Summary

Single-Particle Cryo-EM Data Collection met Stage Tilt met Leginon

Published: July 01, 2022
doi:

Summary

Het huidige protocol beschrijft een gegeneraliseerd en eenvoudig te implementeren schema voor het verzamelen van gekantelde gegevens met één deeltje in cryo-EM-experimenten. Een dergelijke procedure is vooral nuttig voor het verkrijgen van een hoogwaardige EM-kaart voor monsters die lijden aan preferentiële oriëntatiebias als gevolg van de naleving van de lucht-waterinterface.

Abstract

Single-particle analysis (SPA) door cryo-elektronenmicroscopie (cryo-EM) is nu een mainstream techniek voor hoge resolutie structurele biologie. Structuurbepaling door SPA is gebaseerd op het verkrijgen van meerdere verschillende weergaven van een macromoleculair object dat verglaasd is in een dunne laag ijs. Idealiter zou een verzameling van uniform verdeelde willekeurige projectieoriëntaties neerkomen op alle mogelijke weergaven van het object, wat aanleiding geeft tot reconstructies die worden gekenmerkt door isotrope directionele resolutie. In werkelijkheid hebben veel monsters echter last van bij voorkeur georiënteerde deeltjes die zich hechten aan het lucht-water-grensvlak. Dit leidt tot niet-uniforme hoekoriëntatieverdelingen in de dataset en inhomogene Fourier-ruimtebemonstering in de reconstructie, wat zich vertaalt in kaarten die worden gekenmerkt door anisotrope resolutie. Het kantelen van de monsterfase biedt een generaliseerbare oplossing voor het overwinnen van resolutie-anisotropie door het verbeteren van de uniformiteit van oriëntatieverdelingen, en dus de isotropie van Fourier-ruimtebemonstering. Het huidige protocol beschrijft een gekantelde geautomatiseerde gegevensverzamelingsstrategie met behulp van Leginon, een software voor geautomatiseerde beeldacquisitie. De procedure is eenvoudig te implementeren, vereist geen extra apparatuur of software en is compatibel met de meeste standaard transmissie-elektronenmicroscopen (TEM’s) die worden gebruikt voor het afbeelden van biologische macromoleculen.

Introduction

De komst van directe elektronendetectoren in het afgelopen decennium 1,2,3 heeft geleid tot een exponentiële toename van het aantal hoge-resolutiestructuren van macromoleculen en macromoleculaire assemblages opgelost met behulp van cryo-EM 4,5,6 met één deeltje. Bijna alle gezuiverde macromoleculaire soorten zijn naar verwachting vatbaar voor structuurbepaling met behulp van cryo-EM, behalve de kleinste eiwitten ~ 10 kDa in grootte of lager dan7. De hoeveelheid uitgangsmateriaal die nodig is voor rastervoorbereiding en structuurbepaling is ten minste een orde van grootte kleiner dan andere structuurbepalingstechnieken, zoals kernspinresonantiespectroscopie en röntgenkristallografie 4,5,6.

