Summary

Explant של עכבר למבוגרים DRG הפומבית תא מודלים לחקור והנוירולוגיה הפלסטית ואת התגובות עלבונות סביבתי כולל זיהום ויראלי

Published: March 09, 2018
doi:

Summary

בדו ח זה, היתרונות של תרבויות organotypic ותרבויות הפומבית העיקרי של העכבר, נגזר שורש העזוב הגרעינים מודגשים לחקור מגוון רחב של מנגנונים הקשורים אינטראקציה נוירון-גליה, והנוירולוגיה הפלסטית, neuroinflammation, בתגובה זיהום ויראלי.

Abstract

פרוטוקול זה מתאר מודל ex-vivo של העכבר, נגזר שורש העזוב הגרעינים (DRG) explant במבחנה DRG-derived משותף ותרבות של חלופה מועדפת החישה הניריונים ותאי גלייה בלוויין. אלו דגמים שימושי ופסיביות לחקור מגוון רחב של תגובות ביולוגיות המשויך בתנאים פיזיולוגיים ופתולוגיים של מערכת העצבים ההיקפית (מערכת העצבים ההיקפית) החל אינטראקציה נוירון-גליה, והנוירולוגיה הפלסטית, neuroinflammation, זיהום ויראלי. השימוש DRG explant הוא מדעית יתרון בהשוואה למודלים פשטנית תאים בודדים מסיבות רבות. למשל, כמו תרבות organotypic, explant DRG מאפשר העברה ex-vivo של הרשת העצבית כולה כולל את microenvironment חוץ-תאית לשחק תפקיד משמעותי כל הפונקציות עצביים, גליה. עוד יותר, DRG explants יכול גם להישמר שמחוץ במשך מספר ימים ועל תנאי התרבות יכול להיות מוטרד ככל הרצוי. בנוסף, הרפובליקה שנקטפו יכול להיות עוד יותר הפומבית לתוך במבחנה שיתוף תרבות של נוירונים סנסוריים העיקרי ותאי גלייה בלוויין לחקור אינטראקציה עצביים-גליה, neuritogenesis, חרוט עצב אינטראקציה עם חוץ-תאית microenvironment, כללי יותר, כל היבט המשויך חילוף החומרים עצביים. לכן, המערכת DRG-explant מציע מידה רבה של גמישות ללימוד מגוון רחב של אירועים הקשורים לתנאי ביולוגי, פיזיולוגיים ופתולוגיים באופן יעיל.

Introduction

כתב יד זה, אנחנו מדווחים שיטה לקבל מודל לשעבר ויוו organotypic של מערכת מודל DRG העכבר נגזר כמו microenvironment כמו רקמות שהשתמרו לחקור מגוון רחב של תגובות ביולוגיות עלבונות מערכת העצבים ההיקפית החל נוירון-גליה אינטראקציה, והנוירולוגיה הפלסטית, סמנים דלקתיים, לזיהום ויראלי… בנוסף, בהמשך פיתחנו פרוטוקול כדי ליצור תרבות משותפת העיקרי של נגזר DRG נוירונים סנסוריים יחיד ותאים בלוויין.

הרפובליקה הם בלוויין אפור-חומר-יחידות ממוקם מחוץ למערכת העצבים המרכזית (CNS) לאורך עמוד השדרה הגבי שורשי עצבים בעמוד השדרה. הרפובליקה, הממוקם בסמיכות foramina בין-חולייתי, בית pseudounipolar החישה הניריונים, לוויין גלייה. הנוירונים pseudounipolar כוללים neurite יחיד זה מתפצל תהליך היקפיים נושאת תשומות סומאטית ואת הקרביים של מטרות היקפיים לגוף התא, תהליך מרכזי שישלח מידע חושי מהגוף תא לתוך מערכת העצבים. הלקט חיבור מגדיר ומבודד מקבץ היקפיים של נוירונים ותאי גלייה של מערכת העצבים. אין העברה תא כמחנכת או ממנו הרפובליקה פעם שתיארנו, גומחת תאי גזע מקומי אחראי neurogenic אירועים המתרחשים לאורך כל החיים1. לכן, מודל זה מתאים במיוחד ללמוד נוירוג’נסיס למבוגרים, axonogenesis, תגובה טראומטית הנגע ו תא מוות2,3,4,5,6,7 8, ,9 .

