Aqui, descrevemos uma metodologia para obter uma população pura de mioblastos humanos a partir do tecido muscular adulto. Essas células são usadas para estudar a diferenciação do músculo esquelético in vitro e, em particular, para estudar proteínas envolvidas na sinalização de Ca 2+ .
As células satélites (SC) são células-tronco muscular localizadas entre a membrana plasmática das fibras musculares e a lâmina basal circundante. São essenciais para a regeneração muscular. Após lesão, que ocorre freqüentemente nos músculos esqueléticos, os SCs são ativados. Eles proliferam como mioblastos e se diferenciam para reparar lesões musculares. Entre muitos eventos que ocorrem durante a diferenciação muscular, os sinais citostáticos de Ca 2 + são de grande importância. Estes sinais de Ca2 + surgir de libertação de Ca2 + a partir de Ca 2+ lojas internos, bem como de Ca2 + entrada a partir do espaço extracelular, particularmente a entrada de Ca2 + operado por armazenamento (SOCE). Este artigo descreve uma metodologia utilizada para obter uma população pura de mioblastos humanos a partir de amostras musculares coletadas após a cirurgia ortopédica. O tecido é digerido mecanicamente e enzimaticamente, e as células são amplificadas e depois ordenadas por citometria de fluxo de acordo com a presença de especificaçãoMarcadores de membrana de fic. Uma vez obtidos, os mioblastos humanos são expandidos e comprometidos em se diferenciar removendo os fatores de crescimento do meio de cultura. Os níveis de expressão de fatores de transcrição específicos e imunofluorescência in vitro são utilizados para avaliar o processo de diferenciação miogênica em condições de controle e após o silenciamento de proteínas envolvidas na sinalização de Ca 2+ . Finalmente, detalhamos o uso de Fura-2 como uma sonda ratiométrica de Ca 2+ que fornece medidas confiáveis e reprodutíveis de SOCE.
Os músculos esqueletais humanos são compostos de grupos de fibras musculares contrácteis e multinucleadas resultantes da fusão de células precursoras miogênicas. Os músculos esqueléticos têm a capacidade de regenerar após lesão graças à presença de SCs, as células estaminais do músculo esquelético localizadas entre a membrana plasmática das miofibras (sarcolemma) e a lâmina basal. Em músculos não feridos, os SCs estão principalmente presentes em um estado quiescente. Em resposta ao estresse ou lesão mecânica, os SCs se tornam ativados (mioblastos), proliferam e sofrem qualquer diferenciação para formar novas miofibras ou auto-renovação para reabastecer o SC pool 1 , 2 . Ao longo dos anos, várias técnicas foram desenvolvidas para isolar SCs e sua progênie, os mioblastos, a partir de biópsias de músculo esquelético. Com a maior compreensão dos marcadores de superfície celular expressados nessas células e a metodologia de triagem celular ativada por fluorescência (FACS) 3, 4 , 5 , agora é possível isolar populações puras de mioblastos humanos a partir de amostras musculares.
A sinalização de cálcio rege o desenvolvimento do músculo esquelético, a homeostase e a regeneração. Em particular, a entrada Ca 2+ que é ativada após a depleção da loja intracelular, chamada SOCE, é de grande importância 6 para esses processos. Após a estimulação celular, o nível de Ca 2 + no retículo endo / sarcoplasmático (ER / SR) diminui, o que, por sua vez, ativa os canais de Ca 2+ da membrana plasmática que permitem a entrada de Ca 2+ para reabastecer o ER / SR 7 . As duas principais proteínas envolvidas em SOCE são a proteína 1 (STIM1) da molécula de interação estromal sensível ao ER / SR Ca 2 + e o canal Ca 2+ da membrana plasmática Orai1. O músculo esquelético expressa abundantemente essas duas proteínas, bem como outras proteínas das mesmas famílias (STIM2 aNd Orai2-Orai3) 8 , 9 e vários canais permeáveis a Ca 2+ da família canônica potencial de receptor transitório (TRPC) 10 , 11 , 12 , 13 . A entrada de Ca 2+ através da via SOCE é de grande importância para a formação / regeneração muscular 14 . As mutações das proteínas STIM1 ou Orai1 têm efeitos deletérios sobre a função muscular, levando principalmente a hipotonia muscular 15 . Modelos de animais com deficiência de SOCE também apresentam massa muscular reduzida e força, juntamente com uma fatigabilidade melhorada 6 , 16 , 17 . Como mencionado, outras proteínas STIM e Orai, bem como muitos canais TRPC, são expressas no músculo esquelético, e seus respectivos papéis não foram determinados até agora. Ao bater dPossuem seu nível de expressão, é possível investigar suas implicações na SOCE e seus papéis durante a diferenciação muscular do esqueleto humano.
