ההשוואה ואופטימיזציה של שתי שיטות העשרה DNA DNA organellar צמח מוצגים: צנטריפוגה ההפרש הדיפרנציאלי ואת החלוקה של gDNA הכולל מבוסס על מצב מתילציה. אנו מעריכים את כמות הדנ"א וכתוצאה מכך, מדגימים ביצועים ברצף של הדור הבא, וקוראים את הפוטנציאל לשימוש ברצף המולקולה החד-פעמית.
גנומים צמחיים מכילים רכיבים גדולים וחוזרים על עצמם, שעשויים לעבור זיווג או רקומבינציה ליצירת מבנים מורכבים ו / או קטעים גנומיים. גנומים של Organellar קיימים גם בתוספות בתוך תא נתון או סוג רקמות (heteroplasmy), ושפע של תת-סוגים עשויים להשתנות במהלך הפיתוח או כאשר נמצאים תחת לחץ (תת-סטויצ'יומטרי). הדור הבא רצף (NGS) טכנולוגיות נדרשים כדי להשיג הבנה עמוקה יותר של מבנה הגנום organellar ותפקוד. מחקרי רצף מסורתיים משתמשים במספר שיטות כדי להשיג DNA DNA: (1) אם נעשה שימוש בכמות גדולה של רקמה מתחילה, הוא הומוגני ונתון לצנטריפוגה דיפרנציאלית ו / או לטיהור הדרגתי. (2) אם נעשה שימוש בכמות קטנה יותר של רקמות ( כלומר, אם הזרעים, החומר או החלל מוגבלים), אותו תהליך מבוצע כמו (1), ולאחר מכן הגברה של הגנום כולו כדי להשיג מספיק DNA. (3) ניתוח ביואינפורמטיקה ניתן להשתמש כדי seqאת הדנ"א הגנומי הכולל ולנתח את הקריאה. לכל השיטות הללו יש אתגרים ופריצות. ב (1), זה יכול להיות קשה להשיג כזה כמות גדולה של רקמת החל; ב (2), הגברה הגנום כולו יכול להציג הטיה רצף; (3), הומולוגיה בין גנומים גרעיניים ו organellar יכול להפריע הרכבה וניתוח. במפעלים עם גנומים גרעיניים גדולים, זה יתרון להעשיר עבור DNA organellar כדי להפחית את עלויות הרצף ואת המורכבות רצף עבור ניתוחים ביואינפורמטיקה. כאן, אנו משווים שיטת צנטריפוגה דיפרנציאלית מסורתית בשיטה הרביעית, שיטה מתואמת CpG-methyl הנפתחת, כדי להפריד בין ה- DNA הגנומי הכולל לשברים גרעיניים ואורגניים. שתי השיטות מניבות די-אן-אי מספיק ל- NGS, DNA המועשר מאוד עבור רצפים אורגניים, אם כי ביחסים שונים במיטוכונדריה ובצ'לורופלסטים. אנו מציגים את האופטימיזציה של שיטות אלה עבור רקמות עלה חיטה ולדון היתרונות העיקריים דחסרונות של כל גישה בהקשר של קלט המדגם, קלות הפרוטוקול, ואת היישום במורד הזרם.
רצף הגנום הוא כלי רב עוצמה לנתח את הבסיס הגנטי הבסיסי של תכונות המפעל חשוב. רוב מחקרי הגנום-רצף מתמקדים בתוכן הגנום הגרעיני, שכן רוב הגנים נמצאים בגרעין. עם זאת, גנומים אורגנואר, כולל המיטוכונדריה (על פני eukaryotes) ופלסטידים (בצמחים, הצורה המקצועית, הכלורופלסט, עובד בפוטוסינתזה) לתרום מידע גנטי משמעותי חיוני לפיתוח אורגניזמים, תגובת מתח, ואת הכושר הכללי 1 . גנומים של Organellar כלולים בדרך כלל בחריצות דנ"א הכוללות רצף גנומי גרעיני, למרות ששיטות להפחתת מספר האורגנים לפני החילוץ של דנ"א מועסקים גם 2 . מחקרים רבים השתמשו תוצאות רצף מתוך סך gDNA חילוץ להרכיב genelles organellar 3 , 4 , 5 ,Xref "> 6 , 7. עם זאת, כאשר המטרה של המחקר היא להתמקד genomes organellar, באמצעות gDNA הכולל מגדילה את עלויות רצף כי רבים קורא" אבודים "רצפי DNA גרעיני, במיוחד צמחים עם גנומים גרעיניים גדולים יתר על כן, בשל שכפול והעברת רצפים organellar לתוך הגנום הגרעיני בין האברונים, פתרון המיקום הנכון מיפוי של רצף קורא לגנום הנכון הוא מאתגר ביואינפורמטית 2 , 8. טיהור genomes organellar מן הגנום הגרעיני הוא אחד אסטרטגיות ביואינפורמטיקה נוספות ניתן להשתמש כדי להפריד קורא את המפה לאזורים של הומולוגיה בין המיטוכונדריה ו chloroplasts.