בתחום neuroregeneration, הרפובליקה שנקטפו ויוו , explanted במבחנה מתרבה axonotmesis, מצב הפציעה אקסונים אשר מלא במחוז, הגוף תאים עצביים מנותקת מן המטרה innervated10 ,11. זה ידוע כי פגיעה במערכת העצבים ההיקפית יכול לגרום ירידה ו מוגברת גנים של הרפובליקה, רבים של שינויים אלה הם תוצאה של תהליכי הרגנרציה אך רבים יכול להיות גם תוצאה של התגובה החיסונית או תגובה נוספת מתאי שאינם עצבית. על-ידי שימוש של ex-vivo מערכת מבודדת DRG, חלק המורכבות הזו יוסר ולא מסלולים מכניסטית יכולה להיחקר בקלות רבה יותר.

מלבד תפקידה המרכזי להולכת תשומות חושי אל מערכת העצבים, השפע של קולטני נוירוטרנסמיטרים רבים כולל גאבא12,13,14,15 ברמה של סומא עצביים וכן עדות interneuronal קרוס-עירור יכול להציע כי DRG הם מתוחכמים אינטגרטורים ראשוני של תשומות חושים16,17. אלו הממצאים החדשים להתייעץ כדי explant DRG המאפיינים של מערכת רשת עצבית מיני הדומה דגמים אחרים “מיני המוח”, אשר organoids עצבני-רקמות ספציפיות בשימוש עבור שדות ניסיוני רחבה יותר של החקירה וטיפוליים הגישה מחלות נוירולוגיות18,19. הראיות הללו יחד עם העובדה כי הרפובליקה היא אשכול נפרד ומוגדר היטב של הרקמה העצבית מוקף קפסולה חיבור, לעשות את זה איבר מתאים עבור השתלת ex-vivo .

העכבר culturing DRG מציג אפשרות multicellular מושכת לדגם pathophysiologies האדם בשל דמיון גנטי מבניים בין המינים. בנוסף, מאגר גדול של זנים העכבר הטרנסגניים היא תורמת מאוד מכניסטית מחקרים עתידיים. סיומת Neurite במהלך הפיתוח והן לאחר פציעה דורש מכני האינטראקציות בין צמיחה חרוט, המצע20,21. ננו, מיקרו-בדוגמת סובסטרטים שימשו ככלים neurite תוצר ישיר של להפגין את היכולת שלהם מגיבים לתכונות הטופוגרפי ב- microenvironments שלהם. נוירונים הוכחו לשרוד, דבקים, להעביר, אוריינט אקסונים שלהם כדי לנווט תכונות פני השטח כגון חריצים סובסטרטים22,23. עם זאת, מחקרים אלה נעזרו בדרך כלל שורות תאים בתרבית וזה קשה לחזות איך ראשי עצביים תאים הרצון להשיב רמזים מוגדרים היטב, פיזית ויוו או ex-vivo.

הדגם explant ex-vivo של העכבר DRG המשמש עבור הצעה זו מחקה את התא אמיתי-תא אינטראקציה, סימנים ביוכימיים סביב האקסונים הגדלים. בקרב רבים שונים פרדיגמות ניסיוני ועד התחדשות עצב, ייצור neurosphere, neuroinflammation, הרפובליקה explant דגם ימשיך לשמש כלי רב ערך לחקור ההיבט זיהום וההשהיה ויראלי בתוך החישה הגרעינים24,25,26,27.

באופן כללי, מערכת העצבים (NS) הוא יעד עבור זיהומים נגיפיים28,29,30. רוב הווירוסים להדביק תאים אפיתל, אנדותל משטחים ולעשות דרכם מן הרקמה משטח NS דרך העצבים ההיקפית סיבי ורפלקסי. בפרט, נגיף הרפס סימפלקס סוג 1 (HSV-1) לאחר זיהום ראשוני בתאי אפיתל יוצר השהיה חיים ארוך בשנת הגרעינים חושית רצוי, הרפובליקה של31,מערכת העצבים ההיקפית32. HSV-1 neuroptropic יכולת להדביק את מערכת העצבים ההיקפית מוביל בסופו של דבר מחלות נוירולוגיות33.

