Summary

Isolamento de mioblastos humanos, avaliação da diferenciação miogênica e medição de entrada de cálcio armazenada

Published: July 26, 2017
doi:

Summary

Aqui, descrevemos uma metodologia para obter uma população pura de mioblastos humanos a partir do tecido muscular adulto. Essas células são usadas para estudar a diferenciação do músculo esquelético in vitro e, em particular, para estudar proteínas envolvidas na sinalização de Ca 2+ .

Abstract

As células satélites (SC) são células-tronco muscular localizadas entre a membrana plasmática das fibras musculares e a lâmina basal circundante. São essenciais para a regeneração muscular. Após lesão, que ocorre freqüentemente nos músculos esqueléticos, os SCs são ativados. Eles proliferam como mioblastos e se diferenciam para reparar lesões musculares. Entre muitos eventos que ocorrem durante a diferenciação muscular, os sinais citostáticos de Ca 2 + são de grande importância. Estes sinais de Ca2 + surgir de libertação de Ca2 + a partir de Ca 2+ lojas internos, bem como de Ca2 + entrada a partir do espaço extracelular, particularmente a entrada de Ca2 + operado por armazenamento (SOCE). Este artigo descreve uma metodologia utilizada para obter uma população pura de mioblastos humanos a partir de amostras musculares coletadas após a cirurgia ortopédica. O tecido é digerido mecanicamente e enzimaticamente, e as células são amplificadas e depois ordenadas por citometria de fluxo de acordo com a presença de especificaçãoMarcadores de membrana de fic. Uma vez obtidos, os mioblastos humanos são expandidos e comprometidos em se diferenciar removendo os fatores de crescimento do meio de cultura. Os níveis de expressão de fatores de transcrição específicos e imunofluorescência in vitro são utilizados para avaliar o processo de diferenciação miogênica em condições de controle e após o silenciamento de proteínas envolvidas na sinalização de Ca 2+ . Finalmente, detalhamos o uso de Fura-2 como uma sonda ratiométrica de Ca 2+ que fornece medidas confiáveis ​​e reprodutíveis de SOCE.

Introduction

Os músculos esqueletais humanos são compostos de grupos de fibras musculares contrácteis e multinucleadas resultantes da fusão de células precursoras miogênicas. Os músculos esqueléticos têm a capacidade de regenerar após lesão graças à presença de SCs, as células estaminais do músculo esquelético localizadas entre a membrana plasmática das miofibras (sarcolemma) e a lâmina basal. Em músculos não feridos, os SCs estão principalmente presentes em um estado quiescente. Em resposta ao estresse ou lesão mecânica, os SCs se tornam ativados (mioblastos), proliferam e sofrem qualquer diferenciação para formar novas miofibras ou auto-renovação para reabastecer o SC pool 1 , 2 . Ao longo dos anos, várias técnicas foram desenvolvidas para isolar SCs e sua progênie, os mioblastos, a partir de biópsias de músculo esquelético. Com a maior compreensão dos marcadores de superfície celular expressados ​​nessas células e a metodologia de triagem celular ativada por fluorescência (FACS) 3, 4 , 5 , agora é possível isolar populações puras de mioblastos humanos a partir de amostras musculares.

A sinalização de cálcio rege o desenvolvimento do músculo esquelético, a homeostase e a regeneração. Em particular, a entrada Ca 2+ que é ativada após a depleção da loja intracelular, chamada SOCE, é de grande importância 6 para esses processos. Após a estimulação celular, o nível de Ca 2 + no retículo endo / sarcoplasmático (ER / SR) diminui, o que, por sua vez, ativa os canais de Ca 2+ da membrana plasmática que permitem a entrada de Ca 2+ para reabastecer o ER / SR 7 . As duas principais proteínas envolvidas em SOCE são a proteína 1 (STIM1) da molécula de interação estromal sensível ao ER / SR Ca 2 + e o canal Ca 2+ da membrana plasmática Orai1. O músculo esquelético expressa abundantemente essas duas proteínas, bem como outras proteínas das mesmas famílias (STIM2 aNd Orai2-Orai3) 8 , 9 e vários canais permeáveis ​​a Ca 2+ da família canônica potencial de receptor transitório (TRPC) 10 , 11 , 12 , 13 . A entrada de Ca 2+ através da via SOCE é de grande importância para a formação / regeneração muscular 14 . As mutações das proteínas STIM1 ou Orai1 têm efeitos deletérios sobre a função muscular, levando principalmente a hipotonia muscular 15 . Modelos de animais com deficiência de SOCE também apresentam massa muscular reduzida e força, juntamente com uma fatigabilidade melhorada 6 , 16 , 17 . Como mencionado, outras proteínas STIM e Orai, bem como muitos canais TRPC, são expressas no músculo esquelético, e seus respectivos papéis não foram determinados até agora. Ao bater dPossuem seu nível de expressão, é possível investigar suas implicações na SOCE e seus papéis durante a diferenciação muscular do esqueleto humano.

A medição de SOCE pode ser realizada usando duas abordagens diferentes: gravações eletrofisiológicas atuais e medições de Ca 2+ . A eletrofisiologia é certamente um método mais direto, pois mede a atualidade de interesse e sua assinatura eletrofisiológica associada. No entanto, esta técnica é muito difícil de aplicar às células musculares, principalmente devido ao grande tamanho das células musculares e ao pequeno tamanho da corrente endógena da SOCE. A imagem citosólica do Ca 2 + é tecnicamente muito acessível, mas a medida é mais indireta, pois o nível de Ca 2+ medido no citosol reflete tanto a entrada de Ca 2 + quanto o re-bombeamento da célula ou nas lojas internas.

