Summary

Isolement des préadipocytes à partir d’embryons de poussins de poulet de chair

Published: August 04, 2022
doi:

Summary

Le présent protocole décrit une méthode simple pour isoler les préadipocytes du tissu adipeux dans les embryons de poulets de chair. Cette méthode permet l’isolement avec un rendement élevé, la culture primaire et la différenciation adipogénique des préadipocytes. La coloration à l’huile Red O et la coloration lipidique/ADN ont mesuré la capacité adipogénique des cellules isolées induites par des milieux de différenciation.

Abstract

Les préadipocytes primaires sont un système expérimental précieux pour comprendre les voies moléculaires qui contrôlent la différenciation et le métabolisme des adipocytaires. Les embryons de poulet offrent la possibilité d’isoler les préadipocytes dès le stade le plus précoce du développement adipeux. Cette cellule primaire peut être utilisée pour identifier les facteurs influençant la prolifération des préadipoocytes et la différenciation adipogénique, ce qui en fait un modèle précieux pour les études liées à l’obésité infantile et au contrôle des dépôts de graisse excessifs chez la volaille. La croissance rapide du tissu adipeux postnatal gaspille efficacement les aliments en les allouant loin de la croissance musculaire chez les poulets de chair. Par conséquent, les méthodes permettant de comprendre les premiers stades du développement du tissu adipeux peuvent fournir des indices pour réguler cette tendance et identifier des moyens de limiter l’expansion adipeuse tôt dans la vie. La présente étude a été conçue pour développer une méthode efficace d’isolement, de culture primaire et de différenciation adipogénique des préadipocytes isolés du développement du tissu adipeux d’embryons de poussins de poulets de chair commerciaux (type viande). La procédure a été optimisée pour produire des cellules avec une viabilité élevée (~ 98%) et une capacité accrue à se différencier en adipocytes matures. Cette méthode simple d’isolement, de culture et de différenciation des préadipocytes embryonnaires soutient les analyses fonctionnelles de la croissance et du développement des graisses au début de la vie.

Introduction

L’obésité est une menace pour la santé mondiale des adultes et des enfants. Les enfants en surpoids ou obèses sont environ cinq fois plus susceptibles d’être obèses à l’âge adulte, ce qui les expose à un risque considérablement accru de maladie cardiovasculaire, de diabète et de nombreuses autres comorbidités. Environ 13,4% des enfants américains âgés de 2 à 5 ans souffrent d’obésité1, ce qui illustre que la tendance à accumuler un excès de graisse corporelle peut être déclenchée très tôt dans la vie. Pour des raisons très différentes, l’accumulation d’excès de tissu adipeux est une préoccupation pour les poulets de chair (type viande). Les poulets de chair modernes sont incroyablement efficaces, mais accumulent toujours plus de lipides que ce qui est physiologiquement nécessaire 2,3. Cette tendance commence peu de temps après l’éclosion et gaspille efficacement les aliments, le composant de production le plus coûteux, en les allouant loin de la croissance musculaire. Par conséquent, tant pour les enfants que pour les poulets de chair, bien que pour des raisons très différentes, il est nécessaire de comprendre les facteurs qui influencent le développement du tissu adipeux et d’identifier des moyens de limiter l’expansion adipeuse tôt dans la vie.

Les adipocytes se forment à partir de préadipocytes, des cellules souches dérivées du tissu adipeux qui subissent une différenciation pour développer des cellules graisseuses matures stockant les lipides. En conséquence, les préadipocytes in vitro sont un modèle expérimental précieux pour les études sur l’obésité. Ces cellules, isolées de la fraction vasculaire stromale des dépôts adipeux, peuvent fournir une compréhension fondamentale des voies moléculaires contrôlant la différenciation et le métabolisme des adipocytaires 4,5. Les embryons de poussins sont un modèle expérimental favorable dans les études de développement, car la culture des œufs selon le calendrier souhaité facilite la manipulation expérimentale, car elle permet d’obtenir des embryons sans le sacrifice de la mère pour observer une série de stades de développement des embryons. De plus, des procédures chirurgicales compliquées et de longues périodes de temps ne sont pas nécessaires pour obtenir des embryons par rapport à des modèles animaux plus grands. Par conséquent, l’embryon de poussin présente une opportunité d’obtenir des préadipocytes dès les premiers stades du développement du tissu adipeux. Le tissu adipeux sous-cutané devient visible chez le poussin vers le jour embryonnaire 12 (E12) comme un dépôt clairement défini situé autour de la cuisse. Ce dépôt est enrichi en préadipocytes hautement prolifératifs qui subissent activement une différenciation sous les signaux de développement pour former des adipocytes matures 6,7. Le processus de différenciation adipogène est comparable entre les poulets et les humains. Par conséquent, les préadipocytes isolés à partir d’embryons de poussins peuvent être utilisés comme modèle à double usage pour des études pertinentes pour les humains et la volaille. Cependant, le rendement des préadipocytes diminue avec le vieillissement à mesure que les cellules se développent en adipocytes matures5.

Le présent protocole optimise l’isolement des préadipocytes du tissu adipeux au cours du stade (E16-E18) auquel la différenciation adipogénique et l’hypertrophie adipocytaire sont à leur apogée chez les embryons de poussins de poulet de chair8. Cette procédure peut évaluer les effets des facteurs auxquels l’embryon en développement est exposé in ovo, tels que le régime alimentaire de la poule, sur le développement des adipocytes et le potentiel adipogène ex vivo. Il peut également tester l’impact de diverses manipulations (par exemple, l’hypoxie, les ajouts de nutriments, les agonistes pharmacologiques et les antagonistes) sur l’adipogenèse ou les divers ‘omes (par exemple, transcriptome, métabolome, méthylome) des progéniteurs adipocytaires. En tant que représentation du stade le plus précoce de la formation adipeuse, les cellules obtenues à l’aide de ce protocole sont des modèles précieux pour les études pertinentes pour la volaille et les humains.

