Summary

Protocole économique et efficace pour isoler et cultiver des cellules dendritiques dérivées de la moelle osseuse à partir de souris

Published: July 01, 2022
doi:

Summary

Nous présentons ici une méthode économique et efficace pour isoler et générer des cellules dendritiques dérivées de la moelle osseuse de haute pureté à partir de souris après 7 jours de culture avec 10 ng / mL GM-CSF / IL-4.

Abstract

La demande de cellules dendritiques (DC) augmente progressivement à mesure que la recherche en immunologie progresse. Cependant, les DC sont rares dans tous les tissus. La méthode traditionnelle d’isolement des DC consiste principalement à induire la différenciation de la moelle osseuse (BM) dans les DC en injectant de fortes doses (>10 ng / mL) de facteur de stimulation des colonies de granulocytes-macrophages / interleukine-4 (GM-CSF / IL-4), ce qui rend la procédure complexe et coûteuse. Dans ce protocole, en utilisant toutes les cellules BM cultivées dans un milieu GM-CSF/IL-4 de 10 ng/mL, après 3-4 échanges de demi-culture, jusqu’à 2,7 x 107 cellules CD11c+ (DC) par souris (deux fémurs) ont été récoltées avec une pureté de 80% à 95%. Après 10 jours en culture, l’expression de CD11c, CD80 et MHC II a augmenté, tandis que le nombre de cellules a diminué. Le nombre de cellules a culminé après 7 jours de culture. De plus, cette méthode n’a pris que 10 minutes pour prélever toutes les cellules de la moelle osseuse, et un nombre élevé de DC ont été obtenus après 1 semaine de culture.

Introduction

Les cellules dendritiques (DC) sont les cellules présentatrices d’antigènes (APC) les plus puissantes pour activer les lymphocytes T naïfs et induire des réponses spécifiques aux lymphocytes T cytotoxiques (CTL) contre les maladies infectieuses, les maladies allergiques et les cellules tumorales 1,2,3. Les DC sont le principal lien entre l’immunité innée et l’immunité adaptative et jouent un rôle essentiel dans la défense immunologique et le maintien de la tolérance immunitaire. Au cours des 40 dernières années, de nombreux chercheurs ont cherché à définir les sous-ensembles de DC et leurs fonctions dans l’inflammation et l’immunité. Selon ces études, les DC se développent le long des lignées myéloïdes et lymphoïdes des cellules de la moelle osseuse. Les vaccins tumoraux ont franchi des étapes importantes ces dernières années et ont un avenir prometteur. Mécaniquement, les vaccins tumoraux modulent la réponse immunitaire et empêchent la croissance tumorale en activant les lymphocytes T cytotoxiques à l’aide d’antigènes tumoraux. Le vaccin à base de DC joue un rôle important dans l’immunothérapie tumorale et a été identifié comme l’une des thérapies antitumorales les plus prometteuses 1,4. En outre, les DC ont été largement utilisés dans le test de nouveaux médicaments moléculaires ciblés et d’inhibiteurs du point de contrôle immunitaire5.

Les chercheurs ont un besoin urgent d’un grand nombre de DC de haute pureté pour étudier plus avant le rôle des DC. Cependant, les DC sont rares dans divers tissus et sang, ne représentant que 1% des cellules sanguines chez les humains et les animaux. La culture in vitro de cellules dendritiques de la moelle osseuse (BMDC) est une méthode importante pour obtenir de grandes quantités de cellules DC. Pendant ce temps, le protocole Lutz pour générer des DC à partir de la moelle osseuse a été largement utilisé par les chercheurs6. Bien que le protocole soit efficace pour obtenir des cellules DC, il est complexe et coûteux, impliquant l’ajout de fortes concentrations de cytokines et la lyse des globules rouges.

Dans cette étude, nous rapportons une méthode pour isoler presque toutes les cellules de la moelle osseuse de la moelle osseuse (BM) de souris et induire une différenciation en BMDC après 7-9 jours d’incubation in vitro, avec une concentration plus faible de GM-CSF et d’IL-4. Cette procédure ne prend que 10 minutes pour prélever presque toutes les cellules de la moelle osseuse et les suspendre dans un milieu complet. En bref, nous fournissons une méthode de culture efficace et rentable pour BMDC dans cette recherche.

Protocol

Toutes les procédures ont été approuvées par le Comité de soins et d’utilisation des animaux de l’Université de médecine de Nanjing. 1. Isolement de la moelle osseuse et préparation des cellules BM Sacrifier des souris C57BL/6 (18-22 g, âgées de 6-8 semaines) par asphyxie au CO2 . Réparez la souris sur la table d’opération de la souris. Désinfectez les surfaces avec de l’éthanol à 70%. Coupez la peau de la jambe pour expose…

Representative Results

Les cellules 1 x 10 7-1,7 x 107 ont été extraites de deux fémurs et ont été remises en suspension dans 24 mL de milieu avant d’être plantées dans une plaque de 6 puits (Figure 1A). Après 2 jours, les cellules non adhérentes ont été éliminées en changeant complètement le milieu de culture. Avant de changer de milieu, un nombre important de cellules en suspension ont été observées (figure 1B). Après 3 jours de culture, de …

Discussion

Les humains et les souris ont des sous-ensembles de DC différents, y compris les DC classiques (cDC, y compris les cDC1 et cDC2), les DC plasmocytoïdes (pDC) et les DC dérivés de monocytes (MoDC)9,10,11. Il est généralement admis que les cDC1 régulent les réponses des lymphocytes T cytotoxiques (CTL) aux agents pathogènes intracellulaires et au cancer, et les cDC2 régulent les réponses immunitaires aux agents pathogè…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par le programme du plan scientifique et technologique de Tianjin (20JCQNJC00550), le projet des sciences et technologies de la santé de Tianjin (TJWJ202021QN033 et TJWJ202021QN034).

Materials

β-Mercaptoethanol Solarbio M8211
6-well plate Corning 3516
APC-MHC II Biolegend 116417
FBS Gibco 10100
PE-CD80 Biolegend 104707
Penicillin-Streptomycin Solarbio P1400
Percp/cy5.5-CD11c Biolegend 117327
PRMI-1640 Thermo 11875093
Recombinant Mouse GM-CSF Solarbio P00184
Recombinant Mouse IL-4 Solarbio P00196
TruStain Fc PLUS (anti-mouse CD16/32) Antibody Biolegend 156603

References

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Cite This Article
Tang, H., Xie, H., Wang, Z., Peng, S., Ni, W., Guo, L. Economical and Efficient Protocol for Isolating and Culturing Bone Marrow-derived Dendritic Cells from Mice. J. Vis. Exp. (185), e63125, doi:10.3791/63125 (2022).

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