Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Visualisierung stammartig wuchernder Zellen in der Qualle Cladonema. Die Whole-mount-Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung mit einem Stammzellmarker ermöglicht den Nachweis stammähnlicher Zellen, und die 5-Ethynyl-2′-Desoxyuridin-Markierung ermöglicht die Identifizierung proliferierender Zellen. Zusammen können aktiv wuchernde stammartige Zellen nachgewiesen werden.
Nesseltiere, einschließlich Seeanemonen, Korallen und Quallen, zeigen vielfältige Morphologie und Lebensstile, die sich in sitzenden Polypen und frei schwimmenden Medusen manifestieren. Wie etablierte Modelle wie Hydra und Nematostella zeigen, tragen Stammzellen und/oder proliferative Zellen zur Entwicklung und Regeneration von Nesseltierpolypen bei. Die zugrunde liegenden zellulären Mechanismen in den meisten Quallen, insbesondere im Medusa-Stadium, sind jedoch weitgehend unklar, und daher ist die Entwicklung einer robusten Methode zur Identifizierung spezifischer Zelltypen von entscheidender Bedeutung. Dieser Artikel beschreibt ein Protokoll zur Visualisierung stammartig proliferierender Zellen in der Hydrozoenqualle Cladonema pacificum. Cladonema medusae besitzen verzweigte Tentakel, die während ihres gesamten Erwachsenenstadiums kontinuierlich wachsen und die Regenerationsfähigkeit aufrechterhalten und eine einzigartige Plattform bieten, um die zellulären Mechanismen zu untersuchen, die von proliferierenden und / oder stammartigen Zellen orchestriert werden. Die Whole-mount-Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung (FISH) unter Verwendung eines Stammzellmarkers ermöglicht den Nachweis stammähnlicher Zellen, während die Pulsmarkierung mit 5-Ethynyl-2′-Desoxyuridin (EdU), einem S-Phasenmarker, die Identifizierung proliferierender Zellen ermöglicht. Durch die Kombination von FISH- und EdU-Markierung können wir aktiv proliferierende stammartige Zellen an festen Tieren nachweisen, und diese Technik kann breit auf andere Tiere angewendet werden, einschließlich Nicht-Modell-Quallenarten.
Cnidaria gilt als basal verzweigter Metazoenstamm, der Tiere mit Nerven und Muskeln enthält, was sie in eine einzigartige Position für das Verständnis der Evolution der Tierentwicklung und -physiologie versetzt 1,2. Nesseltiere werden in zwei Hauptgruppen eingeteilt: Anthozoen (z. B. Seeanemonen und Korallen) besitzen nur Planulalarven und sessilile Polypenstadien, während Medusozoa (Mitglieder von Hydrozoa, Staurozoa, Scyphozoa und Cubozoa) typischerweise die Form von frei schwimmenden Medusen oder Quallen sowie Planulalarven und Polypen annehmen. Nesseltiere weisen häufig eine hohe Regenerationsfähigkeit auf, und ihre zugrunde liegenden zellulären Mechanismen, insbesondere ihr Besitz von adulten Stammzellen und proliferativen Zellen, haben viel Aufmerksamkeit erregt 3,4. Ursprünglich in Hydra identifiziert, befinden sich hydrozoische Stammzellen in den interstitiellen Räumen zwischen ektodermalen Epithelzellen und werden allgemein als interstitielle Zellen oder i-Zellen bezeichnet3.
Hydrozoen-i-Zellen haben gemeinsame Merkmale, darunter Multipotenz, die Expression weit konservierter Stammzellmarker (z. B. Nanos, Piwi, Vasa) und Migrationspotenzial 3,5,6,7,8. Als funktionelle Stammzellen sind i-Zellen umfassend an der Entwicklung, Physiologie und Umweltreaktion von Hydrozoentieren beteiligt, was von ihrer hohen Regenerationsfähigkeit und Plastizität zeugt3. Während Stammzellen, ähnlich wie i-Zellen, außerhalb von Hydrozoen selbst bei der etablierten Modellart Nematostella nicht identifiziert wurden, sind proliferative Zellen immer noch an der Erhaltung und Regeneration von somatischem Gewebe sowie der Keimbahnbeteiligt 9. Da Studien zur Entwicklung und Regeneration von Nesseltieren überwiegend an polypartigen Tieren wie Hydra, Hydractinia und Nematostella durchgeführt wurden, bleiben die zelluläre Dynamik und Funktionen von Stammzellen in Quallenarten weitgehend unberücksichtigt.
