В этой работе представлена новая модель сегментарного повреждения почек in vivo с использованием трансгенного даниофата почки GFP. Модель позволяет индуцировать целенаправленную абляцию эпителиальных клеток почек, чтобы показать клеточные механизмы повреждения и восстановления нефронов.
Острая почечная травма (AKI) является распространенным заболеванием с высокой смертностью. С восстановительными способностями почки можно восстановить адекватную функцию почек после поддерживающего лечения. Тем не менее, лучшее понимание того, как происходит смерть и восстановление клеток нефронов на клеточном уровне, необходимо для минимизации гибели клеток и для улучшения процесса регенерации. Пронефрос рыбок данио является хорошей модельной системой для достижения этой цели, поскольку содержит анатомические сегменты, сходные с нефроном млекопитающих. Раньше наиболее распространенной моделью, используемой для исследования повреждения почек у рыб, была фармакологическая модель гентамицина. Однако эта модель не позволяет обеспечить точное пространственно-временное управление травмой, и, следовательно, трудно исследовать клеточные и молекулярные процессы, связанные с восстановлением почек. Чтобы преодолеть это ограничение, эта работа представляет собой метод, с помощью которого, в отличие от подхода гентамицина, специфический зеленый люминесцентный белок (GFP) -exПрессовый нефронный сегмент может быть фотоизолирован с использованием фиолетового лазерного излучения (405 нм). Эта новая модель AKI дает много преимуществ, которых не хватает другим методам эпителиального повреждения. Его главными преимуществами являются способность «набирать» уровень травмы и точный пространственно-временный контроль в устойчивой модели животного животного in vivo . Этот новый метод может значительно повысить уровень понимания механизмов повреждения почек и восстановления.
Острая почечная травма (AKI) 1 , 2 , которая также может упоминаться как острая почечная недостаточность, широко определяется как внезапное нарушение функции почек 3 . Хотя уровень понимания этого состояния значительно улучшился за последние годы, показатели заболеваемости и смертности остались высокими 1 , 2 . Текущая обработка этого состояния в основном благоприятна, поскольку результаты нескольких клинических испытаний лекарственной терапии были отрицательными 4 , 5 . Почка уникальна тем, что обладает способностью восстанавливать себя. Поэтому поддерживающая терапия после ранней диагностики АКИ является наилучшим способом ограничения заболеваемости 6 . Тем не менее, трудно обнаружить АКИ раньше, а смертность – ошеломляющая 50-80% для тех, кто нуждается в диализе 5, С возможностью восстановления почек и отсутствия вариантов лечения для этого состояния важно разработать методы для усиления этого процесса регенерации нефронов.
Было много различных моделей, используемых для исследования AKI, которое включает в себя различные средства травм и модели животных. В терминах агентов повреждения почек аминогликозидный антибиотик гентамицин использовался в качестве нефротоксического агента, который приводит к АКИ 7 , 8 . Однако несколько групп обнаружили, что лечение гентамицином является смертельным для эмбриона 9 рыбок данио. Это приводит к повреждению трубчатой оболочки, что является слишком серьезным для восстановления эмбриона, что затрудняет исследование регенерации без какого-либо вмешательства. Модели млекопитающих, такие как мышь и крыса, также считаются ценными, но при изучении АКИ они сталкиваются со многими ограничениями. Возможно, главным недостатком моделей грызунов является трудностьЛизирования почки грызунов и, таким образом, определения точных пространственно-временных процессов, ведущих к эпителиальной смерти и восстановлению.
Johnson et al. Сообщили о методе лазерной абляции для индуцирования острой почечной недостаточности у эмбриональных и личиночных рыбок данио 9 . Они использовали импульсную лазерную абляцию для повреждения почек после внутримышечной инъекции декстрановыми конъюгатами. Флуоресценция из декстрановых конъюгатов позволяет визуализировать повреждение и регенерацию в эпителии трубочки 9 . Эта модель преодолевает два ограничения, упомянутые выше, но не позволяет оценивать уровни травм и их трудно выполнять на больших, произвольных группах клеток.
