Summary

髄膜炎菌 人工多能性幹細胞由来脳内皮細胞の感染

Published: July 14, 2020
doi:

Summary

ここに記述されているプロトコルは伝染のための Neisseriaの髄膜炎 の準備、および他の分子分析のためのサンプル収集を分化させる誘導された多能性幹細胞によって得られる脳そっくりのendothelialセル、準備の主要なステップを強調する。

Abstract

髄膜炎菌性髄膜炎は、髄膜炎菌(髄 炎菌、Nm)が高度に特殊化された脳内皮細胞(BEC)を貫通することにより中枢神経系(CNS)にアクセスできるときに発生する生命を脅かす感染症です。Nmはヒト特異的な病原体であるため、堅牢な in vivo モデルシステムがないため、NmとBEC間の宿主と病原体の相互作用の研究は困難であり、ネイティブBECを模倣するヒトベースのモデルの必要性が確立されています。BECは、複雑なタイトジャンクションと高い経内皮電気抵抗(TEER)を特徴とする末梢内皮細胞と比較して、より厳しいバリア特性を持っています。しかし、一次BECや不死化BECなどの多くの in vitro モデルは、天然の神経微小環境から除去した後、バリア特性を欠くか、急速に失われます。近年のヒト幹細胞技術の進歩により、人工多能性幹細胞(iPS細胞)から脳様内皮細胞を誘導する方法が開発され、他の in vitro ヒトモデルと比較して表現型コピーBECが優れています。iPS細胞由来BEC(iPS細胞-BEC)を用いてNm-BEC相互作用をモデル化すると、BECバリア特性を持つヒト細胞を利用できるという利点があり、バリア破壊、自然免疫活性化、細菌間相互作用を調べることができます。ここでは、iPS細胞からiPS細胞-BECを誘導する方法と、細菌の調製、感染、解析のためのサンプル採取の方法を紹介します。

Introduction

血液脳関門(BBB)と髄膜血液CSF関門(mBCSFB)は、循環と中枢神経系(CNS)を分離する非常にタイトな細胞関門であり、主に高度に特殊化された脳内皮細胞(BEC)で構成されています1,2。BECは、多くの毒素、薬物、病原体を排除しながら、脳内外の栄養素や老廃物を調節することで、適切な脳の恒常性を維持しています1,2。細菌性髄膜炎は、血液媒介細菌がBECによって形成されたバリアと相互作用して貫通し、炎症を引き起こすことができる場合に発生します。髄膜炎菌(Nm、髄膜炎菌)は、健康な人の10〜40%の鼻咽頭にコロニーを形成するグラム陰性菌ですが、場合によっては重篤な全身性疾患を引き起こす可能性があります3。罹患した個人では、Nmは血流にアクセスして紫斑病の劇症を引き起こしたり、髄膜炎を引き起こす中枢神経系へのアクセスを得るBECに侵入したりする可能性があります3。Nmは世界中の細菌性髄膜炎の主な原因であり、ワクチン接種の努力にもかかわらず、依然として髄膜炎の主な原因です4。抗生物質治療などの現代の医学的介入により、これらの状態は生存可能になりましたが、髄膜炎に罹患した人は、多くの場合、永続的な神経学的損傷が残ります5,6

これまでの研究では、Nm-BEC相互作用に寄与する細菌因子と宿主シグナル伝達が特定されています7,8,9,10,11。同定されたアドヒシンや、混濁タンパク質Opc、IV型線毛などの侵入因子、およびCD147などの受容体は、in vitroでさまざまなBECモデルで実施されていますが、これらのモデルには多くの決定的なBBB特性がありません7,9,11,12。Nm-BEC相互作用の完全な理解は、in vivoモデルを利用できないこと、ワクチン接種防御が不完全であること、in vitroで頑健なヒトBECモデルがないことなどにより、依然としてとらえどころのないままです。

