Presentato qui è un protocollo per l’analisi dell’ibridazione dell’RNA in situ intera nel test di zebra fish e tube formation nelle cellule endoteliali derivate dalle cellule staminali derivate dal paziente per studiare il ruolo dell’endoglin nella formazione vascolare.
Lo sviluppo vascolare è determinato dall’espressione sequenziale di geni specifici, che possono essere studiati eseguendo analisi di ibridazione in situ nel pesce zebra durante diverse fasi dello sviluppo. Per studiare il ruolo dell’endoglin(eng) nella formazione dei vasi durante lo sviluppo della telangiectasia ereditaria emorragica (HHT), il knockdown mirato mediato dal morfolino di eng nel pesce zebra viene utilizzato per studiarne l’espressione temporale e le funzioni associate. Qui, l’ibridazione dell’RNA in situ (WISH) viene impiegata per l’analisi di eng e dei suoi geni a valle negli embrioni di pesce zebra. Inoltre, i test di formazione dei tubi vengono eseguiti nelle cellule endoteliali differenziate dalle cellule staminali plurimi derivate dal paziente HHT (iPSC-ECs; con mutazioni di eng). Un sistema di amplificazione del segnale specifico che utilizza l’intera quantità In Situ Hybridization – WISH fornisce una risoluzione più alta e risultati di fondo inferiori rispetto ai metodi tradizionali. Per ottenere un segnale migliore, il tempo di post-fissazione viene regolato a 30 min dopo l’ibridazione della sonda. Poiché la colorazione a fluorescenza non è sensibile negli embrioni di pesce zebra, viene sostituita con colorazione diaminobezidina (DAB). In questo protocollo, le linee iPSC derivate dal paziente HHT contenenti una mutazione eng sono differenziate in cellule endoteliali. Dopo aver rivestito una piastra con matrice di membrana seminterrato per 30 min a 37 gradi centigradi, gli iPSC-EC vengono seminati come motrici in pozzi e tenuti a 37 gradi centigradi per 3 h. Quindi, la lunghezza del tubo e il numero di rami vengono calcolati utilizzando immagini microscopiche. Pertanto, con questo protocollo WISH migliorato, è dimostrato che l’espressione eng ridotta influisce sulla formazione di progenitore endoteliale negli embrioni di pesce zebra. Ciò è ulteriormente confermato dai saggi di formazione dei tubi utilizzando iPSC-ECs derivati da un paziente con HHT. Questi saggi confermano il ruolo per l’eng nei primi sviluppi vascolari.
Una singola mutazione su eng (CD105) è stata segnalata in pazienti con HHT. La mutazione porta ad un aumento della proliferazione CE e alla riduzione dell’allungamento CE mediato dal flusso1,2. È stato anche riferito in precedenza che la carenza di ENG riduce l’espressione dei marcatori endoteliali (cioè kdrl, cdh5, hey2) nel pesce zebra3. L’endoglin, espresso principalmente nelle cellule endoteliali, è una glicoproteina transmembrana e funziona come co-recettore per trasformare i membri della famiglia del fattore di crescita . Dirige il legame BMP9 sulla superficie cellulare per regolare il gene a valle, compresa l’espressione Id1, per indurre la differenziazione delle cellule staminali verso EC4. Così, il gene eng svolge ruoli importanti nella vasculogenesi e nella malattia vascolare umana5,6. In precedenza abbiamo esaminato gli effetti del knockdown endoglin sulla formazione dei vasi negli embrioni di pesce zebra, seguito dall’analisi delle EC derivate da iPSC acquisite da un paziente HHT con una mutazione di eng 7. Questo protocollo dimostra gli effetti della carenza di ENG sull’espressione del marcatore del progenitore endoteliale e sulla formazione di tubi, che è un metodo quantificabile per misurare l’angiogenesi in vitro.
Per studiare l’espressione spaziale e temporale, WISH viene impiegato per rilevare l’espressione genica in vivo8. L’ibridazione in situ (ISH) è un metodo di utilizzo di sonde etichettate con sequenze complementari di acidi nucleici bersaglio (DNA o mRNA) per rilevare e visualizzare ibridi di acido nucleico bersaglio in un esemplare fisso. Il processo amplifica i segnali di espressione genica in vivo e viene utilizzato per rilevare l’espressione dei geni mediante microscopia. WISH è stato ampiamente utilizzato in vari animali modello, soprattutto nel pesce zebra9. È anche usato per acquisire i seguenti dati: 1) modelli di espressione campionaria/temporale, che forniscono informazioni sulla funzione genica e sulla classificazione; e 2) marcatori genici specificamente espressi che vengono utilizzati in farmaci ad alto consumo o screeningmutante 10.
Le sonde cromogeniche sono facilmente degradate con l’ibridazione tradizionale in situ (CISH) cromosomica in situ, che si traduce in un rumore di fondo elevato e segnali non specifici11,12. Il metodo WISH utilizza due sonde doppie indipendenti, che sono progettate per ibridarsi per indirizzare le sequenze di RNA. Ogni sonda contiene una sequenza di 18-25 complementare all’RNA bersaglio e una sequenza di coda di base di 14 (concettualizzata come z). Le sonde di destinazione vengono utilizzate in una coppia (doppio) . Le due sequenze di coda formano insieme un sito di ibridazione di base 28 per il preamplificatore, che contiene 20 siti di binding per l’amplificatore. L’amplificatore, a sua volta, contiene 20 siti di legame per la sonda di etichette e può teoricamente produrre fino a 8.000 etichette per ogni sequenza di RNA bersaglio.
