Aquí demostramos varias pruebas in vivo (flash visual evoked potential, electrorretinograma de patrón y tomografía de coherencia óptica) en macaco cabra y rhesus para comprender la estructura y función del nervio óptico y sus neuronas.
El nervio óptico recoge las señales de los axones de las células ganglionares de la retina y transmite la señal visual al cerebro. Los modelos animales grandes de lesión del nervio óptico son esenciales para traducir nuevas estrategias terapéuticas de modelos de roedores a la aplicación clínica debido a sus similitudes más cercanas con los humanos en tamaño y anatomía. Aquí describimos algunos métodos in vivo para evaluar la función y la estructura de las células ganglionares de la retina (RGC) y el nervio óptico (ON) en animales grandes, incluido el potencial evocado visual (VEP), el electrorretinograma de patrón (PERG) y la tomografía de coherencia óptica (OCT). Tanto la cabra como los primates no humanos fueron empleados en este estudio. Al presentar estos métodos in vivo paso a paso, esperamos aumentar la reproducibilidad experimental entre diferentes laboratorios y facilitar el uso de grandes modelos animales de neuropatías ópticas.
El nervio óptico (ON), que consiste en axones de las células ganglionares de la retina (RGC), transmite la señal visual de la retina al cerebro. Las enfermedades ON, como el glaucoma, la neuropatía óptica traumática o isquémica, a menudo causaban degeneración irreversible de ON / RGC y pérdida visual devastadora. Aunque actualmente hay muchos avances en la regeneración de ON y la protección de RGC en modelos de roedores1,2,3,4,5,6, los tratamientos clínicos para la mayoría de las enfermedades ON se mantuvieron esencialmente iguales durante el último medio siglo con resultados insatisfactorios7,8 . Para llenar el vacío entre la investigación básica y la práctica clínica, los estudios traslacionales que utilizan modelos animales grandes de enfermedades ON a menudo son necesarios y beneficiosos debido a su similitud anatómica más cercana a los humanos que a los modelos de roedores.
Los macacos de cabra y rhesus son dos grandes especies animales utilizadas en nuestro laboratorio para modelar la enfermedad ON humana. El tamaño del globo ocular de una cabra, ON, y la estructura adyacente (cavidad orbitaria y nasal, base del cráneo, etc.) es similar al de un humano basado en la tomografía computarizada del cráneo9. Como tal, el modelo de cabra brinda la oportunidad de evaluar y refinar dispositivos terapéuticos o procedimientos quirúrgicos antes de su uso en humanos. El macaco rhesus, como primate no humano (NHP), tiene un sistema visual único similar al humano que no existe en otras especies10,11. Además, las respuestas fisiopatológicas a las lesiones y tratamientos en la NHP son muy similares a las de los seres humanos12.
Las pruebas in vivo para evaluar longitudinalmente la estructura y función del ON y el RGC son importantes en estudios con animales grandes. El electrorretinograma de patrón (PERG) se ha utilizado para evaluar la función RGC. El potencial evocado visual flash (FVEP) refleja la integridad de la vía retino-geniculo-cortical en el sistema visual. Así, PERG combinado con FVEP puede reflejar la función ON9,13,14 . La tomografía de coherencia óptica retiniana (OCT) puede mostrar la estructura retiniana con alta resolución temporal y espacial, lo que permite medir el grosor del complejo ganglionar retiniano (CCG)9,15. Para los exámenes electrofisiológicos en este estudio, el monitoreo de los signos vitales (tasa de calor, tasa de ruptura, presión arterial) y el nivel de saturación de oxígeno (SpO2) antes de las pruebas son cruciales ya que estos parámetros tienen un impacto potente en el flujo sanguíneo ocular y, por lo tanto, en la función del sistema visual. Sin embargo, no monitoreamos los signos vitales al realizar imágenes de retina octianas en aras de la simplicidad. Según nuestro estudio anterior9, el grosor del CCG medido por imágenes retinianas octeales es bastante estable, con un coeficiente de variación entre sesiones cercano al 3%. Estas pruebas in vivo en cabra y macaco rhesus han sido descritas en detalle en nuestro estudio anterior9. Aquí presentamos estos métodos para ayudar a aumentar la transparencia experimental y la reproducibilidad.
En este estudio, presentamos un protocolo de VEP, PERG y OCT en cabra y macaco rhesus. Estos métodos in vivo se pueden aplicar en modelos animales grandes de diversas neuropatías ópticas, como glaucoma, neuropatía óptica isquémica o traumática y neuritis óptica9.
PvEP es más estable y sensible que FVEP17; sin embargo, no se puede obtener en la cabra9. Como tal, FVEP se realiza en cabra y PVEP se realiza e…
The authors have nothing to disclose.
Este estudio fue financiado por las siguientes subvenciones: Programa Nacional Clave de I + D de China (2021YFA1101200); Proyecto de Investigación Médica de Wenzhou (Y20170188), Programa Nacional Clave de I + D de China (2016YFC1101200); Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (81770926;81800842); Programa clave de I + D de la provincia de Zhejiang (2018C03G2090634); y programa clave de I + D del Hospital de Ojos de Wenzhou (YNZD1201902). El patrocinador u organización financiadora no tuvo ningún papel en el diseño o la realización de esta investigación.
47.6 x 26.8 cm monitors | DELL Inc. | E2216HV | The visual stimuli of contrast-reversal black-white checkerboards were displayed on screens |
6.0 mm tracheal tube | Henan Tuoren Medical Device Co., Ltd | PVC 6.0 | ensure the airway |
alligator clip | |||
atropine | Guangdong Jieyang Longyang Animal pharmaceutical Co.,Ltd. | reduce bronchial secretion and protect heart from vagal nerve activation | |
Carbomer Eye Gel | Fabrik GmbH Subsidiary of Bausch & Lomb | moisten the cornea and stabilize the recording electrodes | |
ERG-Jet recording electrodes | Roland Consult Stasche&Finger GmbH | 2300 La Chaux-De-Fonds | ERG recording |
eye speculum | Shanghai Jinzhong Medical Device Co., Ltd | ZYD020 | open palpebral fissure |
Heidelberg Spectralis OCT system | Heidelberg Engineering | OCT system | |
Imaging | (https://www.heidelbergengineering.com/media/e-learning/Totara-US/files/pdf-tutorials/2238-003_Spectralis-Training-Guide.pdf) | ||
isoflurane | RWD Life Science Co., Ltd | R510-22 | isoflurane anesthesia |
male Saanen goats | Caimu Livestock Company, country (Hangzhou, China) | The male Saanen goats, aged from 4 to 6 months with weight of 19–23 kg | |
needle electrode | Roland Consult Stasche&Finger GmbH | U51-426-G-D | use for FVEP ground electrode and PERG reference electrodes |
periphery venous catheter intravenously | BD shanghai Medical Device Co., Ltd | 383019 | intravenous access for atropine and propofol |
propofol | Xian Lipont Enterprise Union Management Co.,Ltd. | induce Isoflurane anesthesia in goat | |
Tropicamide Phenylephrine Eye Drops | SANTEN OY, Japan | 5% tropicamide and 5% phenylephrine hydrochloride | |
visual electrophysiology device | Gotec Co., Ltd | GT-2008V-III | use for FVEP & PERG |
xylazine | Huamu Animal Health Products Co., Ltd. | xylazine anesthesia: intramuscular injection of xylazine 3mg/kg | |
zoletil50 | Virbac | induce Isoflurane anesthesia in monkey |