Summary

小脳顆粒ニューロン培養におけるFluorescein Diacetate-Propidium Iodide二重染色を用いたニューロン生存率の評価

Published: May 10, 2017
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Summary

このプロトコルは、神経科学および神経薬理学研究のインビトロモデルとして使用される初代ニューロン培養物である培養小脳顆粒ニューロンにおけるフルオレセインジアセテート(FDA)およびヨウ化プロピジウム(PI)二重染色を使用してニューロン生存度を正確に測定する方法を記載する。

Abstract

一次培養小脳顆粒ニューロン(CGN)は、神経科学および神経薬理学研究におけるインビトロモデルとして広く使用されている。しかし、CGN培養におけるグリア細胞とニューロンの共存は、ニューロン生存率の正確な評価において偏りを引き起こす可能性がある。生きた細胞と死んだ細胞を同時に評価することにより、細胞の生存率を測定するために、フルオレセインジアセテート(FDA)およびヨウ化プロピジウム(PI)の二重染色が用いられてきた。我々は、比色アッセイの感度を改善し、CGNにおけるニューロン生存度を評価するために、FDA-PI二重染色を使用した。さらに、精度を向上させるため青色蛍光DNA染色剤(Hoechstなど)を追加しました。このプロトコルは、CGN培養においてこれらの方法を使用することによって、ニューロン生存度の評価の精度を改善する方法を記載する。このプロトコルを使用して、グリア細胞の数は、蛍光顕微鏡を使用することによって除外することができます。同様の戦略を適用して、望ましくないgli例えば、一次皮質培養および海馬培養のような種々の混合細胞培養物中のニューロンから得た。

Introduction

3-(4,5-ジメチル-2-チアゾリル)-2,5-ジフェニル-2-H-テトラゾリウムブロミド(MTT)アッセイなどの比色細胞毒性アッセイは、インビトロで細胞生存度を測定するために一般的に使用される。ラット由来の初代培養小脳顆粒ニューロン(CGN)は、1-メチル-4-フェニルピリジニウムイオン、過酸化水素、グルタミン酸塩などの様々な神経毒に感受性である1,2。したがって、CGN培養物は、神経科学の分野におけるインビトロモデルとして使用することができる。 CGN培養物は、CGN培養物中の全細胞の約1%を占めることができるニューロンおよびグリア細胞を含む種々の細胞を含み得る。しかし、グリア細胞は、ニューロンと比較して神経毒とは異なる応答を示し、比色アッセイによって測定されたニューロン生存率の偏りをもたらす3

生存細胞では、フルオレセインジアセテート(FDA)はエステラーゼによってフルオレセインに変換することができる。ヨウ化プロピジウム(PI)は、死んだ細胞に浸透した後にDNAと相互作用することができ、培養内のアポトーシスを示すために使用することができる。したがって、FDA-PI二重染色は、生存細胞および死細胞を同時に評価することができ、両方の比色法を組み合わせることにより細胞生存率をより正確に測定できることを示唆している。さらに、核の青色蛍光染色であるHoechstを添加することにより、細胞生存率の精度をさらに向上させることができた。ここに提示されたプロトコールは、初代培養CGNにおけるニューロン生存度を正確に分析するために使用できるFDA-PI二重染色およびFDA-PI-Hoechst三重染色を記載する。

このプロトコールは、CGNおよびグリア細胞を異なる大きさおよび形状で視覚化および区別することを利用する。染色後、生存可能なニューロンおよび死んだニューロンの数を、蛍光顕微鏡で撮影した代表的な画像から数えた。大型グリア細胞は、典型的なCGNsの比較によって排除される蛍光モードの下で位相差モードで撮影されたものである。同様の戦略を実施して、一次皮質培養および海馬培養などのニューロンおよびグリア細胞を含む混合細胞培養物におけるニューロン生存度を測定することができる。

Protocol

すべての手技は、実験動物のケアおよび使用のための国立衛生研究所(NIH)のガイドライン(NIH Publications No. 80-23、1996年改訂)に準拠し、寧波大学の動物実験および使用委員会(IACUC) SYXK-2008-0110)。 1.溶液および培養培地の調製注:試薬およびストックは無菌条件下で調製する必要があります。孔径0.22μmのフィルターでろ過して滅菌します。 …

Representative Results

GAP43(赤色)およびGFAP(緑色)の二重免疫染色を用いて、ニューロンおよびグリア細胞の形状をそれぞれ分析した2,5。両方のニューロンおよびグリア細胞はCGN培養物中に存在する。 GFAP陽性グリア細胞は、画像中の矢印で示されるように、大きくて不規則な形状である( 図1 )。ニューロンの生存度を測定するために使用される場合、細胞活力のための?…

Discussion

このプロトコールは、以前に記載された手順6,7から修正された。研究者らは、インビトロで初代ニューロンを培養する際の条件を改善することによって、非神経細胞成長を減少させるために時間を費やしている8 。しかし、培養条件が改善されても、いくつかのグリア細胞が残る。さらに、非ニューロン細胞は、ニューロンの成長および成熟に役立つため、初?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、浙江省自然科学財団(LY15H310007)、浙江省非営利研究プロジェクト(2016C37110)、中国国立自然科学財団(U1503223,81673407)、寧波国際科学研究院広東省国際科学技術協力プロジェクト(No. 2013B051000038)、深セン基礎研究プログラム(JCYJ20160331141459373)、広東省洪水技術協力プロジェクト(2014D10019)、寧波市のライフサイエンス・イノベーション・チーム(2015C110026) (GHP / 012 / 16GD)、香港の研究助成協議会(15101014)、香港工科大学(G-YBGQ)、寧波大学のKCウォン・マグナ基金などがあります。