Protocol

Toutes les procédures animales ont été approuvées par le comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux de l’Université du Tennessee. Des œufs de poulet de chair commerciaux fraîchement fécondés (Cobb 500) ont été obtenus dans un couvoir local. Les œufs ont été incubés à 38 °C avec une humidité relative de 60 % jusqu’à dissection aux jours embryonnaires 16-18 (E16-E18). Le tissu adipeux a été prélevé dans le dépôt sous-cutané (fémoral). 1. P…

Representative Results

Les préadipocytes primaires sont morphologiquement similaires aux fibroblastes, avec des formes irrégulières en forme d’étoile et un noyau central (Figure 2A-C). Les cellules adhèrent facilement au plastique de culture tissulaire et commencent à proliférer peu de temps après la fixation. Ils se différencient et accumulent rapidement des gouttelettes lipidiques (Figure 3D) lorsqu’ils sont fournis avec des acides gras…

Discussion

Bien que plusieurs protocoles bien décrits aient rapporté l’isolement des préadipocytes 14,15,16,17, l’isolement des préadipocytes embryonnaires a été optimisé, ce qui peut être utilisé pour les analyses fonctionnelles de la croissance et du développement des graisses au début de la vie chez les poussins de poulet de chair. Ce protocole produit des progéniteurs adipocytaires emb…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs remercient UT AgResearch et le Département des sciences animales d’avoir soutenu et optimisé ce protocole. Ce travail a été financé par une subvention de l’USDA.

Materials

1 mL Pipette Eppendorf Z683825 Single Channel Pipette, 100 – 1000 µL
1 mL Pipette Tip Fisher Scientific 02-707-402
100% Isopropanol Fisher Scientific A426P4
1x PBS Gibco 10010023
25 mL Flask Pyrex 4980-25
37% Formaldehyde Fisher Scientific F75P-1GAL
6-Well Plate Falcon 353046 Tissue Culture-treated
96-Well Assay Plate Costar 3632
96-Well Plate, Black Bottom Costar 3603 Tissue Culture-treated
AdipoRed Lonza PT-7009
Amphotericin B Gibco 15290026
Bench Top Wiper (Kimtechwiper) Kimberly-Clark 34155
Betadine Up & Up NDC 1167300334 20% Working Solution
Cell Counter Corning 6749
Cell Strainer, 40 µm SPL 93040
Centrifugaton Eppendorf 5702
Chicken Serum Gibco 16110082
Conical Centrifuge Tubes, 15 mL VWR 10025-690
Conical Centrifuge Tubes, 50 mL Falcon 352098
Cryovial Nunc 343958
Curved Forceps, 100 mm Roboz Surgical RS-5137
Curved Surgical Scissors, 115 mm Roboz Surgical RS-6839
Distilled Water Millipore SYNSV0000 Despensed as needed
DMEM/F12 HyClone SH30023.01
DMSO Sigma D2650
Ethanol Decon Labs 2701 70% Working Solution
Fetal Bovine Serum (FBS) Gibco 10437028
Fluorescent Microscope Evos M7000
Fluorescent Plate Reader Biotek Synergy H1
Foil Reynolds Reynolds Wrap Heavy Duty Aluminum Foil, 125 SQ. FT.
Freezing Container Thermo Scientific 5100-0001
Gelatin Millipore 4055 2% Working Solution
Hematocytometer (Counting Chamber) Corning 480200 0.1 mm deep
Incubator Fisher Scientific 6845
Instrument Sterilizer VWR B1205
Linoleic Acid-Oleic Acid-Albumin Sigma L9655 1x Working Solution
Microscope Evos AMEX1000
Multi-Channel Pipette Thermo Scientific 4661070 12-Channel Pipetters, 30 – 300 µL
Na2HPO4 Sigma S-7907
NaH2PO4 Sigma S-3139
NucBlue Invitrogen R37605
Oil Red O Sigma O-0625
Orbital Shaker IKA KS130BS1
Paper Towel Tork RK8002
Parafilm Parafilm M PM996
Penicillin/Steptomycin (P/S) Gibco 15140122 1x Working Solution
Petri dishes, 100 mm Falcon 351029
Petri dishes, 60 mm Falcon 351007
Plate Shaker VWR 200
RBC Lysis Buffer Roche 11814389001
Reagent Reservior VWR 89094-680
Small Beaker, 100 mL Pyrex 1000-100
Spectrophotometer Plate Reader Biotek Synergy H1
Sterile Gauze McKesson 762703
Straight Forceps, 120 mm Roboz Surgical RS-4960
Straight Scissors, 140 mm Roboz Surgical RS-6762
T-25 Flask Corning 430639 Tissue Culture-treated
Tissue Culture Incubator Thermo Scientific 50144906
Tissue Strainer, 250 µm Pierce 87791
Trypan Blue Stain Gibco 15250061
Trypsin Gibco 15400054 0.1% Working Solution
Tweezers, 110 mm Roboz Surgical RS-5035
Type 1 Collagenase Gibco 17100017
Water Bath Fisher Scientific 15-462-10
Whatman Grade 1 Filter Paper Whatman 1001-110

References

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Cite This Article
Kim, M., Jung, U., Shepherd, E., Mihelic, R., Voy, B. H. Isolation of Preadipocytes from Broiler Chick Embryos. J. Vis. Exp. (186), e63861, doi:10.3791/63861 (2022).

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