שילוב של תשומות סינפטיות מגוונות לנוירונים נמדד בצורה הטובה ביותר בהכנה שמשמרת את כל הגרעין הטרום-סינפטי לתזמון טבעי ול פלסטיות מעגל, אבל פרוסות מוח בדרך כלל מנתקות חיבורים רבים. פיתחנו פרוסת מוח שונה כדי לחקות פעילות מעגל vivo תוך שמירה על יכולת ניסויים במבחנה.
במבחנה פרוסה אלקטרופיזיולוגיה טכניקות למדוד פעילות חד תאית עם רזולוציה חשמלית וזמנית מדויקת. פרוסות המוח חייבות להיות דקות יחסית כדי לדמיין כראוי ולגשת נוירונים עבור תיקון-הידוק או הדמיה, ובדיקת מבחנה של מעגלים במוח מוגבל רק מה שקיים פיזית בפרוסה חריפה. כדי לשמור על היתרונות של ניסויי פרוסת מבחנה תוך שמירה על חלק גדול יותר של גרעין פרסינאפטי, פיתחנו הכנת פרוסה חדשנית. “פרוסת טריז” זו תוכננה עבור הקלטות אלקטרופיזיולוגיה טלאי-מהדק לאפיין את התשומות המנוארות, מונחות קול, לנוירונים אוליבוקוליאר (MOC) בגזע המוח. נוירונים אלה מקבלים את תשומות מעוררות ומעכבות העיקריות שלהם מנויונים המופעלים על ידי גירויים באוזן ההתפלה וגרעין השבלול המתאים (CN). פרוסת מוח אסימטרית תוכננה שהיא העבה ביותר בתחום הרוזטרו-סיבתי בקצה הצדדי של חצי כדור אחד ולאחר מכן מדללת לכיוון הקצה הצדדי של חצי הכדור הנגדי. פרוסה זו מכילה, בצד העבה, את שורש העצב השמיעתי המעביר מידע על גירויים שמיעתיים למוח, המעגלים הפנימיים של CN, וגם את המסלולים המעכבים הדיסינפטיים והטריסינופטיים המתכנסים על נוירונים MOC נגדי. ההקלטה מבוצעת מנויונים MOC בצד הדק של הפרוסה, שם הם מדמיינים באמצעות אופטיקה DIC לניסויים טיפוסיים תיקון-מהדק. גירוי ישיר של עצב השמיעה מבוצע כאשר הוא נכנס לגזע המוח השמיעתי, המאפשר פעילות מעגל CN פנימית פלסטיות סינפטית להתרחש בסינופסות במעלה הזרם של נוירונים MOC. עם טכניקה זו, ניתן לחקות את הפעלת מעגל vivo קרוב ככל האפשר בתוך הפרוסה. הכנת פרוסת טריז זו ישימה למעגלים אחרים במוח שבהם ניתוחי מעגלים ייהנו משימור קישוריות במעלה הזרם וכניסות ארוכות טווח, בשילוב עם היתרונות הטכניים של פיזיולוגיה של פרוסה חוץ-חוץית.
תצפית על פעילות של מעגלים עצביים מבוצעת באופן אידיאלי עם תשומות חושיות ומשוב מקוריים, וקישוריות שלמה בין אזורי המוח, ב vivo. עם זאת, ביצוע ניסויים הנותנים רזולוציה של תא יחיד של תפקוד מעגל עצבי עדיין מוגבל על ידי אתגרים טכניים במוח שלם. בעוד ב-vivo אלקטרופיזיולוגיה חוץ תאית או שיטות הדמיה multiphoton יכול לשמש לחקירת פעילות במערכות עצבים שלמות, לפרש כיצד תשומות שונות לשלב או מדידה תשומות סינפטיות subthreshold נשאר קשה. בהקלטות vivo תא שלם להתגבר על מגבלות אלה, אבל הם מאתגרים לבצע, אפילו באזורים במוח אשר נגישים בקלות. אתגרים טכניים של ניסויים ברזולוציה של תא יחיד מוגברים עוד יותר באוכלוסיות נוירון מסוימות הממוקמות עמוק במוח, או באוכלוסיות מפוזרות מרחבית הדורשות כלים גנטיים כדי לאתר תאים ב-vivo (למשל, ביטוי גנטי של channelrhodopsin בשילוב עם הקלטת optrode) או זיהוי היסטוכימי פוסט הוק לאחר תיוג אתר הקלטה (למשל עם סמנים ספציפיים לנוירוטרנסמיט). להיות ממוקם באופן מפוזר ליד פני השטח החנונים של גזע המוח, נוירונים olivocochlear מדיאלי (MOC) סובלים מהמגבלות לעיל1, מה שהופך אותם קשהמאוד לגשת לניסויים vivo.
