Das vorliegende Protokoll beschreibt ein verallgemeinertes und einfach zu implementierendes Schema für die Datenerfassung von gekippten Einzelpartikeln in Kryo-EM-Experimenten. Ein solches Verfahren ist besonders nützlich, um eine qualitativ hochwertige EM-Karte für Proben zu erhalten, die aufgrund der Einhaltung der Luft-Wasser-Grenzfläche unter einer bevorzugten Orientierungsverzerrung leiden.
Die Einzelpartikelanalyse (SPA) mittels Kryo-Elektronenmikroskopie (Kryo-EM) ist heute eine gängige Technik für die hochauflösende Strukturbiologie. Die Strukturbestimmung durch SPA beruht auf der Gewinnung mehrerer unterschiedlicher Ansichten eines makromolekularen Objekts, das in einer dünnen Eisschicht verglast ist. Im Idealfall würde eine Sammlung von gleichmäßig verteilten zufälligen Projektionsorientierungen alle möglichen Ansichten des Objekts ergeben, was zu Rekonstruktionen führt, die durch eine isotrope Richtungsauflösung gekennzeichnet sind. In der Realität leiden jedoch viele Proben unter bevorzugt orientierten Partikeln, die an der Luft-Wasser-Grenzfläche haften. Dies führt zu ungleichmäßigen Winkelorientierungsverteilungen im Datensatz und inhomogenem Fourier-Raum-Sampling in der Rekonstruktion, was sich in Karten niederschlägt, die durch anisotrope Auflösung gekennzeichnet sind. Die Neigung des Probentisches bietet eine verallgemeinerbare Lösung zur Überwindung der Auflösungsanisotropie durch die Verbesserung der Gleichmäßigkeit der Orientierungsverteilungen und damit der Isotropie der Fourier-Raumabtastung. Das vorliegende Protokoll beschreibt eine automatisierte Datenerfassungsstrategie mit geneigter Stufe unter Verwendung von Leginon, einer Software zur automatisierten Bilderfassung. Das Verfahren ist einfach zu implementieren, erfordert keine zusätzliche Ausrüstung oder Software und ist mit den meisten Standard-Transmissionselektronenmikroskopen (TEMs) kompatibel, die für die Abbildung biologischer Makromoleküle verwendet werden.
Das Aufkommen von Direktelektronendetektorenin den letzten zehn Jahren 1,2,3 hat zu einem exponentiellen Anstieg der Anzahl hochauflösender Strukturen von Makromolekülen und makromolekularen Anordnungen geführt, die mit Einzelpartikel-Kryo-EM 4,5,6 gelöst wurden. Es wird erwartet, dass fast alle gereinigten makromolekularen Spezies für die Strukturbestimmung mittels Kryo-EM geeignet sind, mit Ausnahme der kleinsten Proteine mit einer Größe von ~10 kDa oder unter7. Die Menge an Ausgangsmaterial, die für die Gittervorbereitung und Strukturbestimmung benötigt wird, ist mindestens um eine Größenordnung geringer als bei anderen Strukturbestimmungstechniken wie Kernspinresonanzspektroskopie und Röntgenkristallographie 4,5,6.
Eine grundsätzliche Herausforderung bei der Strukturbestimmung mittels Kryo-EM besteht jedoch in der geeigneten Gittervorbereitung für die Bildgebung. Eine umfangreiche Studie, in der verschiedene Proben unter Verwendung unterschiedlicher Vitrifikationsstrategien und -gitter ausgewertet wurden, deutete darauf hin, dass die meisten Ansätze zur Vitrifizierung von Proben auf Kryo-EM-Gittern zu einer bevorzugten Adhärenz von Makromolekülen an der Luft-Wasser-Grenzfläche führen8. Eine solche Adhärenz kann potenziell zu vier suboptimalen Ergebnissen führen: (1) Die makromolekulare Probe denaturiert vollständig, in diesem Fall ist keine erfolgreiche Datenerhebung und -verarbeitung möglich; (2) Die Probe denaturiert teilweise, in diesem Fall kann es möglich sein, strukturelle Einblicke aus Regionen des Makromoleküls zu erhalten, die nicht beschädigt sind. (3) Die Probe behält ihre native Struktur bei, aber in den Bildern wird nur ein Satz von Teilchenorientierungen relativ zur Richtung des Elektronenstrahls dargestellt. (4) Die Probe behält ihre native Struktur bei, und einige, aber nicht alle möglichen Partikelorientierungen relativ zur Richtung des Elektronenstrahls sind in den Bildern dargestellt. In den Fällen (3) und (4) hilft die geneigte Datenerfassung bei der Minimierung der Anisotropie der Richtungsauflösung, die sich auf die rekonstruierte Kryo-EM-Karte auswirkt, und bietet eine verallgemeinerbare Lösung für eine Vielzahl von Proben9. Technisch gesehen kann die Neigung auch im Fall (2) von Vorteil sein, da die Denaturierung vermutlich an der Luft-Wasser-Grenzfläche stattfindet und in ähnlicher Weise die Anzahl der in den Daten dargestellten unterschiedlichen Orientierungen begrenzt. Das Ausmaß der Orientierungsverzerrung im Datensatz kann möglicherweise durch das Experimentieren mit Lösungsadditiven verändert werden, aber ein Mangel an breiter Anwendbarkeit behindert diese Trial-and-Error-Ansätze. Das Kippen des Probentisches um einen einzigen optimierten Neigungswinkel reicht aus, um die Verteilung der Orientierungen durch Änderung der Geometrie des Abbildungsexperiments9 zu verbessern (Abbildung 1). Aufgrund der geometrischen Konfiguration der bevorzugt ausgerichteten Probe in Bezug auf den Elektronenstrahl erzeugt die Neigung des Gitters für jeden Cluster bevorzugter Orientierungen einen Kegel von Beleuchtungswinkeln in Bezug auf den Cluster-Schwerpunkt. Dadurch werden die Ansichten ausgeweitet und folglich die Fourier-Raumabtastung und die Isotropie der Richtungsauflösung verbessert.