Protocol

כל ההליכים לרבות השימוש החיות אושרו על ידי סקירה מוסדיים שאושרו על-ידי לוח הפרוטוקולים (אוניברסיטת נברסקה-IACUC). 1. קצירת DRG מעוברים עכבר המתת חסד העכברים למבוגרים בשיטה חנק (CO2) ואחריו עריפת ראש. מיד להמשיך בניתוח להסיר את עמוד השדרה. לחשוף את עמוד השד…

Representative Results

ריבוי הפנים של אינטראקציה והנוירולוגיה הפלסטית ואקולוגיה נוירון יכול ייחקרו באמצעות DRG ודגם תרבות ותא חלופה מועדפת. התחלנו את המחקרים על-ידי בידוד של explant DRG ותאים DRG-derived הפומבית כמו סכמטי מיוצג באיור1. רקמות ומודלים תאים בודדים ניתן לנתח באמצעות מגוון רחב של טכניקות מולקו?…

Discussion

המודל DRG ex-vivo הוא מאוד שימושי לחקור מגוון רחב של אירועים כגון אינטראקציה נוירון-עכשיו, דונלד, כמו גם השפעת microenvironment על שני החומרים עצביים, גליה37. עוד, DRG-המודל יכול לשמש ככלי חסכונית כדי לטפל שאלות רלוונטיות לגבי מנגנון פתוגניים ומקושרת סמנים על ידי פיתוח ex- vivo מערכות ב…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים הדמיה הליבה-המתקן ב אוניברסיטת נברסקה (MWU) לבין הקבוצה של תלמידים [Chanmoly סנג, כריסטופר Dipollina, דריל Giambalvo ואת קייסי Sigerson] על תרומתם של תרבית תאים והדמיה עבודה. עבודת מחקר זו נתמכה על ידי גרנט Intramural של MWU מימון כדי M.F. ומחקר ראשונית V.T.

Materials

Adult Mice NIH/Swiss Harlan Laboratories
35mm petri dish Cell Treat 229635
Matrigel ECM Sigma-Aldrich E1270 gelatinous protein mixture
F12 Media Gibco 11765-054 *Part of SFM media
Collagenase IV Sigma-Aldrich C5138
Trypsin Sigma-Aldrich 25200-056
FBS Sigma-Aldrich F6178
0.22um filter BD Falcon 352350
Neurobasal media Gibco 10888-022
B27 supplement Gibco 17504-044 Supplement for neuronal culture
PSN antibiotics Gibco 15640-055 *Part of SFM media
Antibiotic mixture
L-glutamate Sigma-Aldrich G7513 *Part of SFM media
NGF Alomone Labs N-100 Nerve growth factor
Laminin coated coverslide Neuvitro GG-14-Laminin
ONPG subtrate Pierce 34055
X-gal Invitrogen 15520034
Antibody anti-B-tubulin Sigma-Aldrich T8328 1:2000 dilution
Antibody anti-peripherin Millipore AB1530 1:1000 dilution
Hoechst dye Thermo Fisher 62249 1.5 µM final concentration
Anti-heparan sulfate US Biological H1890-10 0.180555556
Anti gD antibody Virostat 196 1:10 dilution
BSA  Sigma-Aldrich A2153-100G *Part of SFM media
BME Gibco 21010-046 *Part of SFM media
Glucose Sigma-Aldrich G7021-1KG *Part of SFM media
KIT (Insulin-transferrin-Selenium-A) Gibco 51300-044 *Part of SFM media
Vitamin-C Sigma-Aldrich A4403 *Part of SFM media
Putrescine Sigma-Aldrich P7505 *Part of SFM media
488 (goat anti-mouse) Life Technologies A11029
Cy3 (goat anti-rabbit) Jackson Immunoresearch laboratories 111-165-003
Normal Goat serum  Vector S-1000
Formalin Solution Sigma-Aldrich HT5014-120ML
PBS Gibco 10010-031
Triton-X Sigma-Aldrich T9284-500ML
VectaShield Vector H-1500 Flurescence mount
Diamond White Glass Coverslides Globe Scientific 1380-20

