Questa carta indica agli utenti di in vivo scanner micro-tomografia (µCT) come anestetizzare, posizionare correttamente e trattenere l’arto posteriore di un topo per un movimento minimo durante imaging ad alta risoluzione della tibia. Il risultato è immagini di alta qualità che possono essere elaborate per quantificare con precisione micro-architettura dell’osso.
L’uso di in vivo micro-tomografia computerizzata (µCT) è un potente strumento che coinvolge l’imaging non-distruttivo delle strutture interne alle alte risoluzioni in modelli animali dal vivo. Questo consente per formazione immagine ripetuta del roditore stesso nel tempo. Questa caratteristica non solo riduce il numero totale dei roditori necessaria in un disegno sperimentale e quindi riduce la variazione inter-soggetta che possa sorgere, ma permette anche ai ricercatori di valutare le risposte longitudinale o tutta la vita ad un intervento. Per acquisire immagini di alta qualità che possono essere elaborate e analizzate per quantificare con maggiore precisione i risultati di micro-architettura dell’osso, gli utenti di in vivo scanner µCT correttamente devono anestetizzare il ratto e posizionare e frenare l’arto. Per effettuare questa operazione, è imperativo che il ratto anestetizzati ad un livello di rilassamento completo, e che pedali riflessi vengono persi. Queste linee guida possono essere modificate per ogni ratto individuo, come il tasso di metabolismo isoflurano può variare a seconda della dimensione del ceppo e del corpo. La tecnica adeguata per acquisizione di immagini in vivo µCT consente la misurazione accurata e coerenza di micro-architettura dell’osso all’interno e attraverso gli studi.
L’uso di in vivo micro-tomografia computerizzata (µCT) è un potente strumento che coinvolge l’imaging non-distruttivo delle strutture interne alle alte risoluzioni utilizzando modelli del roditore. La natura non-distruttivo di in vivo µCT permette per ripetute di imaging del roditore stesso nel tempo. Questa caratteristica non solo riduce il numero totale dei roditori necessaria in un disegno sperimentale e quindi riduce la variazione inter-soggetta che possa sorgere, ma permette anche ai ricercatori di capire le risposte a lungo termine ad un intervento. Con l’uso di ripetute in vivo µCT, esperimenti su topi e ratti hanno delucidato cambiamenti inerenti allo sviluppo per osso micro-architettura e densità minerale ossea (BMD durante periodi di durata della vita 1,2,3) ,4,5,6,7,8 , così come la risposta di salute dell’osso agli interventi come dieta 9,10, l’ovariectomia 7,11 e agenti farmacologici 8,12,13. BMD e microarchitettura ossea a specifici siti scheletrici, vale a dire la tibia prossimale, femore e vertebre lombari, sono indicativi di salute generale dell’osso e del rischio di sostenimento della frattura e così sono le misure primarie nel quantificare le risposte a un intervento.
Acquisizione di immagini in vivo µCT coinvolge bidimensionale proiezioni di raggi x viene acquisite ad angoli diversi, come la sorgente di raggi x e rivelatore ruotano attorno l’animale sotto inchiesta 14,15. La qualità dell’immagine risultante è dipendente da molti fattori tra cui, ma non limitato a: selezionati parametri di acquisizione (cioè, risoluzione spaziale, tensione dei raggi x, amperaggio, passo di rotazione, filtro applicato, tempo di esposizione), limitazioni della µCT scanner (cioè, gli elementi basati su scanner come anello artefatti o polvere che causano effetti di volume parziale o striature) e corretto posizionamento e contenimento dell’animale. I primi due di questi fattori possono essere manipolati in una certa misura da parte dell’utente, a seconda della macchina di scansione specifica, obiettivi di studio e le correzioni che sono necessarie per ottimizzano la funzione dello scanner o l’elaborazione delle immagini acquisite. Quest’ultimo di questi fattori, il corretto posizionamento del roditore prima della scansione, può essere raggiunto indipendentemente le limitazioni basate su scanner o dei parametri di acquisizione sono selezionati per raggiungere un obiettivo di studio specifico. Mentre molte pubblicazioni che coinvolgono in vivo imaging sono apparse nella letteratura 14,15,16,17, stile classico del manoscritto è tale che dettagliate “how to” informazioni non possono essere inclusi. Pertanto, lo scopo di questo articolo e video guida è di riempire questo vuoto. Qui ci proponiamo di indicare agli utenti di in vivo scanner µCT come anestetizzare un ratto e posizionare e frenare l’arto per produrre immagini di alta qualità che possono essere analizzate per quantificare con maggiore precisione i risultati di micro-architettura dell’osso.
