Summary

Evaluatie van oxidatieve stress in biologische monsters met behulp van de thiobarbiturinezuur reactieve stoffen test

Published: May 12, 2020
doi:

Summary

Het doel van de thiobarbiturinezuur reactieve stoffen test is om oxidatieve stress in biologische monsters te beoordelen door de productie van lipide peroxidatieproducten, voornamelijk malondialdehyde, te meten met behulp van zichtbare golflengtespectrofotometrie bij 532 nm. De hier beschreven methode kan worden toegepast op menselijk serum, cellysaten en lipoproteïnen met lage dichtheid.

Abstract

Ondanks zijn beperkte analytische specificiteit en robuustheid, is de thiobarbiturinezuur reactieve stoffen (TBARS) -test op grote schaal gebruikt als een generieke metriek voor lipideperoxidatie in biologische vloeistoffen. Het wordt vaak beschouwd als een goede indicator van de niveaus van oxidatieve stress in een biologisch monster, op voorwaarde dat het monster op de juiste manier is behandeld en opgeslagen. De test omvat de reactie van lipideperoxidatieproducten, voornamelijk malondialdehyde (MDA), met thiobarbiturinezuur (TBA), wat leidt tot de vorming van MDA-TBA2-adducten genaamd TBARS. TBARS levert een rood-roze kleur op die spectrofotometrisch gemeten kan worden bij 532 nm. De TBARS-test wordt uitgevoerd onder zure omstandigheden (pH = 4) en bij 95 °C. Zuivere MDA is onstabiel, maar deze omstandigheden maken het mogelijk om MDA vrij te maken uit MDA bis (dimethylacetaal), dat in deze methode als analytische standaard wordt gebruikt. De TBARS-test is een eenvoudige methode die in ongeveer 2 uur kan worden voltooid. De bereiding van assay-reagentia wordt hier in detail beschreven. Prijsbewuste onderzoekers kunnen deze reagentia voor meerdere experimenten tegen lage kosten gebruiken in plaats van een dure TBARS-testkit te kopen die alleen de constructie van een enkele standaardcurve mogelijk maakt (en dus slechts voor één experiment kan worden gebruikt). De toepasbaarheid van deze TBARS-test wordt aangetoond in menselijk serum, lipoproteïnen met lage dichtheid en cellysaten. De test is consistent en reproduceerbaar en detectiegrenzen van 1,1 μM kunnen worden bereikt. Aanbevelingen voor het gebruik en de interpretatie van de spectrofotometrische TBARS-test worden gegeven.

Introduction

Lipideperoxidatie is een proces waarbij vrije radicalen, zoals reactieve zuurstofsoorten en reactieve stikstofsoorten, koolstof-koolstof dubbele bindingen in lipiden aanvallen, een proces waarbij een waterstof uit een koolstof wordt gewonnen en een zuurstofmolecuul wordt ingebracht. Dit proces leidt tot een mengsel van complexe producten, waaronder lipide peroxylradicalen en hydroperoxiden als primaire producten, evenals malondialdehyde (MDA) en 4-hydroxynonenaal als overheersende secundaire producten1.

MDA is veel gebruikt in biomedisch onderzoek als een marker van lipideperoxidatie vanwege de gemakkelijke reactie met thiobarbiturinezuur (TBA). De reactie leidt tot de vorming van MDA-TBA2, een conjugaat dat absorbeert in het zichtbare spectrum bij 532 nm en een rood-roze kleur produceert2. Andere moleculen afgeleid van lipideperoxidatie naast MDA kunnen ook reageren met TBA en licht absorberen bij 532 nm, wat bijdraagt aan het totale absorptiesignaal dat wordt gemeten. Evenzo kan MDA reageren met de meeste andere belangrijke klassen van biomoleculen, waardoor de toegankelijkheid voor reactie met TBA3,4 mogelijk wordt beperkt. Als zodanig wordt deze traditionele test eenvoudigweg beschouwd als het meten van “thiobarbiturinezuur reactieve stoffen” of TBARS5.

Wanneer de TBARS-test correct wordt toegepast en geïnterpreteerd, wordt deze over het algemeen beschouwd als een goede indicator van de totale niveaus van oxidatieve stress in een biologisch monster6. Helaas, zoals gedocumenteerd door Khoubnasabjafari en anderen, wordt de TBARS-test vaak uitgevoerd en geïnterpreteerd op manieren die dubieuze conclusies mogelijk maken3,4,7,8,9,10,11. De oorzaken hiervoor zijn voornamelijk geworteld in steekproefgerelateerde pre-analytische variabelen en een gebrek aan assay-robuustheid die schijnbaar kleine variaties in het assayprotocol verbiedt zonder substantiële veranderingen in assayresultaten1,7,12,13.