Die Hydrozoenqualle Clytia hemisphaerica , eine kosmopolitische Quallenart mit verschiedenen Lebensräumen auf der ganzen Welt, einschließlich des Mittelmeers und Nordamerikas, wurde als experimentelles Modelltier in mehreren Entwicklungs- und Evolutionsstudien verwendet10. Mit seiner geringen Größe, einfachen Handhabung und großen Eiern eignet sich Clytia sowohl für die Laborpflege als auch für die Einführung genetischer Werkzeuge wie der kürzlich etablierten Transgenese- und Knockout-Methoden11, was die Möglichkeit einer detaillierten Analyse der zellulären und molekularen Mechanismen eröffnet, die der Quallenbiologie zugrunde liegen. Im Clytia medusa-Tentakel sind i-Zellen in der proximalen Region, der sogenannten Zwiebel, lokalisiert, und Vorläuferzellen wie Nematoblasten wandern zur distalen Spitze, während sie sich in verschiedene Zelltypen differenzieren, einschließlich Nematozyten12.
Während der Regeneration des Clytia manubrium, dem oralen Organ der Quallen, wandern Nanos1+ i-Zellen, die in den Gonaden vorhanden sind, in die Region, in der das Manubrium als Reaktion auf Schäden verloren geht, und nehmen an der Regeneration des Manubriums teil7. Diese Ergebnisse unterstützen die Idee, dass sich i-Zellen in Clytia auch als funktionelle Stammzellen verhalten, die an der Morphogenese und Regeneration beteiligt sind. Da sich die Eigenschaften von i-Zellen jedoch bei repräsentativen Tieren vom Polyp-Typ wie Hydra und Hydractinia3 unterscheiden, ist es möglich, dass die Eigenschaften und Funktionen von Stammzellen zwischen Quallenarten diversifiziert sind. Darüber hinaus waren mit Ausnahme von Clytia experimentelle Techniken für andere Quallen begrenzt, und die detaillierte Dynamik proliferativer Zellen und Stammzellen ist unbekannt13.
Die Hydrozoenqualle Cladonema pacificum ist ein aufstrebender Modellorganismus, der in einer Laborumgebung ohne Wasserpumpe oder Filtersystem gehalten werden kann. Die Cladonema medusa hat verzweigte Tentakel, ein häufiges Merkmal in der Cladonematidae-Familie, und ein Photorezeptororgan namens Ocellus auf der ektodermalen Schicht in der Nähe der Zwiebel14. Der Tentakelverzweigungsprozess findet an einer neuen Verzweigungsstelle statt, die entlang der adaxialen Seite des Tentakels erscheint. Im Laufe der Zeit verlängern sich die Tentakel weiter und verzweigen sich, wobei die älteren Zweige in Richtung der Spitze15 herausgeschoben werden. Darüber hinaus können sich Cladonema-Tentakel innerhalb weniger Tage nach Amputation regenerieren. Neuere Studien haben die Rolle von proliferierenden Zellen und stammähnlichen Zellen bei der Tentakelverzweigung und Regeneration bei Cladonema16,17 vorgeschlagen. Während jedoch die konventionelle In-situ-Hybridisierung (ISH) verwendet wurde, um die Genexpression in Cladonema sichtbar zu machen, ist es aufgrund ihrer geringen Auflösung derzeit schwierig, die Stammzelldynamik auf zellulärer Ebene im Detail zu beobachten.
Dieser Artikel beschreibt eine Methode zur Visualisierung stammartiger Zellen in Cladonema durch FISH und Co-Färbung mit EdU, einem Marker der Zellproliferation18. Wir visualisieren das Expressionsmuster von Nanos1, einem Stammzellmarker 5,17, mittels FISH, das die Identifizierung einer stammartigen Zellverteilung auf Einzelzellebene ermöglicht. Darüber hinaus ermöglicht die Co-Färbung der Nanos1-Expression mit EdU-Markierung, aktiv proliferierende stammartige Zellen zu unterscheiden. Diese Methode zur Überwachung sowohl stammähnlicher Zellen als auch proliferativer Zellen kann auf eine Vielzahl von Untersuchungsbereichen angewendet werden, einschließlich Tentakelverzweigung, Gewebehomöostase und Organregeneration bei Cladonema, und ein ähnlicher Ansatz kann auf andere Quallenarten angewendet werden.