Prevenire ostruzioni del fascio dei raggi x attraverso oggetti diversi dalla dell’arto sono imperativi per quantificare il BMD più accurate e valori di micro-architettura dell’osso. Come i raggi x passano attraverso oggetti e tessuti di spessore e densità variabili, alcuni dei raggi x sono assorbiti (cioè attenuato) dai materiali che passano attraverso. Poiché la densità di massa misurata di un campione è influenzata dal suo spessore e la presenza e spessori dei tessuti circostanti, è imperativo che i fantasmi di calibrazione utilizzati per determinare la BMD vengano analizzati nello stesso modo. Pertanto, se il fascio di raggi x è quello di passare attraverso gli oggetti (vale a dire, la coda) prima o dopo il passaggio attraverso la regione di interesse, tali oggetti in grado di assorbire alcune delle energie dei raggi x e interferiscano con la trasmissione immagine acquisita. Inoltre, queste scansioni sarebbe molto difficile da simulare quando si acquisiscono i fantasmi che devono assomigliare esempio scansioni. Di conseguenza, tali differenze di attenuazione portano ad inesattezza nella valutazione delle misure del BMD dell’osso. Così, per facilità e precisione, si consiglia di limitare il numero di ostacoli tra la sorgente di raggi x, regione di rivelatore di raggi x e di interesse.
Valutazione longitudinale della struttura dell’osso da un intervento in modelli pre-clinici coinvolgono l’anestesia ripetuta dell’animale per limitare il loro movimento durante l’analisi di protocolli. Esistono diversi metodi di anestesia generale per sottomettere gli animali sottoposti a una scansione µCT, tra cui iniettabili e inhalant anestesia 1,2,4,5,6, 12. a differenza di anestetici inalatori come isoflurano, ripetuta anestesia generale utilizzando anestetici iniettabili causa una riduzione di peso corporeo, tolleranza chirurgica e cambiamenti significativi di altri parametri fisiologici in roditori, in particolare ratti e cavie, suggerendo significative controindicazioni per ripetuto uso 18,19,20. Mentre isoflurane è altamente volatile e consente la rapida induzione e recupero, agenti anestetici iniettabili producono diversi livelli di anestesia e tempo sotto anestesia dipende il ceppo, il sesso, composizione corporea, uno stato di digiuno e ciclo circadiano della animale. Anestetici iniettabili pongono anche ulteriori ostacoli al loro uso in quanto sono altamente regolamentati dagli organi nazionali. L’anestesia per inalazione, tuttavia, comporta la consegna diretta nel sistema respiratorio; Questo metodo consente più velocemente induzione e recupero tempo e più facile controllare la lunghezza e la profondità di anestesia19,20. Limitazioni per il metodo di anestesia per inalazione coinvolgono relativo requisito per attrezzature specializzate di vaporizzazione e alcuni cambiamenti di frequenza cardiaca e pressione sanguigna durante l’induzione, mantenimento e recupero 18,19.
