電圧偏向の傾向が遅くなりました。これは、ここで使用されているiPS細胞由来のiCell心筋細胞2 のように、制御条件下ですでに>700ミリ秒のAPを生成している、非常に長い基盤となるAPで特に問題になります。フィルタリングの低いシステムを使用すると、AP の形状をより適切に保存し、再分極フェーズの時間経過へのアクセスがさらに向上する可能性があります。
The authors have nothing to disclose.
著者らは、研究中にイントラセルシステムを貸し出してくれたForesee Biosystemsに感謝したい。彼らはまた、技術支援のためにチャン・ヘインに感謝したいと思います。この作業は、助成金契約番号964518(ToxFree)に基づく欧州連合のホライズン2020の研究およびイノベーションプログラム、EUホライズンヨーロッパ欧州イノベーション評議会プログラム、プロジェクトSiMulTox(助成金契約番号101057769)、およびバーデンヴュルテンベルク州経済労働観光省から資金提供を受けています。
1 well MEA chip | Multi Channel Systems MCS GmbH | 890301 | |
6 well MEA chip | Multi Channel Systems MCS GmbH | 7600069 | |
DMSO | Merck KGaA | 20-139 Sigma-Aldrich |
solvent for drugs |
Dofetilide | ALOMONE LABS ISRAEL HEADQUARTERS |
D-100 | Drug-Measurement |
dPBS | Fisher Scientific GmbH | 12037539 | Coating |
E4031 | ALOMONE LABS ISRAEL HEADQUARTERS |
E-500 | Drug-Measurement |
Falcon | Fisher Scientific GmbH | 10788561 | |
FB Alps version 0.5.005 | Foresee Biosystems | ||
Fibronectin | Merck KGaA | 11051407001 | Coating |
iCell cardiomyocytes | FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. (FCDI) |
C1016 | |
IntraCell | Foresee Biosystems | ||
IntraCell | Foresee Biosystems | ||
Isopropanol | Carl Roth GmbH + Co. KG | CN09.1 | For cleaning of MEA contact pads |
Maintenance Medium | FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. (FCDI) |
#M1003 | For cell-culture |
MC_Data Tool | Multi Channel Systems MCS GmbH | Data export | |
MC_Rack | Multi Channel Systems MCS GmbH | MEA recording | |
MEA 2100 – 2×60 – system | Multi Channel Systems MCS GmbH | 890485 | For MEA-recordings |
Nifedipine | Merck KGaA | N7634 Sigma-Aldrich |
Drug-Measurement |
Plating Medium | FUJIFILM Cellular Dynamics, Inc. (FCDI) |
M1001 | For cell-culture |
Tergazyme | VWR International, LLC | 1304-1 | cleaning of MEAs |