Preanalytische variabelen met betrekking tot de hantering en opslag van biospecimenen (bv. bloedplasma dat tijdelijk op -20 °C wordt gehouden)14,15 kunnen een grote invloed hebben op de resultaten van de TBARS-test16,17; zozeer zelfs dat de resultaten van TBARS-assays niet tussen verschillende laboratoria mogen worden vergeleken, tenzij dit wordt gerechtvaardigd door expliciete interlaboratoriumanalyseve validatiegegevens. Deze aanbeveling is vergelijkbaar met hoe western blots vaak worden gebruikt en geïnterpreteerd. Vergelijkingen van banddichtheden zijn geldig voor binnen-blot en misschien binnen-laboratoriumstudies, maar het vergelijken van banddichtheden tussen laboratoria wordt over het algemeen als een ongeldige praktijk beschouwd.

Sommige onderzoekers hebben gesuggereerd dat MDA zoals gemeten door de TBARS-test eenvoudigweg niet voldoet aan de analytische of klinische criteria die vereist zijn voor een aanvaardbare biomarker3,9,10,18,19. Inderdaad, als de test niet meer dan 50 jaar geleden was ontwikkeld, zou het waarschijnlijk niet het wijdverspreide gebruik en de stilzwijgende aanvaardbaarheid hebben gekregen die het vandaag heeft. Hoewel er andere assays zijn met een grotere analytische gevoeligheid, specificiteit en robuustheid die worden gebruikt voor het bepalen van oxidatieve stress, blijft de TBARS-assay op basis van absorptie bij 532 nm veruit een van de meest gebruikte assays voor de bepaling van lipideperoxidatie20, en daarmee beoordeling van oxidatieve stress.

De TBARS-test is alleen te vinden als een dure kit (meer dan 400 Amerikaanse dollars), waarin de instructies geen gedetailleerde informatie geven over de meeste concentraties van de gebruikte reagentia. Bovendien kunnen de meegeleverde reagentia slechts voor één experiment worden gebruikt, omdat er slechts één colorimetrische standaardcurve per kit kan worden gemaakt. Dit kan problematisch zijn voor onderzoekers die van plan zijn om niveaus van oxidatie te bepalen binnen een paar monsters op verschillende tijdstippen, omdat dezelfde standaardcurve niet op meerdere tijdstippen kan worden gebruikt. Daarom moeten meerdere kits worden gekocht voor meerdere experimenten. Momenteel is er, tenzij een dure kit wordt gekocht, geen gedetailleerd protocol beschikbaar voor het uitvoeren van een TBARS-test. Sommige onderzoekers hebben in het verleden vaag beschreven hoe een TBARS-assay21,22 moet worden uitgevoerd, maar noch een volledig gedetailleerd protocol of uitgebreide video over het uitvoeren van de TBARS-test zonder een dure kit is beschikbaar in de literatuur.

Hier rapporteren we een gedetailleerde, analytisch gevalideerde methodologie voor doeleinden over het uitvoeren van een TBARS-test op een eenvoudige, reproduceerbare en goedkope manier. Veranderingen in de lipideperoxidatie van menselijk serum, HepG2-lysaten en lipoproteïnen met lage dichtheid bij behandeling met Cu(II)-ionen worden aangetoond als illustratieve toepassingen voor de TBARS-test. De resultaten tonen aan dat deze TBARS-test consistent en reproduceerbaar is op een dagelijkse basis.

Protocol

Menselijke serummonsters werden verkregen van instemmende vrijwilligers onder IRB-goedkeuring en volgens de principes die zijn uitgedrukt in de Verklaring van Helsinki. Monsters werden gecodeerd en gedeïdentificeerd voordat ze naar het analytisch laboratorium werden overgebracht. 1. Monstervoorbereiding HepG2-cellysaten Zaai ongeveer 10 x 106 HepG2-cellen per kolf in 16 T75-kolven met 14 ml EMEM-media aangevuld met 10% foetaal runderserum (FBS) …

Representative Results

Onder zure omstandigheden (pH = 4) en bij 95 °C levert malondialdehyde (MDA) bis(dimethylacetaal) MDA23 op. MDA en nauw verwante chemische congeneren reageren met twee moleculen thiobarbiturinezuur (TBA) om verbindingen te produceren die thiobarbiturinezuurreactieve stoffen (TBARS) worden genoemd, die een roodroze kleur geven en een absorptie λmax hebben bij 532 nm (figuur 1, figuur 2). Met MDA bis (dimethylacetaal) als stand…

