Summary

Valutazione terapeutica del trapianto di microbiota fecale in un modello murino carente di interleuchina 10

Published: April 06, 2022
doi:

Summary

L’interazione tra suscettibilità genetica, immunità mucosa e ambiente microecologico intestinale è coinvolta nella patogenesi della malattia infiammatoria intestinale (IBD). In questo studio, abbiamo applicato il trapianto di microbiota fecale a topi carenti di IL-10 e abbiamo studiato il suo impatto sull’infiammazione del colon e sulla funzione cardiaca.

Abstract

Con lo sviluppo della microecologia negli ultimi anni, la relazione tra batteri intestinali e malattie infiammatorie intestinali (IBD) ha attirato una notevole attenzione. Prove crescenti suggeriscono che il microbiota disbiotico svolge un ruolo attivo nell’innescare o peggiorare il processo infiammatorio nell’IBD e che il trapianto di microbiota fecale (FMT) è una strategia terapeutica interessante poiché il trasferimento di un microbiota sano al paziente con IBD potrebbe ripristinare la comunicazione ospite-microbiota appropriata. Tuttavia, i meccanismi molecolari non sono chiari e l’efficacia della FMT non è stata molto ben stabilita. Pertanto, sono necessari ulteriori studi su modelli animali di IBD. In questo metodo, abbiamo applicato FMT da topi selvatici C57BL / 6J a topi carenti di IL-10, un modello murino ampiamente utilizzato di colite. Lo studio elabora la raccolta di pellet fecali dai topi donatori, la produzione della soluzione / sospensione fecale, la somministrazione della soluzione fecale e il monitoraggio della malattia. Abbiamo scoperto che l’FMT ha mitigato significativamente la compromissione cardiaca nei topi knockout IL-10, sottolineando il suo potenziale terapeutico per la gestione delle IBD.

Introduction

Il microecosistema intestinale umano è estremamente complesso, con più di 1000 specie di batteri nell’intestino di una persona sana1. La flora intestinale è coinvolta nel mantenimento delle normali funzioni fisiologiche dell’intestino e della risposta immunitaria e ha un rapporto inscindibile con il corpo umano. L’accumulo di prove suggerisce che il microbioma intestinale costituisce l’ultimo organo umano, che fa parte del corpo umano, non solo un gruppo di parassiti2. Una relazione simbiotica “sana” tra il microbiota intestinale, i loro metaboliti e il sistema immunitario dell’ospite stabilito nei primi anni di vita è fondamentale per mantenere l’omeostasi intestinale. In alcune condizioni anormali come l’infiammazione cronica, i cambiamenti nell’ambiente interno ed esterno del corpo interrompono seriamente l’omeostasi intestinale, con conseguente squilibrio persistente della comunità microbica dell’intestino, chiamato disbiosi3. Infatti, l’esposizione a molteplici fattori ambientali, tra cui dieta, farmaci e agenti patogeni, può portare a cambiamenti nel microbiota.

La disbiosi è associata alla patogenesi di una varietà di malattie intestinali, come la malattia infiammatoria intestinale (IBD), la sindrome dell’intestino irritabile (IBS) e l’enterite pseudomembranosa, nonché un elenco crescente di disturbi extra-intestinali, tra cui malattie cardiovascolari, obesità e allergia4. Il profilo del microbiota ha rivelato che i pazienti con IBD hanno una drastica diminuzione della diversità batterica, nonché marcate alterazioni nelle popolazioni di alcuni ceppi batterici specifici 5,6. Questi studi hanno dimostrato meno Lachnospiraceae e Bacteroidetes ma più Proteobacteria e Actinobacteria nei pazienti con IBD. Si ritiene che la patogenesi dell’IBD sia correlata a vari fattori patogeni, tra cui flora intestinale anormale, risposta immunitaria disregolata, sfide ambientali e varianti genetiche7. Abbondanti prove suggeriscono che i batteri intestinali svolgono un ruolo nelle fasi di inizio e applicazione di IBD8,9, indicando che la correzione della disbiosi intestinale può rappresentare un nuovo approccio per la terapia e / o il trattamento di mantenimento dell’IBD.

