Summary

Sagittal विमान गाढ़ापन चाल विश्लेषण में C57BL/6 चूहों MOG35 के अधीन-55 प्रेरित प्रयोगात्मक स्व-प्रतिरक्षित Encephalomyelitis

Published: November 04, 2017
doi:

Summary

sagittal विमान में गाढ़ापन चाल विश्लेषण कैसे आंदोलन को अंजाम दिया है के बारे में अत्यधिक सटीक जानकारी पैदावार । हम इन तकनीकों के आवेदन का वर्णन करने के लिए स्व-प्रतिरक्षित-मध्यस्थता ग्रासलेल्या के अधीन चूहों के लिए चाल घाटे की पहचान. इन तरीकों को भी अंय माउस बिगड़ा गतिवान विशेषता मॉडलों के लिए चाल घाटे विशेषताएं इस्तेमाल किया जा सकता है ।

Abstract

sagittal विमान में गाढ़ापन चाल विश्लेषण अक्सर कई स्केलेरोसिस (एमएस) में मोटर घाटे की विशेषताएं किया गया है । हम इन तकनीकों के आवेदन के लिए एमएस, प्रयोगात्मक स्व-प्रतिरक्षित encephalomyelitis (EAE) के रूप में जाना के एक माउस मॉडल में चाल घाटे की पहचान का वर्णन । पक्षाघात और EAE के अधीन चूहों में मोटर घाटे आम तौर पर एक नैदानिक स्कोरिंग पैमाने का उपयोग कर आकलन कर रहे हैं. हालांकि, इस पैमाने केवल क्रमवार डेटा है कि मोटर घाटे की सटीक प्रकृति के बारे में कम जानकारी प्रदान करता है पैदावार । EAE रोग गंभीरता भी rotarod प्रदर्शन, जो सामांय मोटर समंवय का एक उपाय प्रदान करता है द्वारा मूल्यांकन किया गया है । इसके विपरीत, sagittal विमान में हिंद अंग के गाढ़ापन चाल विश्लेषण कैसे आंदोलन ख़राब है के बारे में अत्यधिक सटीक जानकारी उत्पंन करता है । इस प्रक्रिया को करने के लिए, चिंतनशील मार्करों हिंद अंग पर रखा जाता है संयुक्त आंदोलन का पता लगाने के लिए जबकि एक चूहा एक ट्रेडमिल पर चल रहा है । मोशन विश्लेषण सॉफ्टवेयर चलने के दौरान मार्करों के आंदोलन को मापने के लिए प्रयोग किया जाता है । गाढ़ापन चाल मापदंडों तो परिणामी डेटा से प्राप्त कर रहे हैं । हम बताते है कि कैसे इन चाल मापदंडों EAE में कूल्हे, घुटने, और टखने के जोड़ों की बिगड़ी आंदोलनों का इस्तेमाल किया जा सकता है । इन तकनीकों को बेहतर रोग तंत्र को समझने और एमएस और अंय neurodegenerative विकारों कि गतिशीलता ख़राब के लिए संभावित उपचार की पहचान करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है ।

Introduction

चाल गतिवान प्राप्त करने के लिए इस्तेमाल किया अंगों के दोहराव आंदोलनों की एक श्रृंखला है । चाल चरण चक्र है, जो दो चरणों में विभाजित कर रहे हैं शामिल है: रुख दौर है, जो है जब पैर जमीन पर पीछे की ओर बढ़ रहा है शरीर को आगे बढ़ाने के लिए; और स्विंग चरण है, जहां पैर जमीन बंद है और आगे बढ़ रहा है । चाल की गड़बड़ी कई neurodegenerative विकारों की पहचान विशेषताएं हैं, जैसे रीढ़ की हड्डी की चोट (विज्ञान), मल्टीपल स्केलेरोसिस (एमएस), पेशीशोषी पार्श्व स्केलेरोसिस (एस), पार्किंसंस रोग (पीडी), और स्ट्रोक; इन विकारों के नैदानिक कुतर मॉडल अक्सर उनके संबंधित चाल ख़राबी दोहराऊंगा1। चूहों में गतिवान के बुनियादी नियंत्रण तंत्र का गहन अध्ययन किया गया है2,3. इसके अतिरिक्त, वहां कई मानव स्नायविक विकारों के माउस मॉडल है4। चूहों में चाल विश्लेषण इसलिए शारीरिक को संबद्ध किया जाना जाता है कि मोटर घाटे के कई पहलुओं को मापने के लिए एक आकर्षक दृष्टिकोण है । माउस मॉडल में चाल के अध्ययन neurodegenerative विकारों में हरकत घाटे के neuropathological अड्डों में अंतर्दृष्टि प्रदान कर सकते हैं, और संभावित उपचार की पहचान सक्षम करें ।