Новая описанная здесь новая модель лазерного моделирования данио-волны, основанная на абляции, описывает все перечисленные выше ограничения. Пронефрическая почка у личиночных рыбок данио представляет собой зрелый, функционирующий орган, который содержит сегменты, сходные с млекопитающим nePhron, включая клубочковый, проксимальный и дистальный канальцы, и сборный канал 10 . Личинки данио также являются оптически прозрачными, что делает возможным наблюдение за почками через флуоресцентные методы. Таким образом, рыбка данио представляет собой ценную in vivo модель AKI, а личиночная прооннефтная почка (5-12 дней после оплодотворения (dpf)) может быть использована для изучения клеточных и молекулярных процессов, связанных с повреждением и восстановлением почек.
В этой статье представлен метод, посредством которого конкретные зеленые флуоресцентные белки (GFP) -экспрессирующие нефронные сегменты могут быть фотоизолированы с использованием низкоэнергетического (по сравнению с импульсно-лазерным) фиолетового лазерного излучения (405 нм). Флуоресценция GFP позволяет нацеливать группу клеток, делая изменения, которые происходят видимыми благодаря наблюдению за фотообесцвечиванием GFP. Кроме того, GFP (поглощая фиолетовый свет) служит в качестве поглотителя энергии, чтобы потенцировать повреждение в GFP-экспрессирующих почках. Микроскопы с временным разрешениемКопия затем может быть использована для изучения процесса ремонта. Исследования показали, что клеточная пролиферация, миграция клеток и метаплазия клеток 11 , 12 , 13 – все это потенциальные процессы, которые могут играть важную роль в восстановлении почек. Однако относительную важность этих процессов и детали их взаимодействия трудно выявить из-за ограничений существующих моделей AKI. Используя этот новый подход, можно было показать, что миграция клеток играет центральную роль в восстановлении почек после острой травмы 14 .
Следует отметить, что общая мощность лазера изменяется между системами. Тем не менее, использование процента фотообесцвечивания GFP позволяет считывать полную энергию, подаваемую на флуоресцентную почку, независимо от изменения мощности лазера и компенсируется длительностью воздейс?…
The authors have nothing to disclose.
Мы хотели бы поблагодарить д-ра Иэна Драммонда и доктора Владимира Коржа за распространение трансгенных линий почки GFP. Мы также хотели бы поблагодарить NYITCOM за предоставление необходимых ресурсов для проведения этой работы. Это исследование частично поддерживалось грантами: K08DK082782, R03DK097443 (NIH) и пилотным грантом HSCI (AV).
Petri Dishes, 35 x 10mm | Genesee Scientific | 32-103 | Procedural Usage: Step 2.4,2.7 |
Petri Dishes, 100 x 15mm | Midwest Scientific | 910 | Procedural Usage: Step 1 |
De-chorination forceps- Electron Microscopy Sciences Dumont Tweezers 5 Dumostar | Fischer Scientific | 50-241-57 | Procedural Usage: Step 2.1.1 |
Plastic Transfer Pipet | Globe Scientific | 135030 | Procedural Usage: Step 2.5, 3.6 |
Tricaine | Sigma Aldrich | A5040-25G | Procedural Usage: Step 2.3, 3.4 |
Agarose | Fischer Scientific | BP165-25 | Procedural Usage: Step 2.3 |
Pulled glass probe (manufactured manually from glass capillary tubes) | Fischer Scientific | 21-1640-2C | Procedural Usage: Step 2.4 |
Stereomicroscope | Nikon | SMZ1270 | Procedural Usage: Step 1.5 |
SOLA Light Engine | Lumencor | SOLA SM-5-LCR-SB | Procedural Usage: Step 1.5 |
Eclipse C2 Plus Confocal Microscope System | Nikon | Procedural Usage: Step 3 | |
1x E3 Solution | Recipe used to generate: 5 mM NaCl, 0.17 mM KCl, 0.33 mM CaCl 2 , 0.33 mM MgSO 4 Procedural Step Usage: 1.2, 1.3, 2.2, 2.3 | ||
PTU | Sigma | P7629-10G | Procedural Step Usage: 1.3, 2.2, 3.4, and 4.2 |
NIS Elements Software | Nikon | C2+ | Procedural Usage: Step 3 |
Laser Unit | Agilent | MLC 400 | Procedural Step 3.11 |
Propidium Iodide | Sigma Aldrich | P4170-100MG | Procedural Step Usage: 4.2 |