Discussion

Ondanks zijn beperkingen1,3,4,7,8,9,10,12,13,14,15,19 en een gebrek aan geschiktheid voor vergelijking tussen laboratoria, is de TBARS-test een van de

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Het hier gerapporteerde onderzoek werd gedeeltelijk ondersteund door het National Cancer Institute van de National Institutes of Health onder award no. R33 CA217702 en het Initiative for Maximizing Student Development (IMSD) programma. De inhoud is uitsluitend de verantwoordelijkheid van de auteurs en vertegenwoordigt niet noodzakelijkerwijs de officiële mening van de National Institutes of Health.

Materials

1x Sterile PBS pH 7.4 1 L VWR, PA 101642–262 cell lysis reagent
50 mL self-standing centrifuge tube Corning, NY CLS430897 General material
96 well plate, Non-Treated, clear, with lid, Non-sterile Thermo Fisher Scientific, MA 280895 To measure absorbance
Amicon Ultra-0.5 100 kD centrifugal spin filter device Fisher Scientific, NH UFC510024 LDL purification
Caps for glass tubes Thermo Fisher Scientific, MA 14-930-15D for TBARS assay
Copper II Chloride SIGMA, MO 222011-250G to induce oxidation
Culture tubes, Disposable, with Screw-Cap Finish, Borosilicate Glass (13 x 100 mm) VWR, PA 53283-800 for TBARS assay
Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) ATCC, VA HB-8065 HepG2 cell media
Eppendorf Safe-Lock Tubes, 1.5 mL eppendorf, NY 22363204 General material
Eppendorf Safe-Lock Tubes, 2.0 mL Genesee Sceitific, CA 22363352 General material
Fetal Bovine Serum US Source Omega Scientific, CA FB-11 for cell culture
Glacial Acetic Acid SIGMA, MO 27225-1L-R TBARS Reagent
Halt Protease Inhibitor Cocktail (100x) Thermo Scientific, MA 87786 cell lysis reagent
HEPES SIGMA, MO H3375-250G LDL solvent
HepG2 Cells ATCC, VA HB-8065 Biological matrix prototype
Hydrocloric acid (HCl) Fisher Scientific, NH A144-212 cell lysis reagent
Legend Micro 17 Centrifuge Thermo Scientific, MA 75002431 General material
Low Density Lipoprotein, Human Plasma Athens Research & Technology, GA 12-16-120412 Biological matrix prototype
Magnetic Stir Bars, Octagon 6-Assortment VWR, PA 58948-025 General material
Malondialdehyde bis (dimethyl acetal) SIGMA, MO 8207560250 TBARS Standard
Multiskan Go Microplate Spectrophotometer Fisher Scientific, NH 51119200 To measure absorbance
NP-40 EMD Millipore Corp, MA 492016-100ML cell lysis reagent
Sodium Chloride SIGMA, MO S7653-1KG cell lysis reagent
Sodium dodecyl sulfate (SDS) SIGMA, MO 436143-100G TBARS Reagent
Sodium hydroxide SIGMA, MO 367176-2.5KG TBARS Reagent
SpeedVac Concentrator Thermo Scientific, MA SC250EXP For concentrating cell lysates
T-75 Flask, Tissue Culture Treated, 250 mL, w/filter cap USA Scientific, FL 658175 cell culture
Thiobarbituric Acid SIGMA, MO T5500-100G TBARS Reagent
TRIS base Fluka, GA 93362 cell lysis reagent
Trypsin (1x) VWR, PA 16777-166 To detach HepG2 cells