कुछ तकनीकों कि कुतर में चाल को मापने के लिए इस्तेमाल किया गया है दृश्य निरीक्षण (जैसे, Basso माउस स्केल5 और ओपन फील्ड टेस्ट6) और ventral विमान7से चाल का विश्लेषण शामिल हैं । हाल ही में, तरीकों hindlimb आंदोलनों के sagittal विमान कीनेमेटीक्स को मापने के लिए लोकप्रियता प्राप्त की है क्योंकि वे आंदोलन के निष्पादन के बारे में अधिक जानकारी प्रदान करने और फलस्वरूप चाल में सूक्ष्म परिवर्तन के लिए और अधिक संवेदनशील है8, 9 , 10 , 11. गाढ़ापन तकनीक sagittal विमान में hindlimb आंदोलन का अध्ययन करने के लिए विकसित करते हुए एक ट्रेडमिल पर चलने9,12 बड़े पैमाने पर विज्ञान के संदर्भ में अध्ययन किया गया है, एस, दर्दनाक cortical चोटों, स्ट्रोक, और हटिंगटन का रोग8,9,10,11,13,14,15,16। इसके विपरीत, इन तकनीकों कई स्केलेरोसिस17के माउस मॉडल के लिए हरकत घाटे के अध्ययन में सीमित उपयोग को देखा है ।

प्रयोगात्मक स्व-प्रतिरक्षित encephalomyelitis (EAE) MS18का सबसे अधिक उपयोग किया जाने वाला माउस मॉडल है । EAE उत्प्रेरण के दो मुख्य तरीके सक्रिय या निष्क्रिय टीका के माध्यम से है । एक्टिव EAE में चूहों को myelin एंटीजन के साथ प्रतिरक्षित जाता है, जिससे स्पाइनल टी सेल की मध्यस्थता neuroinflammation और ग्रासलेल्या रीढ़ की हड्डी में सेरिबैलम है । निष्क्रिय EAE, दूसरी ओर, सक्रिय EAE के साथ एक माउस से एक भोली माउस19के लिए प्रतिक्रियात्मक टी कोशिकाओं को स्थानांतरित द्वारा प्रेरित है । कहीं वर्णित के रूप में, रोग पाठ्यक्रम और neuropathology केंद्रीय तंत्रिका तंत्र (सीएनएस) प्रतिजन और माउस तनाव से प्रभावित कर रहे हैं20,21,22,23,24 ,25. EAE प्रयोगों में, नियंत्रण चूहों myelin प्रतिजन के बिना पूरा Freund के सहायक () के साथ इंजेक्ट कर रहे हैं । EAE पक्षाघात है कि पूंछ कमजोरी के साथ शुरू होता है और संभावित forelimbs शामिल कर सकते है आरोही द्वारा विशेषता है, गतिभंग और पक्षाघात में जिसके परिणामस्वरूप20। हम हाल ही में C57Bl/6 myelin oligodendrocyte ग्लाइकोप्रोटीन 35-55 (मोग35-55)-प्रेरित EAE के अधीन चूहों में चाल परिवर्तन विशेषता है । ये अध्ययन चाल विश्लेषण से पता चला है शास्त्रीय व्यवहार विश्लेषण से बेहतर है क्योंकि सामांय टखने आंदोलन से विचलन अत्यधिक EAE चूहों की काठ का रीढ़ की हड्डी में सफेद बात नुकसान की डिग्री के साथ संबंधित है26। इसके विपरीत, सफेद बात नुकसान और दो अंय पारंपरिक व्यवहार उपायों (नैदानिक स्कोरिंग और rotarod) के बीच संबंध की ताकत बहुत कमजोर था26

हम यहां गाढ़ापन चाल विश्लेषण का उपयोग करने के लिए EAE एक ट्रेडमिल पर चलने चूहों के sagittal विमान में आंदोलन घाटे का पता लगाने का वर्णन । उच्च गति वीडियो रिकॉर्डिंग में हिप, घुटने, और टखने जोड़ों के आंदोलन की पहचान करने के लिए एक hindlimb पर पांच चिंतनशील मार्करों रखा गया था । मोशन विश्लेषण सॉफ्टवेयर संयुक्त भ्रमण के बारे में गाढ़ापन डेटा निकालने के लिए इस्तेमाल किया गया था । इन तकनीकों की उपयोगिता EAE के मोग35-55 मॉडल के लिए आंदोलन घाटे यों तो चर्चा कर रहे हैं । इन तकनीकों को भी neurodegenerative विकारों के अंय माउस मॉडलों में चाल घाटे के अध्ययन के लिए लागू कर रहे हैं ।

Protocol

यह प्रोटोकॉल पशु देखभाल दिशानिर्देश पर कनाडाई परिषद के अनुसार है और इसे प्रयोगशाला पशुओं पर डलहौजी विश्वविद्यालय समिति द्वारा अनुमोदित किया गया था ।