Il prototipo del trapianto di microbiota fecale (FMT) è iniziato nell’antica Cina10. Nel 1958, il Dr. Eiseman e i suoi colleghi trattarono con successo quattro casi di grave enterite pseudomembranosa con materia fecale da donatori sani tramite clistere, aprendo un nuovo capitolo nella moderna medicina occidentale usando le feci umane per curare le malattie umane11. L’infezione da Clostridium difficile (CDI) è risultata essere la causa principale dell’enterite pseudomembranosa12 e l’FMT è altamente efficace nel trattamento della CDI. Negli ultimi otto anni, l’FMT è diventata una terapia standard per il trattamento della CDI13 ricorrente, spingendo ulteriori studi che indagano il ruolo dell’FMT in altri disturbi, come l’IBD. Negli ultimi vent’anni, numerosi casi clinici e studi di coorte hanno documentato l’uso di FMT in pazienti con IBD14. Una meta-analisi, inclusi 12 studi, ha mostrato che il 62% dei pazienti con malattia di Crohn (MC) ha raggiunto la remissione clinica dopo FMT e il 69% dei pazienti con CD ha avuto una risposta clinica15. Nonostante questi risultati incoraggianti, il ruolo dell’FMT nella gestione dell’IBD rimane incerto e i meccanismi con cui l’FMT migliora l’infiammazione intestinale sono poco conosciuti. Sono necessarie ulteriori indagini prima che FMT possa unirsi all’attuale armamentario di opzioni di trattamento per IBD nelle cliniche.

In questo protocollo, abbiamo applicato FMT su topi IL-10-/-, che sviluppano colite spontaneamente dopo lo svezzamento e sono serviti come gold standard per rispecchiare la natura multifattoriale di IBD16,17,18. I topi IL-10−/− sono stati ampiamente utilizzati per sezionare l’eziologia dell’IBD perché presentano caratteristiche molecolari e istologiche simili ai pazienti con IBD e, come i pazienti, la malattia può essere migliorata con la terapia anti-TNFα16. I topi IL10−/− (>9 mesi di età) hanno una maggiore dimensione del cuore e una funzione cardiaca compromessa rispetto ai topi wild-type di pari età19, rendendolo un modello eccellente per lo studio delle malattie cardiache indotte da colite. Tuttavia, possono essere utilizzati anche altri modelli murini di colite, come il modello di solfato di sodio destrano e il modello di colite indotta da cellule T. Abbiamo somministrato sospensione fecale tramite sonda orale gastrica, dimostrata una via efficace e migliore rispetto al clistere negli esseri umani20.

Protocol

Tutte le procedure eseguite sugli animali sono state approvate dall’Institutional Animal Care and Use Committee della University of Texas Medical Branch di Galveston (Protocollo # 1512071A). 1. Raccolta di pellet fecali freschi Preparare asciugamani di carta sterili, pinze smussate e tubi conici da 50 ml.Mettere alcuni tovaglioli di carta e pinze in sacchetti separati per autoclave e sterilizzarli in autoclave a 180 °C a fuoco secco per 30 minuti. Utilizzare…

Representative Results

Abbiamo eseguito FMT donatore sano 3 volte (una volta al mese per 3 mesi) su topi selvatici C57BL / 6J di 2 mesi (WT) e IL-10 knockout. Topi C57BL / 6J di età corrispondente (la differenza di età dovrebbe essere <2 mesi) sono serviti come donatori fecali e ogni volta sono stati utilizzati pellet fecali freschi. I test EIA hanno rivelato che il BNP era marcatamente elevato nel plasma dei topi con deficit di IL-10 e che l'FMT del donatore sano ha mitigato significativamente l'aumento dei livelli di BNP (<strong class="xf…

Discussion

Come trattamento sperimentale innovativo, FMT è diventato un argomento caldo nel trattamento di vari disturbi negli ultimi anni poiché la disbiosi del microbiota commensale è implicata nella patogenesi di più malattie umane, tra cui IBD, obesità, diabete mellito, autismo, malattie cardiache e cancro26. Sebbene il meccanismo non sia stato determinato, si ritiene che FMT funzioni costruendo una nuova flora biologica e prevenendo la perdita di batteri residui. Il metodo qui presentato ha adottat…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto, in parte, da sovvenzioni del National Institutes of Health (R01 HL152683 e R21 AI126097 a Q. Li) e dall’American Heart Association Grant-in-Aid 17GRNT33460395 (a Q. Li) (heart.org).

