El agotamiento extracelular de la glucosa marcada fluorescentemente se correlaciona con la absorción de glucosa y podría usarse para la detección de alto rendimiento de la absorción de glucosa en órganos extirpados y cultivos celulares.
La epidemia mundial de diabetes en curso aumenta la demanda de identificación de factores ambientales, nutricionales, endocrinos, genéticos y epigenéticos que afectan la absorción de glucosa. La medición de la fluorescencia intracelular es un método ampliamente utilizado para probar la absorción de glucosa marcada fluorescentemente (FD-glucosa) en células in vitro, o para obtener imágenes de tejidos que consumen glucosa in vivo. Este ensayo evalúa la absorción de glucosa en un punto de tiempo elegido. El análisis intracelular asume que el metabolismo de la glucosa DF es más lento que el de la glucosa endógena, que participa en las reacciones catabólicas y anabólicas y en la señalización. Sin embargo, el metabolismo dinámico de la glucosa también altera los mecanismos de absorción, lo que requeriría mediciones cinéticas de la absorción de glucosa en respuesta a diferentes factores. Este artículo describe un método para medir el agotamiento extracelular de la DF-glucosa y valida su correlación con la absorción intracelular de FD-glucosa en células y tejidos ex vivo. El agotamiento extracelular de la glucosa puede ser potencialmente aplicable para estudios cinéticos y dependientes de la dosis de alto rendimiento, así como para identificar compuestos con actividad glucémica y sus efectos específicos del tejido.
La demanda para medir la absorción de glucosa aumenta junto con la necesidad crítica de abordar un aumento epidémico en una multitud de enfermedades dependientes del metabolismo de la glucosa. Los mecanismos subyacentes de las enfermedades metabólicas degenerativas, los trastornos neurológicos y cognitivos1, las enfermedades inflamatorias2 e infecciosas3, el cáncer 4,5, así como el envejecimiento6, dependen del metabolismo de la glucosa para obtener energía y su almacenamiento, los procesos anabólicos, la modificación de proteínas y genes, la señalización, la regulación de genes y la síntesis y replicación de ácidos nucleicos 7,8,9 . La diabetes mellitus (DM) está directamente relacionada con el mal funcionamiento de la regulación de la absorción de glucosa. La DM es un espectro de enfermedades crónicas como la diabetes mellitus tipo 1, -2 y -3, la diabetes gestacional, la diabetes de inicio en la madurez de los jóvenes y otros tipos de esta enfermedad inducida por factores ambientales y / o genéticos. En 2016, el primer informe mundial de la OMS sobre la diabetes demostró que el número de adultos que viven con la DM más extendida casi se ha cuadruplicado desde 1980 a 422 millones de adultos10, y este número de pacientes con DM ha aumentado exponencialmente durante las últimas décadas. Solo en 2019, una estimación de 1,5 millones de muertes fue causada directamente por DM10. Este aumento dramático se debe al aumento de la DM tipo 2 y las condiciones que la impulsan, incluido el sobrepeso y la obesidad10. La pandemia de COVID-19 reveló un aumento de dos veces en la mortalidad en pacientes con DM en comparación con la población general, lo que sugiere el papel profundo pero poco conocido del metabolismo de la glucosa en la defensa inmune3. La prevención, el diagnóstico temprano y el tratamiento de la DM, la obesidad y otras enfermedades requieren la optimización de las mediciones de la absorción de glucosa por diferentes tejidos y la identificación de los factores ambientales11,nutricionales 12, endocrinos 13,genéticos 14 y epigenéticos15 que afectan la absorción de glucosa.
En la investigación, la absorción intracelular y/o tisular de glucosa se mide comúnmente mediante glucosa marcada fluorescentemente (FD-glucosa) in vitro 16,17,18 e in vivo19. La glucosa FD se convirtió en un método preferido en comparación con los métodos más precisos que utilizan glucosa20 marcada radiactivamente, análisis analítico de espectroscopiade masas 21, metabolómica22, métodos de resonancia magnética nuclear23 y tomografía por emisión de positrones/tomografía computarizada (PET/CT)5,24. A diferencia de la absorción de glucosa FD, los métodos analíticos que requieren más material biológico pueden implicar una preparación de muestras de varios pasos, instrumentos costosos y análisis de datos complejos. Las mediciones efectivas y económicas de la absorción de glucosa FD en cultivos celulares se han utilizado en experimentos de prueba de concepto y pueden requerir la validación por otros métodos.