References

  1. Tsikas, D. Assessment of lipid peroxidation by measuring malondialdehyde (MDA) and relatives in biological samples: Analytical and biological challenges. Analytical Biochemistry. 524, 13-30 (2017).
  2. Ohkawa, H., Ohishi, N., Yagi, K. Reaction of linoleic acid hydroperoxide with thiobarbituric acid. Journal of Lipid Research. 19 (8), 1053-1057 (1978).
  3. Khoubnasabjafari, M., Soleymani, J., Jouyban, A. Avoid Using Spectrophotometric Determination of Malondialdehyde as a Biomarker of Oxidative Stress. Biomarkers in Medicine. 12 (6), 551-554 (2018).
  4. Morales, M., Munné-Bosch, S. Malondialdehyde: Facts and artifacts. Plant Physiology. 180 (3), 1246-1250 (2019).
  5. Devasagayam, T. P. A., Boloor, K. K., Ramasarma, T. Methods for estimating lipid peroxidation: An analysis of merits and demerits. Indian Journal of Biochemistry and Biophysics. 40 (5), 300-308 (2003).
  6. Dasgupta, A., Klein, K. Methods for Measuring Oxidative Stress in the Laboratory. Antioxidants in Food, Vitamins and Supplements. , 19-40 (2014).
  7. Wade, C. R., van Rij, A. M. Plasma malondialdehyde, lipid peroxides, and the thiobarbituric acid reaction. Clinical Chemistry. 35 (2), 336-336 (1989).
  8. Khoubnasabjafari, M., Ansarin, K., Jouyban, A. Reliability of malondialdehyde as a biomarker of oxidative stress in psychological disorders. BioImpacts. 5 (3), 123-127 (2015).
  9. Khoubnasabjafari, M., Ansarin, K., Jouyban, A. Comments Concerning “Comparison of Airway and Systemic Malondialdehyde Levels for Assessment of Oxidative Stress in Cystic Fibrosis”. Lung. 193 (5), 867-868 (2015).
  10. Khoubnasabjafari, M., Ansarin, K., Vaez-Gharamaleki, J., Jouyban, A. Comments on “Salivary 8-hydroxy-2-deoxyguanosine, malondialdehyde, vitamin C, and vitamin E in oral pre-cancer and cancer: diagnostic value and free radical mechanism of action”. Clinical Oral Investigations. 20 (2), 395-396 (2016).
  11. Khoubnasabjafari, M., Ansarin, K., Jouyban, A. Comments on “An Investigation into the Serum Thioredoxin Superoxide Dismutase, Malondialdehyde, and Advanced Oxidation Protein Products in Patients with Breast Cancer”. Annals of Surgical Oncology. 24, 573-576 (2017).
  12. Azizi, S., et al. Effects of analytical procedures on the repeatability of malondialdehyde determinations in biological samples. Pharmaceutical Sciences. 23 (3), 193-197 (2017).
  13. Azizi, S., et al. A possible reason for the low reproducibility of malondialdehyde determinations in biological samples. Bioanalysis. 8 (21), 2179-2181 (2016).
  14. Wasowicz, W., Neve, J., Peretz, A. Optimized steps in fluorometric determination of thiobarbituric acid- reactive substances in serum: Importance of extraction pH and influence of sample preservation and storage. Clinical Chemistry. 39 (12), 2522-2526 (1993).
  15. Jentzsch, A. M., Bachmann, H., Fürst, P., Biesalski, H. K. Improved analysis of malondialdehyde in human body fluids. Free Radical Biology and Medicine. 20 (2), 251-256 (1996).
  16. Buege, J. A., Aust, S. D. Microsomal lipid peroxidation. Methods in Enzymology. 52, 302-310 (1978).
  17. Gutteridge, J. M. C. Free-Radical Damage to Lipids, Amino-Acids, Carbohydrates and Nucleic-Acids Determined by Thiobarbituric Acid Reactivity. International Journal of Biochemistry. 14 (7), 649-653 (1982).
  18. Khoubnasabjafari, M., Ansarin, K., Jouyban, A. Salivary malondialdehyde as an oxidative stress biomarker in oral and systemic diseases. J Dent Res Dent Clin Dent Prospects. 10 (2), 71-74 (2016).
  19. Halliwell, B., Whiteman, M. Measuring reactive species and oxidative damage in vivo and in cell culture: How should you do it and what do the results mean. British Journal of Pharmacology. 142 (2), 231-255 (2004).
  20. Lee, R., et al. Evaluating oxidative stress in human cardiovascular disease: methodological aspects and considerations. Current medicinal chemistry. 19 (16), 2504-2520 (2012).
  21. Morel, D. W., Hessler, J. R., Chisolm, G. M. Low density lipoprotein cytotoxicity induced by free radical peroxidation of lipid. Journal of Lipid Research. 24 (8), 1070-1076 (1983).
