Le présent protocole décrit une méthode simple pour isoler les préadipocytes du tissu adipeux dans les embryons de poulets de chair. Cette méthode permet l’isolement avec un rendement élevé, la culture primaire et la différenciation adipogénique des préadipocytes. La coloration à l’huile Red O et la coloration lipidique/ADN ont mesuré la capacité adipogénique des cellules isolées induites par des milieux de différenciation.
Les préadipocytes primaires sont un système expérimental précieux pour comprendre les voies moléculaires qui contrôlent la différenciation et le métabolisme des adipocytaires. Les embryons de poulet offrent la possibilité d’isoler les préadipocytes dès le stade le plus précoce du développement adipeux. Cette cellule primaire peut être utilisée pour identifier les facteurs influençant la prolifération des préadipoocytes et la différenciation adipogénique, ce qui en fait un modèle précieux pour les études liées à l’obésité infantile et au contrôle des dépôts de graisse excessifs chez la volaille. La croissance rapide du tissu adipeux postnatal gaspille efficacement les aliments en les allouant loin de la croissance musculaire chez les poulets de chair. Par conséquent, les méthodes permettant de comprendre les premiers stades du développement du tissu adipeux peuvent fournir des indices pour réguler cette tendance et identifier des moyens de limiter l’expansion adipeuse tôt dans la vie. La présente étude a été conçue pour développer une méthode efficace d’isolement, de culture primaire et de différenciation adipogénique des préadipocytes isolés du développement du tissu adipeux d’embryons de poussins de poulets de chair commerciaux (type viande). La procédure a été optimisée pour produire des cellules avec une viabilité élevée (~ 98%) et une capacité accrue à se différencier en adipocytes matures. Cette méthode simple d’isolement, de culture et de différenciation des préadipocytes embryonnaires soutient les analyses fonctionnelles de la croissance et du développement des graisses au début de la vie.
L’obésité est une menace pour la santé mondiale des adultes et des enfants. Les enfants en surpoids ou obèses sont environ cinq fois plus susceptibles d’être obèses à l’âge adulte, ce qui les expose à un risque considérablement accru de maladie cardiovasculaire, de diabète et de nombreuses autres comorbidités. Environ 13,4% des enfants américains âgés de 2 à 5 ans souffrent d’obésité1, ce qui illustre que la tendance à accumuler un excès de graisse corporelle peut être déclenchée très tôt dans la vie. Pour des raisons très différentes, l’accumulation d’excès de tissu adipeux est une préoccupation pour les poulets de chair (type viande). Les poulets de chair modernes sont incroyablement efficaces, mais accumulent toujours plus de lipides que ce qui est physiologiquement nécessaire 2,3. Cette tendance commence peu de temps après l’éclosion et gaspille efficacement les aliments, le composant de production le plus coûteux, en les allouant loin de la croissance musculaire. Par conséquent, tant pour les enfants que pour les poulets de chair, bien que pour des raisons très différentes, il est nécessaire de comprendre les facteurs qui influencent le développement du tissu adipeux et d’identifier des moyens de limiter l’expansion adipeuse tôt dans la vie.
Les adipocytes se forment à partir de préadipocytes, des cellules souches dérivées du tissu adipeux qui subissent une différenciation pour développer des cellules graisseuses matures stockant les lipides. En conséquence, les préadipocytes in vitro sont un modèle expérimental précieux pour les études sur l’obésité. Ces cellules, isolées de la fraction vasculaire stromale des dépôts adipeux, peuvent fournir une compréhension fondamentale des voies moléculaires contrôlant la différenciation et le métabolisme des adipocytaires 4,5. Les embryons de poussins sont un modèle expérimental favorable dans les études de développement, car la culture des œufs selon le calendrier souhaité facilite la manipulation expérimentale, car elle permet d’obtenir des embryons sans le sacrifice de la mère pour observer une série de stades de développement des embryons. De plus, des procédures chirurgicales compliquées et de longues périodes de temps ne sont pas nécessaires pour obtenir des embryons par rapport à des modèles animaux plus grands. Par conséquent, l’embryon de poussin présente une opportunité d’obtenir des préadipocytes dès les premiers stades du développement du tissu adipeux. Le tissu adipeux sous-cutané devient visible chez le poussin vers le jour embryonnaire 12 (E12) comme un dépôt clairement défini situé autour de la cuisse. Ce dépôt est enrichi en préadipocytes hautement prolifératifs qui subissent activement une différenciation sous les signaux de développement pour former des adipocytes matures 6,7. Le processus de différenciation adipogène est comparable entre les poulets et les humains. Par conséquent, les préadipocytes isolés à partir d’embryons de poussins peuvent être utilisés comme modèle à double usage pour des études pertinentes pour les humains et la volaille. Cependant, le rendement des préadipocytes diminue avec le vieillissement à mesure que les cellules se développent en adipocytes matures5.
Le présent protocole optimise l’isolement des préadipocytes du tissu adipeux au cours du stade (E16-E18) auquel la différenciation adipogénique et l’hypertrophie adipocytaire sont à leur apogée chez les embryons de poussins de poulet de chair8. Cette procédure peut évaluer les effets des facteurs auxquels l’embryon en développement est exposé in ovo, tels que le régime alimentaire de la poule, sur le développement des adipocytes et le potentiel adipogène ex vivo. Il peut également tester l’impact de diverses manipulations (par exemple, l’hypoxie, les ajouts de nutriments, les agonistes pharmacologiques et les antagonistes) sur l’adipogenèse ou les divers ‘omes (par exemple, transcriptome, métabolome, méthylome) des progéniteurs adipocytaires. En tant que représentation du stade le plus précoce de la formation adipeuse, les cellules obtenues à l’aide de ce protocole sont des modèles précieux pour les études pertinentes pour la volaille et les humains.