in vitroでのhBECのモデリングは、BECのユニークな特性のために困難でした。末梢内皮細胞と比較して、BECは、複雑なタイトジャンクション12による高い経内皮電気抵抗(TEER)など、バリア特性を強化する多くの表現型を有する。一旦脳微小環境から取り除かれると、BECは急速にバリア特性を失い、弱いバリアしか形成しない一次モデルや不死化in vitroモデルの有用性が制限される12,13。Nm感染のヒト特異性、頑健なin vivoモデルの欠如、およびin vitroでのヒトBECのモデリングの課題が組み合わさることで、NmとBECの間の複雑な宿主と病原体の相互作用を理解するためのより良いモデルの必要性が生じています。最近では、モデルヒト人工多能性幹細胞(iPS細胞)技術を用いて、in vivoでBECをよりよく模倣したiPS細胞からBEC様細胞が作製されています12,13,14,15。iPS細胞-BECはヒト由来であり、拡張が容易であり、一次または不死化の対応物と比較して予想されるBEC表現型を持っています12,13,14,15。さらに、iPS細胞-BECは、宿主と病原体の相互作用、ハンチントン病、アラン・ハーンドン・ダドリー症候群の原因となるMCT8欠損症など、中枢神経系の様々な疾患のモデル化に有用であることを実証しています16,17,18,19,20,21.ここでは、再生可能なiPS細胞からiPS細胞BECを誘導する方法と、iPS細胞BECにNmを感染させることで自然免疫応答が活性化する様子を紹介します。このモデルは、他のin vitroモデルでは再現できない宿主と病原体の相互作用を調べるのに有用であり、Nmなどのヒト特異的な病原体との相互作用を調べる場合に特に有用であると考えています。

Protocol

注:すべての培地/試薬の調製、幹細胞の維持、および分化のステップは、Stebbins et al.22 から適合しています。 1. iPS細胞の培養とBECの分化に必要な材料の調製 IMR90-4 iPS細胞培養用組織培養(TC)プラスチックのマトリックスコーティング基底膜マトリックスゲル(例:マトリゲル)を2.5 mgのアリコートに分注し、-20°Cで保存します。注:マトリック…

Representative Results

ここで説明するプロトコルは、Stebbinsらから採用され、iPS細胞をBBB特性を持つ脳様内皮細胞に分化させるプロセスと、このモデルをNm19,22のiPSC-BECを用いた感染症研究に利用する方法に焦点を当てています。iPS細胞-BECは、適切に分化すれば、TEERで測定した2000 Ωcm2を超えるタイトなバリア特性を示し、VEカドヘリンやCD31(PECAM)などの内皮マーカ…

Discussion

BECとBBBのモデリングには課題があり、一次および不死化ヒトBECは、in vitroでは頑健なバリア表現型を欠く傾向があります。ヒト幹細胞技術の出現により、内皮マーカー、タイトジャンクション発現、バリア特性、他のCNS細胞タイプへの応答、機能的排出トランスポーターなどの期待される特徴的なBBB表現型を保持するiPS細胞由来のBEC様細胞の作製が可能になりました<sup class="xre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

L.M.E.は、A.S-U.に授与された「ヒト病原体による微生物感染を研究するための3D組織モデル」と題されたDFG研究トレーニングプログラムGRK2157によってサポートされています。B.J.K.は、アレクサンダー・フォン・フンボルト財団のポスドク研究員の支援を受けています。さらに、培養におけるiPS細胞-BECの作製における技術支援を行ったLena Wolter氏に感謝します。