References

  1. Muratori, L., et al. Generation of new neurons in dorsal root Ganglia in adult rats after peripheral nerve crush injury. Neural Plast. , 860546 (2015).
  2. Dellarole, A., Grilli, M. Adult dorsal root ganglia sensory neurons express the early neuronal fate marker doublecortin. J Comp Neurol. 511 (3), 318-328 (2008).
  3. Devor, M., Govrin-Lippmann, R. Neurogenesis in adult rat dorsal root ganglia. Neurosci Lett. 61 (1-2), 189-194 (1985).
  4. Farel, P. B., Boyer, A. Transient effects of nerve injury on estimates of sensory neuron number in juvenile bullfrog. J Comp Neurol. 410 (2), 171-177 (1999).
  5. Geuna, S., Borrione, P., Poncino, A., Giacobini-Robecchi, M. G. Morphological and morphometrical changes in dorsal root ganglion neurons innervating the regenerated lizard tail. Int J Dev Neurosci. 16 (2), 85-95 (1998).
  6. La Forte, R. A., Melville, S., Chung, K., Coggeshall, R. E. Absence of neurogenesis of adult rat dorsal root ganglion cells. Somatosens Mot Res. 8 (1), 3-7 (1991).
  7. Pannese, E. Investigations on the Ultrastructural Changes of the Spinal Ganglion Neurons in the Course of Axon Regeneration and Cell Hypertrophy I. Changes during Axon Regeneration. Z Zellforsch Mikrosk Anat. 60, 711-740 (1963).
  8. Popken, G. J., Farel, P. B. Sensory neuron number in neonatal and adult rats estimated by means of stereologic and profile-based methods. J Comp Neurol. 386 (1), 8-15 (1997).
  9. Tandrup, T. Unbiased estimates of number and size of rat dorsal root ganglion cells in studies of structure and cell survival. J Neurocytol. 33 (2), 173-192 (2004).
  10. Sarikcioglu, L., et al. Effect of severe crush injury on axonal regeneration: a functional and ultrastructural study. J Reconstr Microsurg. 23 (3), 143-149 (2007).
  11. Varejao, A. S., et al. Functional and morphological assessment of a standardized rat sciatic nerve crush injury with a non-serrated clamp. J Neurotrauma. 21 (11), 1652-1670 (2004).
  12. Hanack, C., et al. GABA blocks pathological but not acute TRPV1 pain signals. Cell. 160 (4), 759-770 (2015).
  13. Pagadala, P., et al. Loss of NR1 subunit of NMDARs in primary sensory neurons leads to hyperexcitability and pain hypersensitivity: involvement of Ca(2+)-activated small conductance potassium channels. J Neurosci. 33 (33), 13425-13430 (2013).
  14. Zhang, X. L., Albers, K. M., Gold, M. S. Inflammation-induced increase in nicotinic acetylcholine receptor current in cutaneous nociceptive DRG neurons from the adult rat. 신경과학. 284, 483-499 (2015).
  15. Zhu, Y., Lu, S. G., Gold, M. S. Persistent inflammation increases GABA-induced depolarization of rat cutaneous dorsal root ganglion neurons in vitro. 신경과학. 220, 330-340 (2012).
  16. Amir, R., Devor, M. Functional cross-excitation between afferent A- and C-neurons in dorsal root ganglia. 신경과학. 95 (1), 189-195 (2000).
  17. Kim, Y. S., et al. Coupled Activation of Primary Sensory Neurons Contributes to Chronic Pain. Neuron. 91 (5), 1085-1096 (2016).
  18. Lancaster, M. A., et al. Cerebral organoids model human brain development and microcephaly. Nature. 501 (7467), 373-379 (2013).
  19. Qian, X., et al. Brain-Region-Specific Organoids Using Mini-bioreactors for Modeling ZIKV Exposure. Cell. 165 (5), 1238-1254 (2016).