Questa tecnologia avanzata facilita l’amplificazione simultanea del segnale e la soppressione dello sfondo per ottenere la visualizzazione a singola molecola, preservando la morfologia dei tessuti13. Ulteriore modifica dei metodi WISH si basa su precedenti ricerche14, tra cui fissazione supplementare e colorazione DAB. A condizione qui è un protocollo WISH migliorato che può funzionare anche se l’RNA bersaglio è parzialmente diminuito o degradato. I vantaggi includono che può essere completato in 24 h senza condizioni RNase-free. I segnali possono anche essere rilevati simultaneamente attraverso più canali da più destinazioni e i risultati sono coerenti e compatibili con i risultati di diverse piattaforme di automazione ad alta velocità effettiva.
I risultati dei modelli animali non riflettono il fenomeno che si verifica nell’uomo. ENG contiene due coppie di cistein conservi, C30-C207 e C53-C182, che formano ponti disulfide nelle regioni orfane. Per studiare ulteriormente il ruolo di eng nei pazienti affetti da HHT, i saggi di formazione dei tubi con iPSC derivati da pazienti HHT sono stati effettuati in cellule senza/con mutazioni di eng (Cys30Arg, C30R)15. Dopo Che Kubota et al. ha riportato per la prima volta l’esperimento di formazione dei tubi16, il saggio è stato sviluppato in diversi modi. È stato utilizzato per identificare fattori angiogenici o antiangiogenici, definire le vie di segnalazione nell’angiogenesi e identificare i geni che regolano l’angiogenesi17.
Prima della disponibilità di iPSC-EC derivati dai pazienti, i ricercatori hanno utilizzato principalmente le EC coltivate per studiare l’angiogenesi16. Tuttavia, per le cellule endoteliali, è una sfida tecnica trasdurre geni esogeni con un virus, a causa del numero di passaggio limitato che le EC possono subire. Questo perché non c’è quasi abbastanza materiale cellulare da raccogliere da vasi umani sia da un intervento chirurgico o da donatori approvati corrispondenti. Con l’invenzione della tecnica di generazione iPSC da shinya Yamanaka, gli EC umani derivati dagli iPSC possono essere utilizzati in modo affidabile in esperimenti in vitro, come riportato in precedenza18.
Utilizzando EC viralmente trasdotti con un numero limitato di e passaggi può essere sufficiente per gli studi di segnalazione, ma per gli studi funzionali, è meglio generare linee di cellule staminali pluripotenti mutanti (o iPSC o HESC mirati a CRISPER/Cas9), quindi differenziarli in EC per gli studi di angiogenesi che utilizzano saggi di formazione dei tubi19. La formazione del tubo può essere utilizzata per valutare la funzione delle cellule endoteliali con mutazioni. Questo protocollo descrive anche la formazione di tubi su una piastra di angiogenesi, che è un metodo facile, conveniente e riproducibile.
Il protocollo seguente fornisce un metodo affidabile e sistemico per studiare il ruolo di geni specifici nella formazione vascolare, insieme a dettagli per il modello di espressione in vivo e la quantificazione funzionale in vitro per la modellazione della malattia umana.
Questo protocollo ha applicato una piattaforma di analisi dell’RNA in situ a montaggio completo per i saggi di formazione di pesci zebra e di formazione di tubi su iPSC-EC derivati da un paziente HHT. Il metodo ISH tradizionale richiede un ciclo sperimentale più lungo con fasi sperimentali aggiuntive. Il protocollo presenta alcuni importanti miglioramenti, l’uso di doppie sonde indipendenti e iPSC derivate da un paziente con HHT che sono state applicate rispettivamente nei saggi WISH e nella formazione di tubi. Questi p…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato sostenuto dalle sovvenzioni del National Key Research and Development Program of China-stem cell and translational research [numero di sovvenzione 2016YFA0102300 (a Jun Yang)];la Nature Science Foundation of China [numero di sovvenzione 81870051, 81670054 (a Jun Yang)]; il CAMS Innovation Fund for Medical Sciences (CIFMS) [numero di sovvenzione 2016-I2M-4-003 (a Jun Yang)]; il PUMC Youth Found e i Fondi fondamentali di ricerca per le Università Centrali [numero di sovvenzione 2017310013 (a Fang shou)].
µ-Slide Angiogenesis | ibidi | 81506 | Cell culture |
Amp 1-FL | ACD | SDS 320852 | Signal Amplification |
Amp 2-FL | ACD | SDS 320853 | Signal Amplification |
Amp 3-FL | ACD | SDS 320854 | Signal Amplification |
Amp 4 Alt B-FL | ACD | SDS 320856 | Signal Amplification |
Corning Matrigel Matrix | Corning | 354234 | Growth factor-reduced Matrigel |
DEPC | Sigma | D5758 | RNAase-free Water |
Human Endothelial-SFM | Thermofisher | 11111044 | Cell culture |
Paraformaldehyde | Sigma | 30525-89-4 | Fixed embryos |
Paraformaldehyde | Sigma | 30525-89-4 | Fixed Cells |
Protease K | ACD | SDS 322337 | Digest tissue |
Sodium Citrate | Sigma | 6132-04-3 | SSCT solution: Wash Buffer |
VEGF-165 | STEMCELL Technologies | 78073 | Growth factor |