Materials

Accutase (1x) Sigma A6964 Enzymatic cell dissociation reagent
Acetic acid Sigma A6283
All-trans retinoic acid (RA) Sigma R2625
Anti-CD31 (PECAM-1) Thermo Scientific (Labvision) RB-10333
Anti-Claudin-5 Invitrogen 4C3C2
Anti-Glut-1 Thermo Scientific (Labvision) SPM498 (MA5-11315)
Anti-Occludin Invitrogen 33-1500
Anti-VE-cadherin Santa Cruz sc-52751
Anti-ZO-1 Invitrogen 33-9100
Bacto Proteose Peptone BD 211684
b-Mercaptoethanol Merck (Sigma-Aldrich) 805740
Cell culture plates and flasks Sarstedt
Centrifuge (Heraeus Megafuge 1.0R) Thermo Scientific
Class II biosafety cabinet Nuaire NU-437-400E
CO2 Incubator (DHD Autoflow CO2 Air-Jacketed Incubator) Nuaire
Collagen IV Sigma C5533
Columbia ager + 5 % sheep blood Biomerieux 43049
Costar Transwell polyester filters (12- or 24-well) Corning 3460, 3470
D(+)-Glucose Merck (Sigma-Aldrich) G8270
DAPI Invitrogen D1306
DMEM/F12 Gibco 31330-038
DMSO ROTH A994.1
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS) Gibco 21600-069
Epithelial Volt-Ohm Meter (Millicell ERS-2) with STX electrode Merck (Millipore) MERS00002
Fe(NO3)3 ROTH 5632.1
Fibronectin Sigma F1141
Fluoresence microscope (Eclipse Ti) Nikon
Hemacytometer (Neubauer) A. Hartenstein ZK06
Human basic fibroblast growth factor (bFGF) PeproTech 100-18B
Human Endothelial Serum Free Medium (hESFM) Gibco 11111-044
Inverted microscope (Wilovert) Hund (Will Wetzlar)
iPS(IMR90)-4 cells WiCell
Kellogg's supplement To prepare 110 ml of Kellogg's supplement, prepare 100 ml of 4 g/ml glucose, 0.1 g/ml glutamine, and 0.2 mg/ml thiamine pyrophosphate and 10 ml of 5 mg/ml Fe(NO3)3 and combine the solutions. Filter sterilize and store aliquoted at -20 °C.
Knockout serum replacement (KOSR) Gibco 10828-028
L-glutamine (GlutaMAX) Invitrogen 35050-038
LunaScript RT SuperMix Kit NEB E3010L cDNA synthesis kit
Matrigel Matrix Corning 354230
Methanol ROTH 4627.5
MgCl2 ROTH KK36.1
Micropipettes (Research Plus) Eppendorf
NaHCO3 ROTH 6329
Nonessential amino acids (NEAA) Gibco 11140-035
NucleoSpin RNA isolation kit Machery-Nagel 740955 RNA isolation kit
Pipette boy (Accu-Jet Pro) Brand
Platelet poor plasma-derived serum, bovine (PDS) Fisher 50-443-029
PowerUp SYBR Green Master Mix Applied Biosystems A25742 qPCR master mix
qPCR film (MicroAmp Optical Adhesive Film) Applied Biosystems 4211971
qPCR plates (MicroAmp Fast 96-well) Applied Biosystems 4346907
ROCK inhibitor, Y27632 dihydrochloride Tocris 1254
RT-PCR thermo cycler (StepOnePlus) Applied Biosystems 4376600
Serological pipettes Sarstedt
StemFlex basal medium + 50x StemFlex supplement Gibco A3349401 Stem-cell maintenance medium
Swinging Bucket Rotor (Heraeus #2704) Thermo Scientific
Thiamine pyrophosphate Sigma C8754-5G
Trypan Blue Solution, 0.4% Gibco 15250061
Versene Gibco 15040-033 Non-enzymatic cell dissociation reagent (EDTA)

References

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Endres, L. M., Hathcock, S. F., Schubert-Unkmeir, A., Kim, B. J. Neisseria meningitidis Infection of Induced Pluripotent Stem-Cell Derived Brain Endothelial Cells. J. Vis. Exp. (161), e61400, doi:10.3791/61400 (2020).

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