  20. Lowery, L. A., Van Vactor, D. The trip of the tip: understanding the growth cone machinery. Nat Rev Mol Cell Biol. 10 (5), 332-343 (2009).
  21. Dickson, B. J. Molecular mechanisms of axon guidance. Science. 298 (5600), 1959-1964 (2002).
  22. Miller, C., Shanks, H., Witt, A., Rutkowski, G., Mallapragada, S. Oriented Schwann cell growth on micropatterned biodegradable polymer substrates. Biomaterials. 22 (11), 1263-1269 (2001).
  23. Clark, P., Connolly, P., Curtis, A. S., Dow, J. A., Wilkinson, C. D. Topographical control of cell behaviour: II. Multiple grooved substrata. Development. 108 (4), 635-644 (1990).
  24. Antinone, S. E., Smith, G. A. Retrograde axon transport of herpes simplex virus and pseudorabies virus: a live-cell comparative analysis. J Virol. 84 (3), 1504-1512 (2010).
  25. Holland, D. J., Miranda-Saksena, M., Boadle, R. A., Armati, P., Cunningham, A. L. Anterograde transport of herpes simplex virus proteins in axons of peripheral human fetal neurons: an immunoelectron microscopy study. J Virol. 73 (10), 8503-8511 (1999).
  26. Sharthiya, H., Seng, C., Van Kuppevelt, T. H., Tiwari, V., Fornaro, M. HSV-1 interaction to 3-O-sulfated heparan sulfate in mouse-derived DRG explant and profiles of inflammatory markers during virus infection. J Neurovirol. 23 (3), 483-491 (2017).
  27. Zerboni, L., et al. Herpes simplex virus 1 tropism for human sensory ganglion neurons in the severe combined immunodeficiency mouse model of neuropathogenesis. J Virol. 87 (5), 2791-2802 (2013).
  28. Koyuncu, O. O., Hogue, I. B., Enquist, L. W. Virus infections in the nervous system. Cell Host Microbe. 13 (4), 379-393 (2013).
  29. Swanson, P. A., McGavern, D. B. Viral diseases of the central nervous system. Curr Opin Virol. 11, 44-54 (2015).
  30. Tyler, K. L. Emerging viral infections of the central nervous system: part 2. Arch Neurol. 66 (9), 1065-1074 (2009).
  31. Preston, C., Efstathiou, S., Campadelli-Fiume, G., Arvin, A., Mocarski, E. Ch 33. Human Herpesviruses Biology, Therapy, and Immunoprophylaxis. , (2007).
  32. Roizman, B., Whitley, R. J. An inquiry into the molecular basis of HSV latency and reactivation. Annu Rev Microbiol. 67, 355-374 (2013).
  33. Whitley, R., Kimberlin, . D. W., Prober, C. G., Arvin, A., et al. . Human Herpesviruses: Biology, Therapy, and Immunoprophylaxis. , (2007).
  34. Fueshko, S., Wray, S. LHRH cells migrate on peripherin fibers in embryonic olfactory explant cultures: an in vitro model for neurophilic neuronal migration. Dev Biol. 166 (1), 331-348 (1994).
  35. Parish, C. R. The role of heparan sulphate in inflammation. Nat Rev Immunol. 6 (9), 633-643 (2006).
  36. Zhang, X., Wang, B., Li, J. P. Implications of heparan sulfate and heparanase in neuroinflammation. Matrix Biol. 35, 174-181 (2014).
  37. Du, X., et al. Local GABAergic signaling within sensory ganglia controls peripheral nociceptive transmission. J Clin Invest. 127 (5), 1741-1756 (2017).
  38. Hughes, C. S., Postovit, L. M., Lajoie, G. A. Matrigel: a complex protein mixture required for optimal growth of cell culture. Proteomics. 10 (9), 1886-1890 (2010).

Play Video

Cite This Article
Fornaro, M., Sharthiya, H., Tiwari, V. Adult Mouse DRG Explant and Dissociated Cell Models to Investigate Neuroplasticity and Responses to Environmental Insults Including Viral Infection. J. Vis. Exp. (133), e56757, doi:10.3791/56757 (2018).

View Video