Proliferierende Zellen und Stammzellen sind wichtige zelluläre Quellen in verschiedenen Prozessen wie Morphogenese, Wachstum und Regeneration21,22. Dieser Artikel beschreibt eine Methode zur Co-Färbung des Stammzellmarkers Nanos1 durch FISH- und EdU-Markierung in Cladonema medusae. Frühere Arbeiten mit EdU- oder BrdU-Markierung haben vorgeschlagen, dass proliferative Zellen in den Tentakelkolben16,17 lokalisieren,…
The authors have nothing to disclose.
Diese Arbeit wurde von AMED unter der Fördernummer JP22gm6110025 (an Y.N.) und von der JSPS KAKENHI Grant Number 22H02762 (an Y.N.) unterstützt.
2-Mercaptoethanol | Wako | 137-06862 | |
3.1 mL transfer pipette | Thermo Scientific | 233-20S | |
5-Bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside (X-Gal) | Wako | 029-15043 | |
anti-DIG-POD | Roche | 11207733910 | |
Cladonema pacificum Nanos1 forward primer | 5’-AAGAGACACAGTCATTATCAAGC GA-3’ |
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Cladonema pacificum Nanos1 reverse primer | 5’-CGACGTGTCCAATTTTACGTGCT -3’ | ||
Cladonema pacificum Piwi forward primer | 5’- AAAAGAGCAGCGGCCAGAAAGA AGGC -3’ |
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Cladonema pacificum Piwi reverse primer | 5’- GCGGGTCGCATACTTGTTGGTA CTGGC -3’ |
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Click-iT EdU Cell Proliferation Kit for Imaging, Alexa Fluor 488 dye | Invitrogen | C10337 | EdU kit |
Coroline off | GEX Co. ltd | N/A | chlorine neutralizer |
DIG Nucleic Acid Detection Kit Blocking Reagent | Roche | 11175041910 | blocking buffer |
DIG RNA labeling mix | Roche | 11277073910 | |
DTT | Promega | P117B | |
ECOS competent cell DH5α | NIPPON GENE | 316-06233 | competent cell |
Fast gene Gel/PCR Extraction kit | Fast gene | FG-91302 | gel extraction kit |
Fast gene plasmid mini kit | Fast gene | FG-90502 | plasmid miniprep |
Formamide | Wako | 068-00426 | |
Heparin sodium salt from porcine | SIGMA-ALDRICH | H3393-10KU | |
Isopropyl-β-D(-)-thiogalactopyranoside (IPTG) | Wako | 096-05143 | |
LB Agar | Invitrogen | 22700-025 | agar plate |
LB Broth Base | Invitrogen | 12780-052 | LB medium |
Maleic acid | Wako | 134-00495 | |
mini Quick spin RNA columns | Roche | 11814427001 | clean-up column |
NaCl | Wako | 191-01665 | |
NanoDrop OneC Microvolume UV-Vis Spectrophotometer with Wi-Fi | Thermo Scientific | ND-ONEC-W | spectrophotometer |
Polyoxyethlene (20) Sorbitan Monolaurate (Tween-20) | Wako | 166-21115 | |
PowerMasher 2 | nippi | 891300 | homogenizer |
Proteinase K | Nacarai Tesque | 29442-14 | |
RNase Inhibitor | TaKaRa | 2313A | |
RNeasy Mini kit | Qiagen | 74004 | total RNA isolation kit |
RQ1 RNase-Free Dnase | Promega | M6101 | |
Saline Sodium Citrate Buffer 20x powder (20x SSC) | TaKaRa | T9172 | |
SEA LIFE | Marin Tech | N/A | mixture of mineral salts |
T3 RNA polymerase | Roche | 11031163001 | |
T7 RNA polymerase | Roche | 10881767001 | |
TAITEC HB-100 | TAITEC | 0040534-000 | Hybridization incuvator |
TaKaRa Ex Taq | TaKaRa | RR001A | Taq DNA polymerase |
TaKaRa PrimeScript 2 1st strand cDNA Synthesis Kit | TaKaRa | 6210A | cDNA synthesis kit |
Target Clone | TOYOBO | TAK101 | pTA2 Vector |
tRNA | Roche | 10109541001 | |
TSA Plus Cyanine 5 | AKOYA Biosciences | NEL745001KT | tyramide signal amplification (TSA) technique |
Zeiss LSM 880 | ZEISS | N/A | laser scanning confocal microscope |