Questo protocollo fornisce gli spettatori con la prima guida di riferimento dettagliata per l’anestesia adeguata, il posizionamento e la moderazione del ratto in vivo µCT scansione dell’arto posteriore. Queste linee guida consentono agli utenti di in vivo µCT sistemi di scansione per ottenere alta risoluzione e immagini di alta qualità della tibia che può essere elaborato per la quantificazione della microarchitettura ossea 3-dimensionale. Fasi critiche nel protocollo necessario per garantire il corretto posizionamento e trattenuta coinvolgono l’anestesia adeguata di ratto, nonché estendere l’arto lontano da tutte le altre strutture critiche fino a quando è tesa, ma non in una posizione innaturale. Per i risultati ottimali di imaging, è imperativo che il ratto anestetizzati ad un livello di completo relax, e che i riflessi palpebrali e pedali vengono persi. Inoltre, la scansione gamba dovrebbe essere estesa e il tutto il piede e la caviglia deve essere trattenuti in schiuma. I metodi descritti sopra per ottenere un posizionamento ottimale della scansione gamba farà in modo che: 1) degli arti posteriori dei ratti all’interno di uno studio sono costantemente orientati nella stessa direzione, permettendo così il fascio di raggi x per passare attraverso la stessa area di ciascuna gamba durante la rotazione intorno al campione; 2) sia volontaria che involontaria movimento dell’arto posteriore non si verificherà, riducendo così al minimo il potenziale per artefatti di movimento di interferire con la qualità delle immagini acquisite; 3) ostruzioni da oggetti (vale a dire, la coda) sono evitati, riducendo così al minimo il potenziale per gli effetti di volume parziale a produrre misurazioni imprecise di BMD e TMD. Queste linee guida possono essere modificate per ogni ratto individuo, come il tasso di metabolismo isoflurano e posizionamento può variare a seconda del ceppo e corpo formato 22. Le più comuni in vivo scansione macchine sono progettati per piccoli modelli animali (cioè, topi, ratti, conigli, porcellini d’India) e avrà tappe animale intercambiabili per consentire la scansione di diverse dimensioni degli animali. Di conseguenza, possono ospitare una vasta gamma di pesi corporei.
Anche se in vivo µCT scansione permessi per il topo a essere riposizionato e rianalizzati se le immagini acquisite dalla scansione iniziale sono di scarsa qualità, ripetuta scansione esporrà il topo a dosi aggiuntive di radiazione e isoflurano anestesia per un periodo prolungato di tempo. Esposizione a radiazioni ripetute mensile di 600 mGy focalizzata alla tibia del ratto più di quattro mesi non causa effetti negativi alle ossa micro-architettura rispetto alla controlaterale dell’arto posteriore 1, ma questo non accertare la sicurezza di due scansioni ripetute in successione immediata. Ulteriori limitazioni della tecnica descritti includono la necessità di estendere l’arto teso con le forze applicate ad esso per tenerlo ancora, che possono richiamare alcuni cambiamenti nella struttura ossea. Mentre la severità di limitazione della dell’arto durante la scansione dipenderà ogni obiettivo di ricerca, ricerche precedenti dal nostro laboratorio che coinvolgono mensile ripetute in vivo imaging di µCT di un arto è provocato da una differenza nella corticale micro-architettura parametro, eccentricità, rispetto per l’arto controlaterale che non subissero estensione ripetuti, stabilizzazione e scansione 1. L’eccentricità è una misura della forma ellittica dell’osso corticale e cambiamenti in risposta a alterato carico-cuscinetto. Pertanto, quando usando questo metodo di posizionamento e trattenente dell’arto posteriore per ripetuto µCT in vivo imaging, considerazione va fatta quando valutare e interpretare modifiche ai parametri di micro-architettura portante.
Mentre le suddette linee guida sono state fornite per l’imaging e l’analisi del tessuto osseo, lievi modifiche al protocollo devono essere effettuati quando la formazione immagine dei tessuti molli degli arti posteriori. In particolare, il modo in cui l’arto viene esteso dal torso e trattenuto deve tener conto, come l’attuale procedura misshapes l’orientamento dei tessuti molli (muscoli, tessuto adiposo) in posizionamento anormale per tutta la durata della scansione. Pertanto, quando estrapolando questo modello per l’uso nella formazione immagine del tessuto molle dell’arto posteriore, alcuni aggiustamenti dovrebbero essere fatto per la tecnica di contenimento per ridurre o eliminare le modifiche nel posizionamento dei tessuti in relazione l’uno con l’altro.