La base de la aplicación de DF-glucosa para los estudios de captación de glucosa es la reducción del metabolismo de la glucosa-DF en comparación con la glucosa endógena25. Sin embargo, tanto la glucosa endógena como la glucosa FD se distribuyen dinámicamente entre todos los compartimentos celulares para su uso en procesos anabólicos, catabólicos y de señalización. La compartimentación y el procesamiento dependiente del tiempo25 de la glucosa FD interfieren con las mediciones de fluorescencia y representan los principales factores limitantes para el uso de este ensayo en experimentos de detección de alto rendimiento, análisis cinético, cultivo celular 3D, cocultivos y experimentos de explante de tejidos. Aquí, proporcionamos datos que demuestran una alta correlación entre el agotamiento extracelular de la glucosa FD y su absorción intracelular, lo que sugiere el agotamiento extracelular de la glucosa FD como una medida sustituta para la absorción de glucosa intracelular. La medición del agotamiento extracelular de la glucosa se aplicó para validar las diferencias específicas del tejido en la absorción de glucosa en ratones tratados con insulina y un fármaco experimental18 para proporcionar una prueba de principio de este método.
El protocolo actual describe mediciones intracelulares y extracelulares (Figura 1) de la absorción de glucosa FD en células 3T3-L1. Las secciones 1-7 del protocolo explican el cultivo y el crecimiento de las células durante 48 h; inanición celular, estimulación y mediciones extracelulares basales; y mediciones posteriores a la estimulación de la FD-glucosa extracelular y mediciones intracelulares de la FD-glucosa y la proteína. La sección 8 del protocolo describe la medición ex vivo de la captación extracelular de FD-glucosa en tejidos diseccionados de ratones ob/ob en presencia y ausencia de insulina y compuesto de aminoácidos 2 (AAC2) descrita en otra parte18.
La comparación directa del agotamiento extracelular de la glucosa FD con la absorción normalizada de glucosa intracelular en el cultivo celular mostró una alta correlación, lo que sugiere que el agotamiento extracelular de la glucosa podría ser una medida sustituta para la evaluación de la absorción de glucosa. La medición de la glucosa FD extracelular puede utilizar una amplia gama de concentraciones de glucosa FD, también 0.5-2.5 μg FD-glucosa / ml parecen proporcionar el rango óptimo. La FD-glucosa extracel…
The authors have nothing to disclose.
El proyecto fue apoyado por Ralph y Marian Falk Medical Research Catalyst Award y Kathleen Kelly Award. Otros apoyos incluyeron el Centro Nacional de Recursos de Investigación UL1RR025755 y NCI P30CA16058 (OSUCCC), la Hoja de ruta de los NIH para la investigación médica. El contenido es responsabilidad exclusiva de los autores y no representa los puntos de vista oficiales del Centro Nacional de Recursos de Investigación o los NIH.
3T3-L1 mouse fibroblasts | ATCC | CL-173 | Cell line |
96-well plates | Falcon | 353227 | Plastic ware |
B6.V-Lepob/J male mice | Jackson Laboratory | stock number 000632 | Mice |
BioTek Synergy H1 modular multimode microplate reader (Fisher Scientific, US) | Fisher Scientific, US | B-SHT | Device |
Bovine serum | Gibco/ThermoFisher | 161790-060 | Cell culture |
Calf serum | Gibco/ThermoFisher | 26010-066 | Cell culture |
Cell incubator | Forma | Series II Water Jacket | Device |
Diet (mouse/rat diet, irradiated) | Envigo | Teklad LM-485 | Diet |
Dimethylsulfoxide (DMSO) | Sigma LifeScience | D2650-100mL | Reagent |
Dulbecco's Modified Eagle Medium | Gibco/ThermoFisher | 11965-092 | Cell culture |
Ethanol | Sigma Aldrich | E7023-500mL | Reagent |
Fluorescent 2-deoxy-2-[(7-nitro-2,1,3-benzoxadiazol-4-yl) amino]-D-glucose) | Sigma | 72987-1MG | Assay |
Glucose-free and phenol red-free DMEM | Gibco/ThermoFisher | A14430-01 | Cell culture |
Human insulin 10 mg/mL | MilliporeSigma, Cat N 91077C | Cat N 91077C | Reagent |
Isoflurane, 5% | Henry Schein | NDC 11695-6776-2 | Anestaetic |
Penicillin/streptomycin (P/S) | Gibco/ThermoFisher | 15140-122 | Cell culture |
Phosphate buffered solution | Sigma-Aldrich | DA537-500 mL | Cell culture |
Pierce bicinchoninic acid (BCA) protein assay | ThermoFisher | Cat N23225 | Assay |
Radioimmunoprecipitation assay lysis buffer | Santa Cruz Biotechnology | sc-24948 | Assay |
Trypsin-EDTA (0.05%) | Gibco/ThermoFisher | 25300-054 | Cell culture |