1. निर्माण चिंतनशील मार्करों: ?…

Representative Results

चित्रा 1 गाढ़ापन चाल विश्लेषण के लिए इस्तेमाल किया प्रक्रिया का एक योजनाबद्ध प्रतिनिधित्व है. सबसे पहले, चिंतनशील मार्करों बना रहे हैं और 5 संरचनात्मक अंक पर एक माउस पर रखा. चाल तो दर्ज की है, ?…

Discussion

EAE के साथ चूहों में, मोटर घाटे को मापने के दो सबसे आम तरीकों नैदानिक स्कोरिंग और एक rotarod27,28से विलंबता गिर रहे हैं । इन तकनीकों में कई सीमाएं हैं । हालांकि सुविधाजनक और व्यापक रूप से इस्…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम फिल्माने के साथ उनकी तकनीकी सहायता के लिए सिड Chedrawe स्वीकार करना चाहते हैं । यह काम कनाडा के एमएस सोसायटी (EGID २९८३) से धन द्वारा समर्थित किया गया ।

Materials

Camera Nikon Nikon D750 Used to film the video
Reflective tape B&L Engineering MKR-Tape-2
Fine scissors Fine Science Tools 15023-10
Forceps Fine Science Tools 11252-20
Glue gun Craftsmart E231647
scalpel handle #4 Roboz R5-9884
Scalpel Blade No.10 Feather 2020-12
C57BL/6 mice Charles River Laboratories
Anesthetic machine EZ Anesthesia EZ-AF9000 Auto Flow System
Recirculating water heating blanket Androit HTP-1500
topical eye lubricant Refresh DIN00210889
Shaver Oster 78997-010
High speed camera Fastec Fastec IL3-100
High power light Smith Victor Corporation Model 700 SG (600 Watt quartz light, 120 Volts)
Light Stand Promaster LS1
Treadmill Custom built at the Zoological Institute, University of Cologne
Microsoft Excel 2016 Microsoft Version 2016
KinemaJ Nicolas Stifani This is a script generated for use with ImageJ
KinemaR Nicolas Stifani This is a script generated for use with Rstudio
Vicon Motus Vicon Motus Version 9.00
GraphPad Prism GraphPad Version 6.00