In der Praxis gibt es einige Nachteile, wenn man die Bühne kippt. Durch das Kippen des Probentisches wird ein Fokusgradient über das Sichtfeld eingeführt, der sich auf die Genauigkeit der CTF-Schätzungen (Contrast Transfer Function) auswirken kann. Die geneigte Datenerfassung kann auch zu einer erhöhten strahlinduzierten Partikelbewegung führen, die durch erhöhte Aufladungseffekte bei der Abbildung geneigter Proben verursacht wird. Die Gitterneigung führt auch zu einer Zunahme der scheinbaren Eisdicke, was wiederum zu verrauschten Schliffbildern führt und letztendlich die Auflösung von Rekonstruktionen beeinflussenkann 5,9,10. Es kann möglich sein, diese Probleme zu überwinden, indem fortgeschrittene computergestützte Datenverarbeitungsschemata angewendet werden, die in den Protokoll- und Diskussionsabschnitten kurz beschrieben werden. Schließlich kann das Kippen zu einer erhöhten Partikelüberlappung führen, was die nachfolgende Bildverarbeitungspipeline behindert. Obwohl dies bis zu einem gewissen Grad durch die Optimierung der Partikelkonzentration im Netz gemildert werden kann, ist dies dennoch ein wichtiger Aspekt. Hier wird ein einfach zu implementierendes Protokoll für die geneigte Datenerfassung mit der Leginon Software Suite (einer automatisierten Bilderfassungssoftware) beschrieben, das frei zugänglich und mit einer breiten Palette von Mikroskopenkompatibel ist 11,12,13,14. Die Methode erfordert mindestens Version 3.0 oder höher, wobei die Version 3.3 ab Version 3.3 dedizierte Verbesserungen enthält, um eine geneigte Datenerfassung zu ermöglichen. Für dieses Protokoll ist keine zusätzliche Software oder Ausrüstung erforderlich. Ausführliche Anweisungen zur Recheninfrastruktur und zu Installationsanleitungen finden Sie an anderer Stelle15.
Die bevorzugte Partikelorientierung, die durch die Anhaftung der Probe an der Luft-Wasser-Grenzfläche verursacht wird, ist einer der letzten großen Engpässe bei der routinemäßigen hochauflösenden Strukturbestimmung mit Kryo-EM SPA 4,5,6. Das hier vorgestellte Datenerhebungsschema bietet eine einfach zu implementierende Strategie zur Verbesserung der Orientierungsverteilung von Partikeln innerhalb eines Datensatzes. Wir wei…
The authors have nothing to disclose.
Wir danken Bill Anderson, Charles Bowman und Jean-Christophe Ducom (TSRI) für ihre Hilfe bei der Mikroskopie, den Leginon-Installationen und der Datenübertragungsinfrastruktur. Wir danken auch Gordon Louie (Salk Institute) und Yong Zi Tan (National University of Singapore) für die kritische Lektüre des Manuskripts. Wir danken Chris Russo (MRC Laboratory of Molecular Biology, Cambridge) für die Bereitstellung des Plasmids für die Expression von DPS. Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse der US National Institutes of Health (U54AI150472, U54 AI170855 und R01AI136680 an DL), der National Science Foundation (NSF MCB-2048095 an DL), der Hearst Foundations (an DL) und des Arthur and Julie Woodrow Chair (an J. P. N.) unterstützt.
Cryosparc Live v3.1.0+210216 | Structura Biotechnology | ||
DPS protein | Purification adapted from protocol described in K.Naydenova et al IUCrJ. 2019 Nov 1; 6(Pt 6): 1086–1098. | ||
K2 Summit Direct Electron Detector | Gatan | ||
Leginon software suite | C Suloway et al Journal of Structural Biology 151 (1): pp. 41-60. | ||
Manual plunging device | Homemade guillotine-like device for vitrification of EM grids | ||
Talos Arctica | FEI/Thermo Fisher | ||
UltrAufoil R1.2/1.3 300 mesh grids | Quantifoil | N1-A14nAu30-01 |