Inoltre, le linee guida sono state scritte specificamente basato sulle esperienze del nostro gruppo di ricerca, tuttavia, possono essere modificati per ospitare altri scanner µCT disponibili in commercio in vivo . Altri metodi suggeriti per posizionare e frenare l’arto posteriore potrebbero essere disponibili dal produttore del µCT in vivo sistema di scansione. Più commercialmente disponibili in vivo unità µCT riportate in polipropilene polistirene espanso, e tubi di plastica con cera dentaria per tenere una sporgente del piede come accettabile materiali e metodi per immobilizzare la gamba di scansione. Tuttavia, il metodo presentato in questo protocollo fornire più controllata e coerente posizionamento e moderazione della gamba digitalizzata e costantemente produce immagini di alta qualità. Le linee guida presentate nel presente metodo richiedono attrezzature specializzate necessarie per l’anestesia del ratto, come un vaporizzatore, tubi, maschere, alloggiamenti di induzione e ossigeno. Anche se l’attrezzatura è associato un costo leggermente superiore rispetto agli anestetici iniettabili, permette i ricercatori la possibilità di rapidamente e precisamente inducono anestesia a specifiche profondità della coscienza, che fornisce un vantaggio su alternativa metodi.
Utilizzando le linee guida delineate nel presente metodo video, i ricercatori che utilizzano tecnologie di alta risoluzione in vivo µCT a studiare il loro intervento di interesse sarà in grado di correttamente e costantemente orientare e trattenere dell’arto posteriore del ratto per alta imaging a raggi x di qualità. Questo fornirà un continuum nel campo dell’acquisizione di immagini in vivo µCT e servire come un passo verso l’ottimizzazione la coerenza e la precisione nell’ambito degli studi e abilitare i confronti tra gli studi nella letteratura. Allo stesso modo, questi protocolli e metodi possono essere espansa per l’uso in altre specie di roditori, tra cui topi, anche se alcune modifiche sarà richiesto 2,10. Ad esempio, il sistema di ritenuta del piede nel tubo della gomma piuma può includere la caviglia per minimizzare la possibilità di movimento delle gambe durante la scansione. Inoltre, il piede completo si inserisce nella schiuma titolare. Così, le dita non si estendono fuori dalla fine del titolare come fanno quando si fissa il piede di un ratto. Inoltre, il corpo del mouse non richiede la stessa moderazione con nastro come il ratto. Un cono di naso più piccolo può essere utilizzato per mantenere l’anestesia in topi durante la scansione. Se un più piccolo cono di naso non è disponibile, si può garantire un guanto di nitrile sopra il cono di naso disponibile e fare una piccola incisione nel guanto di fornire uno spazio che può andare bene il naso del mouse per fornire anestesia mantenendo una guarnizione intorno al naso.
Mentre la tibia prossimale è il principale sito di indagine delle modifiche alle ossa micro-struttura nel ratto, linee guida per il posizionamento corretto e coerente di altri siti scheletrici come il femore e le vertebre lombari dovrebbero essere studiate e stabilite per coerenza nella letteratura. Tuttavia, quando si intraprende la ricerca futura che coinvolgono l’imaging delle vertebre lombari, considerazioni vanno fatte come formazione immagine della spina dorsale fornisce esposizione alle radiazioni di organi circostanti e i tessuti.
The authors have nothing to disclose.
Gli autori riconoscono ricerca finanziamenti da una borsa di studio per la scoperta della NSERC (#05573) e la Fondazione canadese per l’innovazione (#222084) per il finanziamento in vivo micro-CT W.E. Ward è un Canada Research Chair in osso e lo sviluppo muscolare.
Isoflurane | Fresenius Kabi Animal Health | 108737 | |
Vaporizer | Dispomed | 990-1091-3SINEWA | |
Scavengers/Charcoal Filters | Dispomed | 985-1005-000 | |
Micro-CT Scanner | Bruker microCT | SkyScan 1176 | |
Dental wax | Kerr Dental Laboratory | 623 | |
Foam (Backer Rod) | Rona | CF12086 | 1”x10’ |
Plastic tube | Bruker microCT | SP-3010 | |
Carbon-fiber bed | Bruker microCT | SP-3002 | |
Vet Wrap/Bandage | Dura-Tech | 17473 | |
Ophthalmic Gel | OptixCare | 006CLC-4256 | Antibiotic-free |
Heating pad | Sunbeam | 000731-500-000 |