Een belangrijke uitdaging voor structuurbepaling door cryo-EM is echter een geschikte rastervoorbereiding voor beeldvorming. Een uitgebreide studie die diverse monsters evalueerde met behulp van verschillende vitrificatiestrategieën en -roosters suggereerde dat de meeste benaderingen voor het verglazen van monsters op cryo-EM-roosters leiden tot preferentiële hechting van macromoleculen aan de lucht-waterinterface8. Een dergelijke hechting kan mogelijk vier suboptimale uitkomsten veroorzaken: (1) het macromoleculaire monster denatureert volledig, in welk geval geen succesvolle gegevensverzameling en -verwerking mogelijk is; (2) het monster denatureert gedeeltelijk, in welk geval het mogelijk kan zijn om structurele inzichten te verkrijgen uit gebieden van het macromolecuul die niet zijn beschadigd; (3) het monster behoudt de oorspronkelijke structuur, maar slechts één reeks deeltjesoriëntaties ten opzichte van de richting van de elektronenbundel wordt in de afbeeldingen weergegeven; (4) Het monster behoudt de oorspronkelijke structuur en sommige, maar niet alle mogelijke deeltjesoriëntaties ten opzichte van de richting van de elektronenbundel worden weergegeven in de afbeeldingen. Voor gevallen (3) en (4) zal gekantelde gegevensverzameling helpen bij het minimaliseren van directionele resolutie-anisotropie die de gereconstrueerde cryo-EM-kaart beïnvloedt en biedt een generaliseerbare oplossing voor een breed scala aan monsters9. Technisch gezien kan kantelen ook het geval (2) ten goede komen, omdat de denaturatie vermoedelijk plaatsvindt op het lucht-water-grensvlak en op dezelfde manier het aantal verschillende oriëntaties beperkt dat in de gegevens wordt weergegeven. De mate van oriëntatiebias in de dataset kan mogelijk worden gewijzigd door te experimenteren met oplossingsadditieven, maar een gebrek aan brede toepasbaarheid belemmert deze trial-and-error-benaderingen. Het kantelen van de monstertrap onder een enkele geoptimaliseerde kantelhoek is voldoende om de verdeling van oriëntaties te verbeteren door de geometrie van het beeldvormingsexperiment9 te wijzigen (figuur 1). Vanwege de geometrische configuratie van het bij voorkeur georiënteerde monster ten opzichte van de elektronenbundel, genereert het kantelen van het raster voor elk cluster van voorkeursoriëntaties een kegel van verlichtingshoeken ten opzichte van het clustercentroïde. Dit spreidt de weergaven dus en verbetert bijgevolg fourierruimtebemonstering en de isotropie van directionele resolutie.

Er kleven in de praktijk wel wat nadelen aan het kantelen van het podium. Het kantelen van de monsterfase introduceert een focusverloop over het gezichtsveld, wat van invloed kan zijn op de nauwkeurigheid van CTF-schattingen (Contrast Transfer Function). Gekantelde gegevensverzameling kan ook leiden tot een verhoogde door de bundel geïnduceerde deeltjesbeweging veroorzaakt door verhoogde ladingseffecten bij het in beeld brengen van gekantelde monsters. Rasterkanteling leidt ook tot een toename van de schijnbare ijsdikte, wat op zijn beurt leidt tot luidruchtigere micrografieën en uiteindelijk de resolutie van reconstructies kan beïnvloeden 5,9,10. Het is mogelijk om deze problemen op te lossen door geavanceerde computationele gegevensverwerkingsschema’s toe te passen die kort worden beschreven in de protocol- en discussiesecties. Ten slotte kan kantelen leiden tot een grotere overlapping van deeltjes, waardoor de daaropvolgende beeldverwerkingspijplijn wordt belemmerd. Hoewel dit tot op zekere hoogte kan worden verzacht door de deeltjesconcentratie op het net te optimaliseren, is het toch een belangrijke overweging. Hier wordt een eenvoudig te implementeren protocol beschreven voor gekantelde gegevensverzameling met behulp van de Leginon-softwaresuite (een geautomatiseerde beeldacquisitiesoftware), beschikbaar open access en compatibel met een breed scala aan microscopen11,12,13,14. De methode vereist ten minste versie 3.0 of hoger, met versies 3.3 en hoger die speciale verbeteringen bevatten om gekantelde gegevensverzameling mogelijk te maken. Voor dit protocol is geen extra software of apparatuur nodig. Uitgebreide instructies over computationele infrastructuur en installatiehandleidingen zijn elders te vinden15.

Protocol

1. Monstervoorbereiding Gebruik rasters met goudfolie en goudrastersteun16 (zie materiaaltabel) omdat gekantelde gegevensverzameling door bundelgeïnduceerde beweging 17 kan accentueren.OPMERKING: Voor dit onderzoek werden monsters op roosters verglaasd met behulp van de handmatige plof- en blottingtechniek18 in een bevochtigde (meer dan 80%) koelruimte (~4 °C). Vermijd het gebruik van rooste…