Materials

Poly-L-lysine Sigma P2636
D-glucose Sigma G8270
Cytosine β-D-Arabinofuranoside Sigma C1768
 Fetal bovine serum Gibco 10099141  high quality FBS is essential for culture
100× glutamine Gibco 25030081
100× anti-biotic Gibco 15240062
BME medium Gibco 21010046 
Fluorescein diacetate Sigma F7378
Propidium iodide Sigma P4170
Hoechst 33342 Yesen 40731ES10
rabbit Anti-GAP43 antibody Abcam ab75810
mouse Anti-GFAP antibody Cellsignaling 3670
Bovine serum albumin Sangon Biotech A602440
Trypsin  Sigma T4665
DNAse  Sigma D5025
Soybean trypsin inhibitor Sigma T9003
Pasteur pipette Volac Z310727 burn  the tip round before use
12-well cell culture plates TPP Z707783
6-well cell culture plates TPP Z707759 high quality cell culture plate  is essential for culture
Filter Millipore SLGP033RB
Pipet 5 ml Excell Bio CS017-0003
Pipet 10 ml Excell Bio CS017-0004
Dissect microscope Shanghai Caikang XTL2400
CO2 Incubator Thermo Scientific  311
Fluorescence microscope  Nikon TI-S
Fluorescence filter and emmision cubes Nikon B-2A, G-2A, UV-2A
Photo software Nikon NIS-Elements
Graphics editor softeware Adobe Photoshop CS
Image process softeware NIH ImageJ

References

  1. Yu, J., et al. Indirubin-3-oxime prevents H2O2-induced neuronal apoptosis via concurrently inhibiting GSK3beta and the ERK pathway. Cell Mol Neurobiol. , (2016).
  2. Cui, W., et al. The anti-cancer agent SU4312 unexpectedly protects against MPP(+) -induced neurotoxicity via selective and direct inhibition of neuronal NOS. Br J Pharmacol. 168 (5), 1201-1214 (2013).
  3. Jebelli, J., Piers, T., Pocock, J. Selective Depletion of Microglia from Cerebellar Granule Cell Cultures Using L-leucine Methyl Ester. J Vis Exp. (101), e52983 (2015).
  4. Labno, C. . Two way to count cells with ImageJ. , (2008).
  5. Haag, D., et al. Nos2 Inactivation promotes the development of medulloblastoma in Ptch1(+/-) mice by deregulation of Gap43-dependent granule cell precursor migration. Plos Genet. 8 (3), e1002572 (2012).
  6. Lee, H. Y., Greene, L. A., Mason, C. A., Manzini, M. C. Isolation and culture of post-natal mouse cerebellar granule neuron progenitor cells and neurons. J Vis Exp. (23), e990 (2009).
  7. Messer, A. The maintenance and identification of mouse cerebellar granule cells in monolayer culture. Brain Res. 130 (1), 1-12 (1977).
  8. Li, W., et al. Novel dimeric acetylcholinesterase inhibitor bis7-tacrine, but not donepezil, prevents glutamate-induced neuronal apoptosis by blocking N-methyl-D-aspartate receptors. J Biol Chem. 280 (18), 18179-18188 (2005).
  9. Kaech, S., Banker, G. Culturing hippocampal neurons. Nat Protoc. 1 (5), 2406-2415 (2006).
  10. Cheung, G., Cousin, M. Quantitative analysis of synaptic vesicle pool replenishment in cultured cerebellar granule neurons using FM Dyes. J Vis Exp. (57), e3143 (2011).
  11. Atlante, A., et al. Genistein and daidzein prevent low potassium-dependent apoptosis of cerebellar granule cells. Biochem Pharmacol. 79 (5), 758-767 (2010).
  12. Silva, R., Rodrigues, C., Brites, D. Rat cultured neuronal and glial cells respond differently to toxicity of unconjugated bilirubin. Pediatr Res. 51 (4), 535-541 (2002).
  13. Jekabsons, M. B., Nicholls, D. G. Bioenergetic analysis of cerebellar granule neurons undergoing apoptosis by potassium/serum deprivation. Cell Death Differ. 13 (9), 1595-1610 (2006).
  14. Garner, D. L., Johnson, L. A. Viability Assessment of Mammalian Sperm Using Sybr-14 and Propidium Iodide. Biol Reprod. 53 (2), 276-284 (1995).

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Cite This Article
Jiajia, L., Shinghung, M., Jiacheng, Z., Jialing, W., Dilin, X., Shengquan, H., Zaijun, Z., Qinwen, W., Yifan, H., Wei, C. Assessment of Neuronal Viability Using Fluorescein Diacetate-Propidium Iodide Double Staining in Cerebellar Granule Neuron Culture. J. Vis. Exp. (123), e55442, doi:10.3791/55442 (2017).

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