בעוד גנומים organellar ממין צמחים רבים כבר רצף, מעט ידוע על רוחב של מגוון גנום organellarזמין באוכלוסיות בר או בבריכות גידול מעובדות. גנומים Organellar ידועים גם להיות מולקולות דינמיות שעוברות סידור מבניים משמעותי עקב רקומבינציה בין רצפים חוזרים 9 . יתר על כן, עותקים מרובים של הגנום organellar כלולים בתוך כל אברון, ואת האברונים מרובים נמצאים בתוך כל תא. לא כל העותקים של גנומים אלה זהים, הידועה בשם הטרופלסמי. בניגוד לתמונה הקאנונית של "חוגי אב", יש כיום ראיות גוברות לתמונה מורכבת יותר של מבני גנום, כולל חוגים תת-גנומיים, כרומוזומים ליניאריים, קונקאמרים לינאריים ומבנים מסועפים 10 . ההרכבה של הגנום צמח organellar הוא מסובך עוד יותר על ידי גדלים גדולים יחסית שלהם חוזר משמעותי הפוך ישיר.
פרוטוקולים מסורתיים לבידוד organellar, טיהור דנ"א, ואת הגנום הבאים רצף דואר הם לעתים קרובות מסורבל ודורשים כמויות גדולות של קלט רקמות, עם כמה גרם כלפי מעלה של מאות גרם של רקמת עלה צעיר צורך כנקודת התחלה 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 . זה עושה רצף הגנום organellar נגיש כאשר הרקמה מוגבלת. במצבים מסוימים, כמויות זרע מוגבלות, כגון כאשר יש צורך רצף על בסיס דורי או בקווים סטריליים זכרים כי צריך להישמר דרך חציית. במצבים אלה, DNA יכול להיות מטוהרים ולאחר מכן חשוף הגברה של הגנום כולו. עם זאת, הגברה שלמה הגנום יכול להציג הטיה רציף רצף, אשר היא בעיה מסוימת בעת הערכת וריאציה מבנית, מבנים גנומיים, ורמות heteroplasmy22 ההתקדמות האחרונה בהכנה לספריה לטווחים קצרים לקריאה של טכנולוגיות יש להתגבר על חסמי כניסה נמוכים כדי למנוע הגברה של הגנום כולו. לדוגמה, ערכת הכנה של ספריית NXTERA XT של Illumina XT מאפשרת מעט כמו 1 ng של DNA שישמש כקלט 19 . עם זאת, ההכנות הספריות סטנדרטיים עבור יישומים רצף לקרוא ארוך, כגון PacBio או אוקספורד Nanopore טכנולוגיות רצף, עדיין דורשים כמות גבוהה יחסית של ה- DNA קלט, אשר יכול להוות אתגר עבור רצף הגנום organellar. לאחרונה, חדש שפותח על ידי המשתמש, ארוך לקרוא פרוטוקולי רצף פותחו כדי להפחית את כמויות קלט כדי לעזור להקל על רצף הגנום בדגימות שבו קבלת מיקרוגרם כמויות של DNA קשה 20 , 21 . עם זאת, קבלת משקל מולקולרי גבוה, שברים organellar טהור להאכיל את ההכנות הספרייה הזאת נותרה אתגר.
חיפשנו לאO להשוות לייעל DNA העשרה organelar ושיטות בידוד מתאים NGS ללא צורך הגברה של הגנום כולו. באופן ספציפי, המטרה שלנו היתה לקבוע את שיטות העבודה המומלצות להעשרת עבור DNA גבוהה מולקולרית משקל organellar מחומרים החל מוגבל, כגון תת המדגם של עלה. עבודה זו מציגה ניתוח השוואתי של שיטות להעשיר עבור DNA organellar: (1) פרוטוקול צנטריפוגה דיפרנציאלית מסורתית שונה לעומת (2) פרוטוקול חלוקה DNA מבוסס על השימוש של דנ"א זמין מסחרית CpG-methyl- מחייב תחום גישה הנפתח חלבון 22 הוחל על רקמת הצמח 23 . אנו ממליצים על שיטות עבודה מומלצות לבידוד דנ"א אורגני מחיידק עלה חיטה, אשר ניתן להרחיב בקלות צמחים אחרים ורקמות סוגים.
עד כה, רוב מחקרים ברצף organellar מרכז בשיטות DC המסורתית להעשיר עבור DNA ספציפיים. שיטות לבודד אורגנים ממגוון צמחים תוארו, כולל מוס 40 ; מונוקולטים כגון חיטה 15 ו שיבולת שועל 11 ; ו dicots כגון arabidopsis 11 , חמניות 17 , ו rapes…
The authors have nothing to disclose.
ברצוננו להודות במימון של מחלקת החקלאות של ארצות הברית – החקלאות שירות המחקר ו מן הקרן הלאומית למדע (IOS 1025881 ו IOS 1361554). אנו מודים ר 'Caspers עבור תחזוקת החממה טיפול הצמח. אנו מודים גם על אוניברסיטת מינסוטה גנומיקה מרכז, שם ההכנות הספרייה Illumina ורצף בוצעו. אנו גם אסירי תודה על הערות עורכי היומן וארבעה מבקרים אנונימיים שחיזקו עוד יותר את כתב היד שלנו. אנו גם מודים ל- OECD על מלגה ל- SK לשלב פרוטוקולים אלה לפרויקטים משותפים עם עמיתים ביפן.