  22. Guzmán-Chozas, M., Vicario-Romero, I. M., Guillén-Sans, R. 2-thiobarbituric acid test for lipid oxidation in food: Synthesis and spectroscopic study of 2-thiobarbituric acid-malonaldehyde adduct. Journal of the American Oil Chemists Society. 75 (12), 1711-1715 (1998).
  23. Shibata, T., et al. Identification of a lipid peroxidation product as a potential trigger of the p53 pathway. Journal of Biological Chemistry. 28 (2), 1196-1204 (2006).
  24. Skoog, D. A., West, D. M., Holler, F. J., Crouch, S. R. Sampling, standardization, and calibration. Fundamentals of Analytical Chemistry. 9th ed. , 153-196 (2014).
  25. Skoog, D. A., Holler, F. J., Crouch, S. R. Introduction. Principles of Instrumental Analysis. 6th ed. , 1-24 (2007).
  26. Seibig, S., Van Eldik, R. Kinetics of [FeII(edta)] Oxidation by Molecular Oxygen Revisited. New Evidence for a Multistep Mechanism. Inorganic Chemistry. 36 (18), 4115-4120 (1997).
  27. Jeffs, J. W., et al. Delta-S-Cys-Albumin: A Lab Test that Quantifies Cumulative Exposure of Archived Human Blood Plasma and Serum Samples to Thawed Conditions. Molecular & Cellular Proteomics. 18 (10), 2121-2137 (2019).
  28. Yagi, K., Armstrong, D. Simple Assay for the Level of Total Lipid Peroxides in Serum or Plasma. Free Radical and Antioxidant Protocols. Methods in Molecular Biology. , 101-106 (1998).
  29. Bernheim, F., Bernheim, M. L. C., Wilbur, K. M. The reaction between thiobarbituric acid and the oxidation products of certain lipides. Journal of Biological Chemistry. 174 (1), 257-264 (1948).
  30. Wilbur, K. M., Bernheim, F., Shapiro, O. W. The thiobarbituric acid reagent as a test for the oxidation of unsaturated fatty acids by various agents. Archives of Biochemistry. 24 (2), 305-313 (1949).
  31. Kwon, T. W., Watts, B. M. Determination of malonaldehyde by ultraviolet spectrophotometry. Journal of Food Science. 28 (6), 627-630 (1963).
  32. Esterbauer, H., Schaur, F. J., Zollner, H. Chemistry and biochemistry of 4-hydroxynonenal, malonaldehyde and related aldehydes. Free Radical Biology & Medicine. 11 (1), 81-128 (1991).
  33. Dalle-Donne, I., Rossi, R., Colombo, R., Giustarini, D., Milzani, A. Biomarkers of oxidative damage in human disease. Clinical Chemistry. 52 (4), 601-623 (2006).
  34. Jentzsch, A. M., Bachmann, H., Fürst, P., Biesalski, H. K. Improved analysis of malondialdehyde in human body fluids. Free Radical Biology and Medicine. 20 (2), 251-256 (1996).
  35. Jo, C., Ahn, D. U. Fluorometric Analysis of 2-Thiobarbituric Acid Reactive Substances in Turkey. Poultry Science. 77 (3), 475-480 (1998).
  36. Tsikas, D., et al. Development, validation and biomedical applications of stable-isotope dilution GC-MS and GC-MS/MS techniques for circulating malondialdehyde (MDA) after pentafluorobenzyl bromide derivatization: MDA as a biomarker of oxidative stress and its relation to 15(S)-8-iso-prostaglandin F2α and nitric oxide (NO). Journal of Chromatography. B, Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 1019, 95-111 (2016).
  37. Barden, A. E., Mas, E., Croft, K. D., Phillips, M., Mori, T. A. Minimizing artifactual elevation of lipid peroxidation products (F 2-isoprostanes) in plasma during collection and storage. Analytical Biochemistry. 449 (1), 129-131 (2014).
  38. Jeffs, J. W., Ferdosi, S., Yassine, H. N., Borges, C. R. Ex vivo instability of glycated albumin: A role for autoxidative glycation. Archives of Biochemistry and Biophysics. 629, 36-42 (2017).
  39. Lee, D. M. Malondialdehyde in Stored Plasma. Biochemical and Biophysical Research Communications. 95 (4), 1663-1672 (1980).
  40. Tsikas, D., et al. Simultaneous GC-MS/MS measurement of malondialdehyde and 4-hydroxy-2-nonenal in human plasma: Effects of long-term L-arginine administration. Analytical Biochemistry. 524, 31-44 (2017).

Play Video

Cite This Article
Aguilar Diaz De Leon, J., Borges, C. R. Evaluation of Oxidative Stress in Biological Samples Using the Thiobarbituric Acid Reactive Substances Assay. J. Vis. Exp. (159), e61122, doi:10.3791/61122 (2020).

View Video