References

  1. Giladi, N., Horak, F. B., Hausdorff, J. M. Classification of gait disturbances: distinguishing between continuous and episodic changes. Mov Disord. 28 (11), 1469-1473 (2013).
  2. Kiehn, O. Decoding the organization of spinal circuits that control locomotion. Nat Rev Neurosci. 17 (4), 224-238 (2016).
  3. Akay, T., Tourtellotte, W. G., Arber, S., Jessell, T. M. Degradation of mouse locomotor pattern in the absence of proprioceptive sensory feedback. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (47), 16877-16882 (2014).
  4. Hafezparast, M., Ahmad-Annuar, A., Wood, N. W., Tabrizi, S. J., Fisher, E. M. Mouse models for neurological disease. Lancet Neurol. 1 (4), 215-224 (2002).
  5. Basso, D. M., et al. Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains. J Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).
  6. Tatem, K. S., et al. Behavioral and locomotor measurements using an open field activity monitoring system for skeletal muscle diseases. J Vis Exp. (91), e51785 (2014).
  7. Hetze, S., Romer, C., Teufelhart, C., Meisel, A., Engel, O. Gait analysis as a method for assessing neurological outcome in a mouse model of stroke. J Neurosci Methods. 206 (1), 7-14 (2012).
  8. Preisig, D. F., et al. High-speed video gait analysis reveals early and characteristic locomotor phenotypes in mouse models of neurodegenerative movement disorders. Behav Brain Res. 311, 340-353 (2016).
  9. Leblond, H., L’Esperance, M., Orsal, D., Rossignol, S. Treadmill locomotion in the intact and spinal mouse. J Neurosci. 23 (36), 11411-11419 (2003).
  10. Ueno, M., Yamashita, T. Kinematic analyses reveal impaired locomotion following injury of the motor cortex in mice. Exp Neurol. 230 (2), 280-290 (2011).
  11. Zorner, B., et al. Profiling locomotor recovery: comprehensive quantification of impairments after CNS damage in rodents. Nat Methods. 7 (9), 701-708 (2010).
  12. Pearson, K. G., Acharya, H., Fouad, K. A new electrode configuration for recording electromyographic activity in behaving mice. J Neurosci Methods. 148 (1), 36-42 (2005).
  13. Balkaya, M., Krober, J. M., Rex, A., Endres, M. Assessing post-stroke behavior in mouse models of focal ischemia. J Cereb Blood Flow Metab. 33 (3), 330-338 (2013).
  14. Akay, T. Long-term measurement of muscle denervation and locomotor behavior in individual wild-type and ALS model mice. J Neurophysiol. 111 (3), 694-703 (2014).
  15. Taylor, T. N., Greene, J. G., Miller, G. W. Behavioral phenotyping of mouse models of Parkinson’s disease. Behav Brain Res. 211 (1), 1-10 (2010).
  16. Chen, K., et al. Differential Histopathological and Behavioral Outcomes Eight Weeks after Rat Spinal Cord Injury by Contusion, Dislocation, and Distraction Mechanisms. J Neurotrauma. 33 (18), 1667-1684 (2016).
  17. de Bruin, N. M., et al. Multiple rodent models and behavioral measures reveal unexpected responses to FTY720 and DMF in experimental autoimmune encephalomyelitis. Behav Brain Res. 300, 160-174 (2016).
  18. Steinman, L., Zamvil, S. S. How to successfully apply animal studies in experimental allergic encephalomyelitis to research on multiple sclerosis. Ann Neurol. 60 (1), 12-21 (2006).
  19. Emerson, M. R., Gallagher, R. J., Marquis, J. G., LeVine, S. M. Enhancing the ability of experimental autoimmune encephalomyelitis to serve as a more rigorous model of multiple sclerosis through refinement of the experimental design. Comp Med. 59 (2), 112-128 (2009).
  20. Bittner, S., Afzali, A. M., Wiendl, H., Meuth, S. G. Myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG35-55) induced experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) in C57BL/6 mice. J Vis Exp. (86), (2014).
  21. Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. Induction and clinical scoring of chronic-relapsing experimental autoimmune encephalomyelitis. J Vis Exp. (5), e224 (2007).
  22. Barthelmes, J., et al. Induction of Experimental Autoimmune Encephalomyelitis in Mice and Evaluation of the Disease-dependent Distribution of Immune Cells in Various Tissues. J Vis Exp. (111), (2016).
  23. Shaw, M. K., Zhao, X. Q., Tse, H. Y. Overcoming unresponsiveness in experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) resistant mouse strains by adoptive transfer and antigenic challenge. J Vis Exp. (62), e3778 (2012).
  24. Stromnes, I. M., Goverman, J. M. Passive induction of experimental allergic encephalomyelitis. Nat Protoc. 1 (4), 1952-1960 (2006).
  25. Stromnes, I. M., Goverman, J. M. Active induction of experimental allergic encephalomyelitis. Nat Protoc. 1 (4), 1810-1819 (2006).
  26. Fiander, M. D., Stifani, N., Nichols, M., Akay, T., Robertson, G. S. Kinematic gait parameters are highly sensitive measures of motor deficits and spinal cord injury in mice subjected to experimental autoimmune encephalomyelitis. Behav Brain Res. 317, 95-108 (2017).
  27. Jones, M. V., et al. Behavioral and pathological outcomes in MOG 35-55 experimental autoimmune encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 199 (1-2), 83-93 (2008).
  28. van den Berg, R., Laman, J. D., van Meurs, M., Hintzen, R. Q., Hoogenraad, C. C. Rotarod motor performance and advanced spinal cord lesion image analysis refine assessment of neurodegeneration in experimental autoimmune encephalomyelitis. J Neurosci Methods. 262, 66-76 (2016).
  29. Sasaki, M., Lankford, K. L., Brown, R. J., Ruddle, N. H., Kocsis, J. D. Focal experimental autoimmune encephalomyelitis in the Lewis rat induced by immunization with myelin oligodendrocyte glycoprotein and intraspinal injection of vascular endothelial growth factor. Glia. 58 (13), 1523-1531 (2010).
  30. Merkler, D., Ernsting, T., Kerschensteiner, M., Bruck, W., Stadelmann, C. A new focal EAE model of cortical demyelination: multiple sclerosis-like lesions with rapid resolution of inflammation and extensive remyelination. Brain. 129 (Pt 8), 1972-1983 (2006).
  31. Franco-Pons, N., Torrente, M., Colomina, M. T., Vilella, E. Behavioral deficits in the cuprizone-induced murine model of demyelination/remyelination. Toxicol Lett. 169 (3), 205-213 (2007).
  32. Goldberg, N. R., Hampton, T., McCue, S., Kale, A., Meshul, C. K. Profiling changes in gait dynamics resulting from progressive 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine-induced nigrostriatal lesioning. J Neurosci Res. 89 (10), 1698-1706 (2011).
check_url/kr/56032?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fiander, M. D., Chedrawe, M. A., Lamport, A., Akay, T., Robertson, G. S. Sagittal Plane Kinematic Gait Analysis in C57BL/6 Mice Subjected to MOG35-55 Induced Experimental Autoimmune Encephalomyelitis. J. Vis. Exp. (129), e56032, doi:10.3791/56032 (2017).

View Video