פרוסות מוח (~ 100-500 μm עובי) שימשו זמן רב כדי ללמוד מעגלים במוח, כולל מעגלים גזע המוח השמיעתי, בשל ההפרדה הפיזית של נוירונים מחוברים הכלוליםבתוך אותה פרוסה 2,3,4,5,6,7,8,9. ניסויים באמצעות פרוסות עבות הרבה יותר (>1 מ”מ) הועסקו במעבדות אחרות כדי להבין כיצד תשומות דו-צדדיות משתלבות באזורים של קומפלקס אוליברי מעולה (SOC) כולל זיתמעולה מדיאלי 10,11. פרוסות אלה הוכנו כך כי האקסונים של עצב השמיעה (AN) נשאר שלם בתוך הפרוסה היו מגורה חשמלית ליזום שחרור מוליך עצבי סינפטי ב CN, מחקה פעילות של נוירונים שמיעתיים סדר ראשון כפי שהם יגיבו לקול. אחד החיסרון העיקרי של פרוסות עבות אלה הוא ניראות של נוירונים עבור הקלטות אלקטרופיזיולוגיות תיקון-מהדק (“תיקון”). תיקון הופך קשה יותר ויותר כמו האקסונים הרבים באזור זה הופכים מילינציה עם גיל12,13 ,14,15,מהשהופךאת הרקמה צפופה אופטית וסמיך נוירונים אפילו בפרוסת מוח טיפוסית, דקה. המטרה שלנו היא ליצור בהכנות מבחנה הדומות יותר לקישוריות המעגל של הקלטות vivo, אבל עם תפוקה גבוהה ויכולות הקלטה ברזולוציה גבוהה של אלקטרופיזיולוגיה מדבקה מונחית חזותית לפרוסות מוח.
המעבדה שלנו חוקרת את הפיזיולוגיה של תאי העצב של מערכת אפרטשמיעתית, כולל נוירונים MOC. נוירונים כולינרגית אלה מספקים משוב אדיש לשבלול על ידי לווסת את הפעילות של תאי שיער בחוץ (OHCs)16,17,18,19,20. מחקרים קודמים הראו כי אפנון זה ממלא תפקיד בהשיגשליטה בשבלול 21,22,23,24,25,26 והגנהמפני טראומה אקוסטית 27,28,29,30,31,32,33. בעכברים, נוירונים MOC ממוקמים באופן מפוזר בגרעין הפתח של גוף הטרפז (VNTB) בגזע המוחהשמיעתי 1. הקבוצה שלנו השתמשה בקו העכבר ChAT-IRES-Cre חצה עם קו העכבר כתב tdTomato למקד נוירונים MOC בפרוסות גזע המוח תחת תאורה אפיפלואורסצנטית. הראינו כי נוירונים MOC לקבל קלט מעכב אפיל מן הגרעין המדיואלי ipsilateral של גוף טרפז (MNTB), אשר נרגש, בתורו, על ידי אקסונים מתאים סבוך כדורי (GBC) בגרעין השבלול הניטרי (CN)34, 35,36,37,38. בנוסף, נוירונים MOC סביר לקבל קלט מעורר שלהם מתאי T-stellate ב CN39 ההתפלהההתפלה ,40,41. יחד, מחקרים אלה מראים נוירונים MOC לקבל הן תשומות מעוררות ומעכבות נגזר מאותה (קונטרה חוץ) אוזן. עם זאת, הנוירונים presynaptic, ואת האקסונים שלהם מתכנסים על נוירונים MOC, הם לא ממש קרובים זה לזה כדי להיות שלמים לחלוטין בהכנה פרוסת קורונל טיפוסית. כדי לחקור כיצד שילוב של תשומות סינפטיות לנוירונים MOC משפיע על דפוסי ירי פוטנציאליים הפעולה שלהם, עם דגש על עיכוב שתואר לאחרונה, פיתחנו הכנה שבה אנו יכולים לעורר את אפרטנטים מגוונים לנוירונים MOC מאוזן אחת בדרך הפיזיולוגית ביותר מציאותית האפשרית, אבל עם היתרונות הטכניים של ניסויי פרוסת מוח במבחנה.