Bien que plusieurs protocoles bien décrits aient rapporté l’isolement des préadipocytes 14,15,16,17, l’isolement des préadipocytes embryonnaires a été optimisé, ce qui peut être utilisé pour les analyses fonctionnelles de la croissance et du développement des graisses au début de la vie chez les poussins de poulet de chair. Ce protocole produit des progéniteurs adipocytaires emb…
The authors have nothing to disclose.
Les auteurs remercient UT AgResearch et le Département des sciences animales d’avoir soutenu et optimisé ce protocole. Ce travail a été financé par une subvention de l’USDA.
1 mL Pipette | Eppendorf | Z683825 | Single Channel Pipette, 100 – 1000 µL |
1 mL Pipette Tip | Fisher Scientific | 02-707-402 | |
100% Isopropanol | Fisher Scientific | A426P4 | |
1x PBS | Gibco | 10010023 | |
25 mL Flask | Pyrex | 4980-25 | |
37% Formaldehyde | Fisher Scientific | F75P-1GAL | |
6-Well Plate | Falcon | 353046 | Tissue Culture-treated |
96-Well Assay Plate | Costar | 3632 | |
96-Well Plate, Black Bottom | Costar | 3603 | Tissue Culture-treated |
AdipoRed | Lonza | PT-7009 | |
Amphotericin B | Gibco | 15290026 | |
Bench Top Wiper (Kimtechwiper) | Kimberly-Clark | 34155 | |
Betadine | Up & Up | NDC 1167300334 | 20% Working Solution |
Cell Counter | Corning | 6749 | |
Cell Strainer, 40 µm | SPL | 93040 | |
Centrifugaton | Eppendorf | 5702 | |
Chicken Serum | Gibco | 16110082 | |
Conical Centrifuge Tubes, 15 mL | VWR | 10025-690 | |
Conical Centrifuge Tubes, 50 mL | Falcon | 352098 | |
Cryovial | Nunc | 343958 | |
Curved Forceps, 100 mm | Roboz Surgical | RS-5137 | |
Curved Surgical Scissors, 115 mm | Roboz Surgical | RS-6839 | |
Distilled Water | Millipore | SYNSV0000 | Despensed as needed |
DMEM/F12 | HyClone | SH30023.01 | |
DMSO | Sigma | D2650 | |
Ethanol | Decon Labs | 2701 | 70% Working Solution |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Gibco | 10437028 | |
Fluorescent Microscope | Evos | M7000 | |
Fluorescent Plate Reader | Biotek | Synergy H1 | |
Foil | Reynolds | Reynolds Wrap Heavy Duty Aluminum Foil, 125 SQ. FT. | |
Freezing Container | Thermo Scientific | 5100-0001 | |
Gelatin | Millipore | 4055 | 2% Working Solution |
Hematocytometer (Counting Chamber) | Corning | 480200 | 0.1 mm deep |
Incubator | Fisher Scientific | 6845 | |
Instrument Sterilizer | VWR | B1205 | |
Linoleic Acid-Oleic Acid-Albumin | Sigma | L9655 | 1x Working Solution |
Microscope | Evos | AMEX1000 | |
Multi-Channel Pipette | Thermo Scientific | 4661070 | 12-Channel Pipetters, 30 – 300 µL |
Na2HPO4 | Sigma | S-7907 | |
NaH2PO4 | Sigma | S-3139 | |
NucBlue | Invitrogen | R37605 | |
Oil Red O | Sigma | O-0625 | |
Orbital Shaker | IKA | KS130BS1 | |
Paper Towel | Tork | RK8002 | |
Parafilm | Parafilm M | PM996 | |
Penicillin/Steptomycin (P/S) | Gibco | 15140122 | 1x Working Solution |
Petri dishes, 100 mm | Falcon | 351029 | |
Petri dishes, 60 mm | Falcon | 351007 | |
Plate Shaker | VWR | 200 | |
RBC Lysis Buffer | Roche | 11814389001 | |
Reagent Reservior | VWR | 89094-680 | |
Small Beaker, 100 mL | Pyrex | 1000-100 | |
Spectrophotometer Plate Reader | Biotek | Synergy H1 | |
Sterile Gauze | McKesson | 762703 | |
Straight Forceps, 120 mm | Roboz Surgical | RS-4960 | |
Straight Scissors, 140 mm | Roboz Surgical | RS-6762 | |
T-25 Flask | Corning | 430639 | Tissue Culture-treated |
Tissue Culture Incubator | Thermo Scientific | 50144906 | |
Tissue Strainer, 250 µm | Pierce | 87791 | |
Trypan Blue Stain | Gibco | 15250061 | |
Trypsin | Gibco | 15400054 | 0.1% Working Solution |
Tweezers, 110 mm | Roboz Surgical | RS-5035 | |
Type 1 Collagenase | Gibco | 17100017 | |
Water Bath | Fisher Scientific | 15-462-10 | |
Whatman Grade 1 Filter Paper | Whatman | 1001-110 |