Uma metodologia que inclui a isolação de mioblastos de pequenos pedaços de skel humanoO músculo etal após digestão enzimática, amplificação e FACS é explicado neste artigo. O processo de diferenciação muscular e o protocolo de imunofluorescência para seguir a expressão de marcadores de diferenciação ao longo do tempo são descritos 18 . Finalmente, são explicadas as medidas de SOCE e o papel de diferentes canais de íons na sinalização de Ca 2 + e diferenciação muscular esquelética.

Protocol

As amostras musculares humanas (tecidos obtidos a partir de músculos semitendinosos) foram coletadas durante a cirurgia ortopédica em pacientes saudáveis ​​como resíduos cirúrgicos. Todos os métodos relacionados ao estudo humano foram realizados de acordo com as diretrizes e regulamentos das Autoridades Regulatórias de Saúde da Suíça e aprovados pela Comissão Cantonale d'Ethique de Recherche dos Governos Cantonais de Genebra, Suíça (protocolo CER n ° 12-259) . Foram obtidos consentimentos informado…

Representative Results

Após a dissociação enzimática de uma amostra de músculo humano, as células foram amplificadas em GM. Os mioblastos humanos, definidos como células CD56 + / CD146 + / CD45- / CD34- / CD144-, foram obtidos após FACS. Os mioblastos representaram mais de 60% da população analisada ( Figura 1 ). Os mioblastos humanos primários foram reaparecidos, cultivados em confluência e cultivados em DM por 48 h. Após a imunocoloração para a expressão do fator de transcrição MEF2 e da prote…

Discussion

O isolamento e a cultura dos mioblastos humanos do músculo esquelético adulto oferecem um modelo in vitro para estudar a diferenciação muscular e a regeneração muscular. Neste artigo, fornecemos um protocolo que permite a purificação de altos rendimentos de mioblastos humanos de maneira simples e limitada em termos de custo. Além disso, esta técnica fornece resultados confiáveis ​​e reprodutíveis em termos de porcentagem de mioblastos isolados e sua eficiência d…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pela Fundação Nacional de Ciência da Suíça (número de subvenção 310030-166313), a "Fundação Suisse para a pesquisa sobre les maladies musculaires", a "Fundação Marcel Levaillant" e a "Fundação para a pesquisa ostéo-articular".

Materials

Ham’s F10 ThermoFisher Scientific 31550-023
FCS ThermoFisher Scientific 10270-106 Lot 41G5532K
BSA Sigma O5482
fetuin Sigma F3385
EGF Corning 354001
Dexamethansone Sigma D1756
Insulin Sigma I9278
Creatine Sigma 27900
Pyruvate Sigma P4562
Uridine Sigma U3003
Gentamycin ThermoFisher Scientific 15710-049
Trypsin-EDTA 0.05% ThermoFisher Scientific 25300-062
70 μm cell strainer Falcon 352350
40 μm cell strainer Falcon 352340
Falcon 50 ml tube Falcon 352070
Falcon 15 ml tube Falcon 352096
Falcon 5 ml tube (FACS) Falcon 352058
Culture medium: OPTI-MEM ThermoFisher Scientific 31985-047
Transfectant reagnt: RNAiMax ThermoFisher Scientific 1756064
PBS ThermoFisher Scientific 14190-094
Mounting medium Fluka 10981
Mouse anti-MyHC * DSHB MF20  concentrate
Mouse anti-myogenin BD Pharmigen 556358
Rabbit anti-MEF2 Santa Cruz Biotech C-21
Goat anti-mouse Alexa488 ThermoFisher Scientific A11029
Goat anti-rabbit Alexa 546 ThermoFisher Scientific A11035
Mouse anti human CD56-Alexa488 BD Pharmingen 557699
Mouse anti human CD146-PECy7 BD Pharmingen 562135
Mouse anti human CD45-PE-CF594 BD Pharmingen 562279
Mouse anti human CD34-APC BD Pharmingen 345804
Mouse anti human CD144-PE BD Pharmingen 560410
Alexa Fluor 488 mouse IgG1k BD Pharmingen 557702
PECy7 mouse IgG1k BD Pharmingen 557872
PE-CF594 mouse IgG1k BD Pharmingen 562292
APC mouse IgG1k BD Pharmingen 550854
PE mouse IgG1k BD Pharmingen 556650
DAPI Sigma D9542 CAUTION:  toxic compound
Paraformaldehyde Fluka 762400
Fura-2 AM ThermoFisher Scientific F1201
Pluronic F-127 ThermoFisher Scientific P3000MP
Thapsigargin Sigma T9033 CAUTION : toxic compound 
Ratio imaging acquisition software: Metafluor 6.3 Molecular Device
* : MF 20 was deposited to the DSHB by Fischman, D.A. 

References

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Cite This Article
Laumonier, T., Koenig, S., Saüc, S., Frieden, M. Isolation of Human Myoblasts, Assessment of Myogenic Differentiation, and Store-operated Calcium Entry Measurement. J. Vis. Exp. (125), e55918, doi:10.3791/55918 (2017).

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