A medição de SOCE pode ser realizada usando duas abordagens diferentes: gravações eletrofisiológicas atuais e medições de Ca 2+ . A eletrofisiologia é certamente um método mais direto, pois mede a atualidade de interesse e sua assinatura eletrofisiológica associada. No entanto, esta técnica é muito difícil de aplicar às células musculares, principalmente devido ao grande tamanho das células musculares e ao pequeno tamanho da corrente endógena da SOCE. A imagem citosólica do Ca 2 + é tecnicamente muito acessível, mas a medida é mais indireta, pois o nível de Ca 2+ medido no citosol reflete tanto a entrada de Ca 2 + quanto o re-bombeamento da célula ou nas lojas internas.
Uma metodologia que inclui a isolação de mioblastos de pequenos pedaços de skel humanoO músculo etal após digestão enzimática, amplificação e FACS é explicado neste artigo. O processo de diferenciação muscular e o protocolo de imunofluorescência para seguir a expressão de marcadores de diferenciação ao longo do tempo são descritos 18 . Finalmente, são explicadas as medidas de SOCE e o papel de diferentes canais de íons na sinalização de Ca 2 + e diferenciação muscular esquelética.
O isolamento e a cultura dos mioblastos humanos do músculo esquelético adulto oferecem um modelo in vitro para estudar a diferenciação muscular e a regeneração muscular. Neste artigo, fornecemos um protocolo que permite a purificação de altos rendimentos de mioblastos humanos de maneira simples e limitada em termos de custo. Além disso, esta técnica fornece resultados confiáveis e reprodutíveis em termos de porcentagem de mioblastos isolados e sua eficiência d…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pela Fundação Nacional de Ciência da Suíça (número de subvenção 310030-166313), a "Fundação Suisse para a pesquisa sobre les maladies musculaires", a "Fundação Marcel Levaillant" e a "Fundação para a pesquisa ostéo-articular".
Ham’s F10 | ThermoFisher Scientific | 31550-023 | |
FCS | ThermoFisher Scientific | 10270-106 | Lot 41G5532K |
BSA | Sigma | O5482 | |
fetuin | Sigma | F3385 | |
EGF | Corning | 354001 | |
Dexamethansone | Sigma | D1756 | |
Insulin | Sigma | I9278 | |
Creatine | Sigma | 27900 | |
Pyruvate | Sigma | P4562 | |
Uridine | Sigma | U3003 | |
Gentamycin | ThermoFisher Scientific | 15710-049 | |
Trypsin-EDTA 0.05% | ThermoFisher Scientific | 25300-062 | |
70 μm cell strainer | Falcon | 352350 | |
40 μm cell strainer | Falcon | 352340 | |
Falcon 50 ml tube | Falcon | 352070 | |
Falcon 15 ml tube | Falcon | 352096 | |
Falcon 5 ml tube (FACS) | Falcon | 352058 | |
Culture medium: OPTI-MEM | ThermoFisher Scientific | 31985-047 | |
Transfectant reagnt: RNAiMax | ThermoFisher Scientific | 1756064 | |
PBS | ThermoFisher Scientific | 14190-094 | |
Mounting medium | Fluka | 10981 | |
Mouse anti-MyHC * | DSHB | MF20 | concentrate |
Mouse anti-myogenin | BD Pharmigen | 556358 | |
Rabbit anti-MEF2 | Santa Cruz Biotech | C-21 | |
Goat anti-mouse Alexa488 | ThermoFisher Scientific | A11029 | |
Goat anti-rabbit Alexa 546 | ThermoFisher Scientific | A11035 | |
Mouse anti human CD56-Alexa488 | BD Pharmingen | 557699 | |
Mouse anti human CD146-PECy7 | BD Pharmingen | 562135 | |
Mouse anti human CD45-PE-CF594 | BD Pharmingen | 562279 | |
Mouse anti human CD34-APC | BD Pharmingen | 345804 | |
Mouse anti human CD144-PE | BD Pharmingen | 560410 | |
Alexa Fluor 488 mouse IgG1k | BD Pharmingen | 557702 | |
PECy7 mouse IgG1k | BD Pharmingen | 557872 | |
PE-CF594 mouse IgG1k | BD Pharmingen | 562292 | |
APC mouse IgG1k | BD Pharmingen | 550854 | |
PE mouse IgG1k | BD Pharmingen | 556650 | |
DAPI | Sigma | D9542 | CAUTION: toxic compound |
Paraformaldehyde | Fluka | 762400 | |
Fura-2 AM | ThermoFisher Scientific | F1201 | |
Pluronic F-127 | ThermoFisher Scientific | P3000MP | |
Thapsigargin | Sigma | T9033 | CAUTION : toxic compound |
Ratio imaging acquisition software: Metafluor 6.3 | Molecular Device | ||
* : MF 20 was deposited to the DSHB by Fischman, D.A. |