2-mercaptoethanol (beta-mercaptoethanol; BME) | Sigma Aldrich | M3148-100ml | |
2-propanol (Isopropyl alcohol/isopropanol), bioreagent | Sigma Aldrich | I9516 | |
agarose, Bio-Rad Cetified Megabase agarose | Bio-Rad | 1613108 | |
analytical balance | Mettler Toledo | AB54-S | |
balance | Mettler Toledo | PB1502-S | |
bovine serum albumin (BSA) | Sigma Aldrich | B4287-25G | |
Ceramic grinding cylinders, 3/8in x 7/8in | SPEX SamplePrep | 2183 | |
Cryogenic Blocks compatible with tissue homogenizer for holding 50 ml tubes | SPEX SamplePrep | 2664 | |
DNaseI | Sigma | DN25 | |
ethanol, absolute | Decon Laboratories | 2716 | |
Ethylenediamine Tetraacetic Acid (EDTA), 0.5M Solution, pH8.0 | Fisher | BP2482-500 | |
gel imaging system | |||
gel stain | Such as GelRed or Ethidium Bromide | ||
grinding pestle, wide tip for 2 ml conical tubes | |||
Guanidine-HCl, 8M solution | ThermoFisher | 24115 | |
LightCycler 480 SYBR Green I Master | Roche | 4707516001 | |
liquid nitrogen | |||
Lysing enzymes from Trichoderma harzianum | Sigma | L1412 | |
Magnesium Chloride | G Bioscience | 24115 | |
magnetic rack | ThermoFisher | A13346 | |
microcentrifuge tubes, LoBind 1.5 ml | Eppendorf | 22431021 | |
microcentrifuge tubes, standard nuclease-free 1.5 ml | Eppendorf | ||
microcentrifuge, refrigerated | Sorvall | Legend X1R | Or equivalent product, must be capable of reaching at least 18,000 x g with rotors for 50 ml tubes, Oak Ridge tubes, and 1.5 ml tubes |
microcentrifuge, room temperature | Eppendorf | 5424 | Or equivalent product, must be capable of reaching at least 18,000 x g with rotor for 1.5 ml and 2 ml microcentrifuge tubes |
Microcon DNA Fast Flow Centrifugal Filter Units | EMD Millipore | MRCFOR100 | |
Miracloth, 1 square per sample cut to fit funnel | EMD Millipore | 475855 | |
NEBNext Microbiome DNA Enrichment Kit | New England Biolabs | E2612L | |
parafilm | Parafilm M | PM992 | |
plastic pots and trays | |||
polyvinylpyrrolidone (PVP) | Fisher | BP431-100 | |
Proteinase K | Qiagen | 19131 | |
Pulsed-Field Gel Electrophoresis rig (e.g. CHEF DR III) | Bio-Rad | 1703697 | |
purification beads, Agencourt AMpureXP beads | Beckman Coulter | A63881 | |
QIAamp DNA Mini Kit | Qiagen | 51304 | |
Qiagen 20/g Genomic Tip DNA Extraction Kit | Qiagen | 10223 | |
Qiagen Buffer EB (elution buffer) | Qiagen | 19086 | |
Qiagen DNA Extraction Buffer Set | Qiagen | 19060 | |
QiaRack | Qiagen | 19015 | |
qPCR machine (e.g. Roche Light Cycler 480) | Roche | ||
qPCR plate sealing film | Roche | 4729757001 | |
qPCR plate, 96 well plate | Roche | 4729692001 | |
Qubit assay tubes | Life Technologies | Q32856 | |
Qubit Broad Spectrum assay kit | Life Technologies | Q32850 | |
Qubit High Sensitivity assay kit | Life Technologies | Q32851 | |
RNaseA | Qiagen | 19101 | |
Serological pipettes (20 ml) and pipet-aid | Fisher | 13-678-11 | |
Small funnels, 1 per sample | |||
Sodium Chloride | Ambion | AM9759 | |
Soft paintbrush, 2 per sample | |||
SPEX SamplePrep 2010 Geno/Grinder or another type of tissue homogenizer | SPEX SamplePrep | Or another comparable tissue homogenizer. If you do not have access to a tissue homogenizer, then grinding in a pre-chilled mortar and pestle will suffice (see protocol for details). However, a homogenizer will give more consistent results and total homogenization time is reduced. | |
Sucrose | Omnipure | 8550 | |
TBE | |||
thermomixer | |||
Tris | Sigma | T2819-100ml | |
Triton X-100 | Promega | H5142 | |
tube rotater | |||
tubes, 50 mL conical polypropylene | Corning | 352070 | |
tubes, 50 ml high-speed polypropylene | ThermoScientific/Nalgene | 3119-0050 | e.g. Nalgene Oakridge tubes or equivalent |
vermiculite | |||
water bath | |||
water, sterile and certified Nuclease-free | Fisher | 1481 | |
water, sterile milliQ |