פרוסת הטריז היא הכנת פרוסה עבה שונה שנועדה לחקירה של שילוב מעגלים בנוירונים MOC (ממוכמת בדמות 1A). בצד העבה של הפרוסה, הטריז מכיל את האקסונים הקותעים של עצב השמיעה (בשם “שורש עצב שמיעתי” להלן) כשהם נכנסים לגזע המוח מהפריפריה ולסינאפסה ב-CN. שורש העצב השמיעתי יכול להיות מגורה חשמלית כדי לעורר שחרור מוליך עצבי והפעלה סינפטית של תאים של CN42שלםלחלוטין,43,44,45,46. תבנית גירוי זו כוללת מספר יתרונות לניתוח מעגלים. ראשית, במקום לגרות ישירות את האקסונים T-stellate ו GBC המספקים קלט אדיש לנוירונים MOC, אנו לעורר את AN כדי לאפשר הפעלה של מעגלים פנימיים בשפע ב CN. מעגלים אלה לווסת את התפוקה של נוירונים CN ליעדים שלהם ברחבי המוח, כולל נוירונים MOC46,47,48,49,50,51. שנית, ההפעלה polysynaptic של מעגלים אפילים מן AN דרך CN במעלה הזרם של נוירונים MOC מאפשר תזמון הפעלה טבעי יותר עבור פלסטיות להתרחש בסינפסות אלה כפי שהם היו vivo במהלך גירוי שמיעתי. שלישית, אנחנו יכולים לשנות את דפוסי הגירוי שלנו כדי לחקות פעילות AN. לבסוף, הן תחזיות מונוארות מעוררות ומעכבות לנוירונים MOC הם שלמים פרוסת טריז, ואת השילוב שלהם ניתן למדוד בנוירון MOC עם הדיוק של אלקטרופיזיולוגיה טלאי-מהדק. ככלל, ערכת הפעלה זו מספקת מעגל שלם יותר לנוירונים MOC בהשוואה הכנה פרוסת מוח טיפוסית. פרוסת טריז גזע המוח זה יכול לשמש גם כדי לחקור אזורים שמיעתיים אחרים אשר מקבלים קלט מעכב מ-MNTB ipsilateral כולל זית מעולה לחוץ, גרעין אוליברימעולה וזית מעולהמדיאלי 10,11,52,53,54,55,56. מעבר להכנה הספציפית שלנו, ניתן להשתמש בשיטת חיתוך זו או לשנות כדי להעריך מערכות אחרות עם היתרונות של שמירה על קישוריות של תשומות ארוכות טווח ושיפור החזותיה של נוירונים עבור מגוון רחב של אלקטרופיזיולוגיה ברזולוציה חד-תאית או טכניקות הדמיה.
פרוטוקול זה דורש שימוש בשלב או בפלטפורמה של vibratome שניתן להטות כ- 15°. כאן אנו משתמשים בשלב מגנטי זמין מסחרית של שני חלקים שבו ה”במה” הוא דיסק מתכת עם תחתית מעוקלת הממוקמת ב”בסיס במה” מגנטי קעור. לאחר מכן ניתן להזיז את השלב כדי להתאים את זווית הפרוסה. עיגולים קונצנטריים בבסיס הבמה משמשים להערכת הזווית באופן רפרודוקטיבי. בסיס הבמה והשלב ממוקמים בתא החיתוך, שם ניתן גם לסובב את בסיס הבמה המגנטית.
הליך החיתוך המתואר כאן כננה פרוסת טריז הוא רב עוצמה לשמירה על מעגלים עצביים presynaptic שלם, אבל עם הנגישות של ניסויים פרוסת המוח לניתוח של תפקוד עצבי. יש לנקוט בזהירות רבה במספר צעדים ראשוניים על מנת למקסם את התועלת של ההכנה לניתוח מעגלים. יש לאשר את ממדי הטריז באמצעות בדיקה היסטולוגית, שהיא חל?…
The authors have nothing to disclose.
מחקר זה נתמך על ידי תוכנית המחקר התוך-מזוראלי של NIH, NIDCD, Z01 DC000091 (CJCW).