Materials

BD Syringe, 1 mL Fisher Scientific 14-829-10F
Blunt end forceps Knipex 926443
Brain natriuretic peptide EIA kit Sigma RAB0386
C57BL/6J mice Jackson Lab 000664
Centrifuge Eppendorf 5415R
Conical tubes ThermoFisher 339650
Curved feeding Needles Kent Scientific FNC-20-1.5-2
GLH-115 homogenizer Omni International GLH-115
Glycerol MilliporeSigma G5516
IL-10 knockout mice Jackson Lab 004366
Isoflurane Piramal Critical care NDC66794-017-10
USP normal saline Grainger 6280
Vaporizer Euthanex Corp. EZ-108SA

References

  1. D’Argenio, V., Salvatore, F. The role of the gut microbiome in the healthy adult status. Clinica Chimica Acta. 451, 97-102 (2015).
  2. Baquero, F., Nombela, C. The microbiome as a human organ. Clinical Microbiology and Infection. 18, 2-4 (2012).
  3. Hawrelak, J. A., Myers, S. P. The causes of intestinal dysbiosis: a review. Alternative Medcine Review. 9 (2), 180-197 (2004).
  4. Carding, S., Verbeke, K., Vipond, D. T., Corfe, B. M., Owen, L. J. Dysbiosis of the gut microbiota in disease. Microbial Ecology in Health and Disease. 26 (1), 26191 (2015).
  5. Ma, H. Q., Yu, T. T., Zhao, X. J., Zhang, Y., Zhang, H. J. Fecal microbial dysbiosis in Chinese patients with inflammatory bowel disease. World Journal of Gastroenterology. 24 (13), 1464-1477 (2018).
  6. Chu, Y., et al. Specific changes of enteric mycobiota and virome in inflammatory bowel disease. Journal of Digestive Diseases. 19 (1), 2-7 (2018).
  7. Manichanh, C., Borruel, N., Casellas, F., Guarner, F. The gut microbiota in IBD. Nature reviews Gastroenterology and Hepatology. 9 (10), 599-608 (2012).
  8. Podolsky, D. K. Inflammatory bowel disease. The New England Journal of Medicine. 347 (6), 417-429 (2002).
  9. Tamboli, C. P., Neut, C., Desreumaux, P., Colombel, J. F. Dysbiosis in inflammatory bowel disease. Gut. 53 (1), 1-4 (2004).
  10. Shi, Y. C., Yang, Y. S. Fecal microbiota transplantation: Current status and challenges in China. JGH Open: An Open Access Journal of Gastroenterology and Hepatology. 2 (4), 114-116 (2018).
  11. Markley, J. C., Carson, R. P., Holzer, C. E. Pseudomembranous enterocolitis: A clinico pathologic study of fourteen cases with a common etiologic factor. AMA Archives of Surgery. 77 (3), 452-461 (1958).
  12. Wilcox, M. H. Clostridium difficile infection and pseudomembranous colitis. Best Practice and Research Clinical Gastroenterology. 17 (3), 475-493 (2003).
  13. Kelly, C. R., de Leon, L., Jasutkar, N. Fecal microbiota transplantation for relapsing Clostridium difficile infection in 26 patients: methodology and results. Journal of Clinical Gastroenterology. 46 (2), 145-149 (2012).
  14. Borody, T. J., Warren, E. F., Leis, S., Surace, R., Ashman, O. Treatment of ulcerative colitis using fecal bacteriotherapy. Journal of Clinical Gastroenterology. 37 (1), 42-47 (2003).
  15. Cheng, F., Huang, Z., Wei, W., Li, Z. Fecal microbiota transplantation for Crohn’s disease: a systematic review and meta-analysis. Techniques in Coloproctology. 25 (5), 495-504 (2021).
  16. Scheinin, T., Butler, D. M., Salway, F., Scallon, B., Feldmann, M. Validation of the interleukin-10 knockout mouse model of colitis: antitumour necrosis factor-antibodies suppress the progression of colitis. Clinical and Experimental Immunology. 133 (1), 38-43 (2003).
  17. Keubler, L. M., Buettner, M., Hager, C., Bleich, A. A multihit model: Colitis lessons from the interleukin-10-deficient mouse. Inflammatory Bowel Diseases. 21 (8), 1967-1975 (2015).
  18. Kiesler, P., Fuss, I. J., Strober, W. Experimental models of inflammatory bowel diseases. Cellular and Molecular Gastroenterology and Hepatology. 1 (2), 154-170 (2015).
  19. Sikka, G., et al. Interleukin 10 knockout frail mice develop cardiac and vascular dysfunction with increased age. Experimental Gerontology. 48 (2), 128-135 (2013).
  20. Fecal microbiota transplantation-standardization study group. Nanjing consensus on methodology of washed microbiota transplantation. Chinese Medical Journal (Engl). 133 (19), 2330-2332 (2020).
  21. Kodani, T., et al. Flexible colonoscopy in mice to evaluate the severity of colitis and colorectal tumors using a validated endoscopic scoring system). Journal of Visualized Experiments: JoVE. (80), e50843 (2013).