Representative Results

DPS bij 0,3 mg/ml werd gebruikt om beeldvorming bij 0°, 30° en 60° kanteling te demonstreren. Gegevens van verschillende kantelhoeken werden verzameld op hetzelfde raster in verschillende rastergebieden. CTF-resolutie past bij hogere hoekkantelingen zijn meestal slechter, zoals het geval was bij het vergelijken van de drie datasets in deze studie. Figuur 4 toont vergelijkende representatieve beelden en 2D-classificatiegemiddelden. Hoewel de eiwitconcentratie onveranderd is over de verschi…

Discussion

De voorkeursoriëntatie van deeltjes veroorzaakt door de hechting van het monster aan de lucht-waterinterface is een van de laatste grote knelpunten voor routinematige structuurbepaling met hoge resolutie met behulp van cryo-EM SPA 4,5,6. Het hier gepresenteerde schema voor gegevensverzameling biedt een eenvoudig te implementeren strategie voor het verbeteren van de oriëntatieverdeling van deeltjes binnen een dataset. We merken…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We danken Bill Anderson, Charles Bowman en Jean-Christophe Ducom (TSRI) voor hun hulp bij microscopie, Leginon-installaties en infrastructuur voor gegevensoverdracht. We bedanken ook Gordon Louie (Salk Institute) en Yong Zi Tan (National University of Singapore) voor het kritisch lezen van het manuscript. We danken Chris Russo (MRC Laboratory of Molecular Biology, Cambridge) voor het verstrekken van het plasmide voor expressie van DPS. Dit werk werd ondersteund door subsidies van de Amerikaanse National Institutes of Health (U54AI150472, U54 AI170855 en R01AI136680 aan DL), de National Science Foundation (NSF MCB-2048095 aan DL), de Hearst Foundations (aan DL) en Arthur en Julie Woodrow Chair (aan J. P. N.).

Materials

Cryosparc Live v3.1.0+210216 Structura Biotechnology
DPS protein Purification adapted from protocol described in K.Naydenova et al IUCrJ. 2019 Nov 1; 6(Pt 6): 1086–1098.
K2 Summit Direct Electron Detector Gatan
Leginon software suite C Suloway et al Journal of Structural Biology 151 (1): pp. 41-60.
Manual plunging device Homemade guillotine-like device for vitrification of EM grids
Talos Arctica FEI/Thermo Fisher
UltrAufoil R1.2/1.3 300 mesh grids Quantifoil N1-A14nAu30-01