Experimental Preparations | |||
Agar, powder | Fisher Scientific | BP1423500 | 4% agar block used to stabilize brain tissue during vibratome sectioning |
AlexaFluor Hydrazide 488 | Invitrogen | A10436 | Fluorophore used in internal solution to confirm successful MOC neuron patch |
Analytical Balance | Geneses Scientific (Intramalls) | AV114 | Weighing chemicals |
Double edged razor blade | Ted Pella | 121-6 | Vibratome cutting blade |
Kynurenic acid (5g) | Sigma Aldrich | K3375-5G | Slicing ACSF additive used to reduce neuron activity during dissection and slicing in order to improve tissue health for patch clamping |
pH Meter | Fisher Scientific (Intramalls) | 13-620-451 | Solution pH tester |
Plastic petri dishes 100mm dia X 20mm | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-556-002 | 4% Agar Prep |
Stirring Hotplate | Fisher Scientific (Intramalls) | 11-500-150 | Heating for 4% Agar preparation |
Dissection and Slicing | |||
Biocytin | Sigma Aldrich | B4261-250MG | Chemical used for axonal tracing (conjugated to Streptavidin 488) |
Dissecting Microscope | Amscope | SM-1BN | For precision dissection during brain removal |
Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 11252-20 | Fine forceps dissection tool |
Economy tweezers #3 | WPI | 501976 | Forceps dissection tool |
Glass Petri Dish 150mm dia x 15mm H | Fisher Scientific (Intramalls) | 08-747E | Dissection dish |
Interface paper (203 X 254mm PCTE Membrane 10um) | Thomas Scientific | 1220823 | Slice incubation/biocytin application |
Leica VT1200S Vibratome | Leica | 1491200S001 | Vibratome for wedge slice sectioning |
Mayo scissors | Roboz | RS-6872 | Dissection tool |
Single-edged carbon steel blades | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-640 | Razor blade for dissection |
Specimen disc, orienting | Leica | 14048142068 | Specialized vibratome stage for reproducible tilting |
Spoonula | FisherSci | 14-375-10 | Dissection tool |
Super Glue | Newegg | 15187 | Used for glueing tissue to vibratome stage |
Vannas Spring Scissors | Fine Science Tools | 91500-09 | Dissection tool |
Electrophysiology | |||
A1R Upright Confocal Microscope | Nikon Instruments | Electrophysiology and imaging microscope, can be any microscope compatible with electrophysiology | |
Electrode Borosilicate glass w/ Filament OD 1.5mm, ID 1.1mm, 10 cm long | Sutter Instrument | BF150-110-10 | Patch clamping pipette glass |
Electrode Filler MicroFil | WPI | CMF20G | Patch electrode pipette filler |
In-line solution heater | Warner Instruments (GSAdvantage) | SH-27B | Slice perfusion system heater |
Multi-Micromanipulator Systems | Sutter Intruments | MPC-200 with MP285 | Micromanipulators for patch clamp and stimulation electrode placement |
P-1000 horizontal pipette puller for glass micropipettes | Sutter instruments | FG-P1000 | Patch clamp pipetter puller |
Patch-clamp amplifier and Software | HEKA | EPC-10 / Patchmaster Next | Can be any amplifier/software |
Recording Chamber | Warner Instruments | RC26G | Slice "bath" during recording |
Recording Chamber Harp | Warner Instruments | 640253 | Stablizes slice during electrophysiology recording |
Slice Incubation Chamber | Custom Build | Heated, oxygenated holding chamber for slices during recovery after slicing | |
Stimulus isolation unit | A.M.P.I. | Iso-Flex | Stimulus isolation unit for electrophysiology |
Syringe 60CC | Fischer Scientific (Intramalls) | 14-820-11 | Electrophysiology perfusion fluid handling |
Temperature controller | Warner Instruments (GSAdvantage) | TC-324C | Slice perfusion system temperature controller |
Tubing 1/8 OD 1/16 ID | Fischer Scientific (Intramalls) | 14-171-129 | Electrophysiology perfusion fluid handling |
Tugsten concentric bipolar microelectrode | WPI | TM33CCINS | Stimulating electrode for electrophysiology |
Histology | |||
24 well Plate | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-556006 | Histology slice collection and immunostaining |
Alexa Fluor 488 Streptavidin | Jackson Immuno labs | 016-540-084 | Secondary antibody for biocytin visualization |
Corning Orbital Shaker | Sigma | CLS6780FP | Shaker for immunohistochemistry agitation |
Cresyl Violet Acetate | Sigma Aldrich (Intramalls) | C5042-10G | Cellular stain for histology |
Disposable Microtome Blades | Fisher Scientific | 22-210-052 | Sliding microtome blade |
Filter-syringe Nalgene 4mm Cellulose Acetate 0.2um | Fisher Scientific (Intramalls) | 09-740-34A | Syringe filter for filling recording pipettes with internal solution |
Fluoromount-G Slide Mounting Medium | Fisher Scientific | OB100-01 | Immunohistochemistry fluorescence mounting medium |
glass slide staining dish with rack | Fisher Scientific (Intramalls) | 08-812 | Cresyl Violet staining chamber |
Microm HM450 Sliding Microtome | ThermoFisher | 910020 | Freezing microtome for histology |
Microscope Cover Glasses: Rectangles 50mm X 24mm | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-543D | Histochemistry slide cover glass |
Permount mounting medium | Fisher Scientific | SP15-100 | Cresyl violet section mounting medium |
Superfrost Slides | Fisher Scientific | 22-034980 | Histology slides |