  22. Cheng, H. -. W., et al. Assessment of right ventricular structure and function in mouse model of pulmonary artery constriction by transthoracic echocardiography. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (84), e51041 (2014).
  23. Tang, Y., et al. Chronic colitis upregulates microRNAs suppressing brain-derived neurotrophic factor in the adult heart. PLoS One. 16 (9), 0257280 (2021).
  24. Orner, G. A., et al. Suppression of tumorigenesis in the Apc(min) mouse: down-regulation of beta-catenin signaling by a combination of tea plus sulindac. Carcinogenesis. 24 (2), 263-267 (2003).
  25. Kline, K. T., et al. Neonatal injury increases gut permeability by epigenetically suppressing E-Cadherin in adulthood. The Journal of Immunology. 204 (4), 980-989 (2020).
  26. DeGruttola, A. K., Low, D., Mizoguchi, A., Mizoguchi, E. Current understanding of dysbiosis in disease in human and animal models. Inflammatory Bowel Diseases. 22 (5), 1137-1150 (2016).
  27. Chevalier, G., et al. Effect of gut microbiota on depressive-like behaviors in mice is mediated by the endocannabinoid system. Nature Communications. 11 (1), 6363 (2020).
  28. Kao, D., et al. Effect of oral capsule- vs colonoscopy-delivered fecal microbiota transplantation on recurrent clostridium difficile infection: A randomized clinical trial. JAMA. 318 (20), 1985-1993 (2017).
  29. Cammarota, G., et al. International consensus conference on stool banking for faecal microbiota transplantation in clinical practice. Gut. 68 (12), 2111-2121 (2019).
  30. Vemuri, R., et al. The microgenderome revealed: sex differences in bidirectional interactions between the microbiota, hormones, immunity and disease susceptibility. Seminar Immunopathology. 41 (2), 265-275 (2019).
  31. Wilkinson, N. M., Chen, H. -. C., Lechner, M. G., Su, M. A. Sex differences in immunity. Annual Review of Immunology. , (2022).
  32. Lee, C. H., et al. Frozen vs fresh fecal microbiota transplantation and clinical resolution of diarrhea in patients with recurrent clostridium difficile infection: A randomized clinical trial. JAMA. 315 (2), 142-149 (2016).
  33. Hamilton, M. J., Weingarden, A. R., Sadowsky, M. J., Khoruts, A. Standardized frozen preparation for transplantation of fecal microbiota for recurrent clostridium difficile infection. American Journal of Gastroenterology. 107 (5), 761-767 (2012).
  34. Tang, G., Yin, W., Liu, W. Is frozen fecal microbiota transplantation as effective as fresh fecal microbiota transplantation in patients with recurrent or refractory Clostridium difficile infection: A meta-analysis. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 88 (4), 322-329 (2017).
  35. Cui, B., et al. Fecal microbiota transplantation through mid-gut for refractory Crohn’s disease: safety, feasibility, and efficacy trial results. Journal of Gastroenterology and Hepatology. 30 (1), 51-58 (2015).
  36. Li, P., et al. Timing for the second fecal microbiota transplantation to maintain the long-term benefit from the first treatment for Crohn’s disease. Applied Microbiology and Biotechnology. 103 (1), 349-360 (2019).
  37. Moayyedi, P. Update on fecal microbiota transplantation in patients with inflammatory bowel disease. Gastroenterology and Hepatology. 14 (5), 319 (2018).
  38. Saha, S., Mara, K., Pardi, D. S., Khanna, S. Long-term safety of fecal microbiota transplantation for recurrent clostridioides difficile infection. Gastroenterology. 160 (6), 1961-1969 (2021).
  39. Perler, B. K., et al. Long-term efficacy and safety of fecal microbiota transplantation for treatment of recurrent clostridioides difficile infection. Journal of Clinical Gastroenterology. 54 (8), 701-706 (2020).
  40. Safety alert regarding use of fecal microbiota for transplantation and risk of serious adverse events likely due to transmission of pathogenic organisms. FDA Available from: https://www.fda.gov/vaccines-blood-biologics/safety-availability-biologics/safety-alert-regarding-use-fecal-microbiota-tramsplantation-and-risk-serious-adverse-events-likely (2020)

Play Video

Cite This Article
Xiao, Y., Zhong, X. S., Liu, X., Li, Q. Therapeutic Evaluation of Fecal Microbiota Transplantation in an Interleukin 10-Deficient Mouse Model. J. Vis. Exp. (182), e63350, doi:10.3791/63350 (2022).

View Video