References

  1. Campbell, M. G., et al. Movies of ice-embedded particles enhance resolution in electron cryo-microscopy. Structure. 20 (11), 1823-1828 (2012).
  2. Bai, X. C., Fernandez, I. S., McMullan, G., Scheres, S. H. Ribosome structures to near-atomic resolution from thirty thousand cryo-EM particles. Elife. 2, 00461 (2013).
  3. Li, X. Electron counting and beam-induced motion correction enable near-atomic-resolution single-particle cryo-EM. Nature Methods. 10 (6), 584-590 (2013).
  4. Chua, E. Y. D., et al. cheaper: recent advances in cryo-electron microscopy. Annual Review of Biochemistry. , (2022).
  5. Lyumkis, D. Challenges and opportunities in cryo-EM single-particle analysis. Journal of Biological Chemistry. 294 (13), 5181-5197 (2019).
  6. Wu, M., Lander, G. C. Present and emerging methodologies in Cryo-EM single-particle analysis. Biophysical Journal. 119 (7), 1281-1289 (2020).
  7. Henderson, R. The potential and limitations of neutrons, electrons and X-rays for atomic resolution microscopy of unstained biological molecules. Quarterly Reviews of Biophysics. 28 (2), 171-193 (1995).
  8. Noble, A. J., et al. Routine single particle CryoEM sample and grid characterization by tomography. Elife. 7, 34257 (2018).
  9. Tan, Y. Z., et al. Addressing preferred specimen orientation in single-particle cryo-EM through tilting. Nature Methods. 14 (8), 793-796 (2017).
  10. Punjani, A., Rubinstein, J. L., Fleet, D. J., Brubaker, M. A. cryoSPARC: algorithms for rapid unsupervised cryo-EM structure determination. Nature Methods. 14 (3), 290-296 (2017).
  11. Potter, C. S., et al. Leginon: a system for fully automated acquisition of 1000 electron micrographs a day. Ultramicroscopy. 77 (3-4), 153-161 (1999).
  12. Suloway, C., et al. Automated molecular microscopy: The new Leginon system. Journal of Structural Biology. 151 (1), 41-60 (2005).
  13. Cheng, A., et al. Leginon: New features and applications. Protein Science. 30 (1), 136-150 (2021).
  14. Carragher, B., et al. Leginon: An automated system for acquisition of images from vitreous ice specimens. Journal of Structural Biology. 132 (1), 33-45 (2000).
  15. . NYSBC.org Homepage Available from: https://emg.nysbc.org/redmine/projects/leginon/wiki/Leginon_Homepage (2022)
  16. Russo, C. J., Passmore, L. A. Electron microscopy: Ultrastable gold substrates for electron cryomicroscopy. Science. 346, 1377-1380 (2014).
  17. Russo, C. J., Henderson, R. Charge accumulation in electron cryomicroscopy. Ultramicroscopy. 187, 43-49 (2018).
  18. Nguyen, H. P. M., McGuire, K. L., Cook, B. D., Herzik, M. A. Manual blot-and-plunge freezing of biological specimens for single-particle cryogenic electron microscopy. Journal of Visualized Experiments. (180), e62765 (2022).
  19. Patel, A., Toso, D., Litvak, A., Nogales, E. Efficient graphene oxide coating improves cryo-EM sample preparation and data collection from tilted grids. bioRxiv. , (2021).
  20. Naydenova, K., Peet Mathew, J., Russo Christopher J, J. Multifunctional graphene supports for electron cryomicroscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (24), 11718-11724 (2019).
  21. Naydenova, K., et al. CryoEM at 100 keV: a demonstration and prospects. IUCrJ. 6 (6), 1086-1098 (2019).
  22. Herzik, M. A., Gonen, T., Nannenga, B. L. . cryoEM: Methods and Protocols. , 125-144 (2021).
  23. Cash, J. N., Kearns, S., Li, Y., Cianfrocco, M. A. High-resolution cryo-EM using beam-image shift at 200 keV. IUCrJ. 7 (6), 1179-1187 (2020).
  24. Peck, J. V., Fay, J. F., Strauss, J. D. High-speed high-resolution data collection on a 200 keV cryo-TEM. IUCrJ. 9 (2), 243-252 (2022).
  25. Bouvette, J., et al. Beam image-shift accelerated data acquisition for near-atomic resolution single-particle cryo-electron tomography. Nature Communications. 12 (1), 1957 (1957).
  26. Cheng, A., et al. High resolution single particle cryo-electron microscopy using beam-image shift. Journal of Structural Biology. 204 (2), 270-275 (2018).
  27. Tegunov, D., Cramer, P. Real-time cryo-electron microscopy data preprocessing with Warp. Nature Methods. 16 (11), 1146-1152 (2019).
  28. . Structura Biotechnology Inc Available from: https://cryosparc.com/live (2022)
  29. DiIorio, M. C., Kulczyk, A. W. A robust single-particle cryo-electron microscopy (cryo-EM) processing workflow with cryoSPARC, RELION, and Scipion. Journal of Visualized Experiments. (179), e63387 (2022).
  30. Baldwin, P. R., Lyumkis, D. Non-uniformity of projection distributions attenuates resolution in Cryo-EM. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 150, 160-183 (2020).
  31. Baldwin, P. R., Lyumkis, D. Tools for visualizing and analyzing Fourier space sampling in Cryo-EM. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 160, 53-65 (2021).
  32. Aiyer, S., Zhang, C., Baldwin, P. R., Lyumkis, D., Gonen, T., Nannenga, B. L. . cryoEM: Methods and Protocols. , 161-187 (2021).
  33. Glaeser, R. M., et al. Defocus-dependent Thon-ring fading). Ultramicroscopy. 222, 113213 (2021).

Play Video

Cite This Article
Aiyer, S., Strutzenberg, T. S., Bowman, M. E., Noel, J. P., Lyumkis, D. Single-Particle Cryo-EM Data Collection with Stage Tilt using Leginon. J. Vis. Exp. (185), e64136, doi:10.3791/64136 (2022).

View Video