травмы печени сопровождаются расширением клеток-предшественников, что представляет собой гетерогенную популяцию клеток. Новые классификация этого клеточный компартмент позволяет различении нескольких подмножеств. Описанный здесь метод иллюстрирует поток цитометрии и высокой чистоты изоляции различных подмножеств, которые могут быть использованы для дальнейшего анализа.
Во время хронических повреждений печени, клетки-предшественники расширяться в процессе, называемом протоками, реакция, которая также влечет за собой возникновение воспалительного клеточного инфильтрата и активации эпителиальных клеток. Популяция клеток-предшественников во время таких воспалительных реакций в основном были исследованы с использованием одиночных поверхностных маркеров, либо с помощью гистологического анализа или с помощью проточной цитометрии методов на основе. Тем не менее, новые поверхностные маркеры идентифицировали различные функционально различных подмножеств в пределах прародителя клеток печени отделение / стволовых. Изложенный здесь метод описывает выделение и детальный анализ проточной цитометрии подмножеств предшественников с использованием комбинаций маркеров романа поверхности. Кроме того, он показывает, как различные прогениторных клеток подмножества могут быть выделены с помощью методов высокой чистоты с использованием автоматизированной магнитной и FACS сортировки на основе. Важно отметить, что новые и упрощенную ферментативная диссоциация печени позволяет изоляции этих популяций редких клеток с высокой жизнеспособностьючто превосходит по сравнению с другими существующими методами. Это особенно актуально для дальнейшего изучения клеток – предшественников в пробирке или для изоляции высокого качества РНК для анализа профиля экспрессии генов.
регенерации печени чаще всего ассоциируется с самообновлению мощностью гепатоцитов. Тем не менее, хронические повреждения печени возникают при активации клеток – предшественников и расширения, которые были связаны с их способностью дифференцироваться в гепатоциты и холангиоцитах 1, 2, 3, 4. Это особенно актуально, так как, во время хронических травм, пролиферации гепатоцитов не является эффективным. Несмотря на многочисленные исследования генетической трассировки , ориентированных на клетки – предшественники, их роль в регенерации печени остается спорным 5, 6, 7, 8. Кроме того, активация клеток – предшественников , было связано с увеличением фиброзной реакции в печени, что вызывает вопросы об их точной роли во время травмы 9, 10.
Гетерогенный характер клеток – предшественников купе уже давно было предложено экспрессии генов исследований, изолированных клеток – предшественников , выражающие одну поверхностный маркер с помощью микродиссекции или клетки методов сортировки на основе 1, 11. Действительно, в последнее время , новая комбинация маркер поверхности с помощью gp38 (podoplanin) однозначно связаны предыдущие одиночные маркеры клеток – предшественников различных подмножеств 12. Важно отметить, что эти подмножества не только отличались по экспрессии поверхностных маркеров , но также демонстрируют функциональные изменения во время травм 12.
Несколько моделей на животных были использованы для исследования активации клеток-предшественников и регенерации печени. Кажется , что различные виды травм способствуют активации отличаясь подмножеств клеток – предшественников 12. Это могло бы объяснить фотenotypic дивергенция протоками реакции , наблюдаемой у человека 4. Таким образом, сложные фенотипические и функциональный анализ клеток-предшественников являются ключевыми для понимания их роли в травмах и истинное значение протоками реакции при заболеваниях печени.
Кроме комбинаций поверхностных маркеров, решающие различия в протоколах выделения клеток еще больше осложнить выводы , основанные на предыдущих исследованиях 2. Значительное количество исследований было посвящено роли клеток – предшественников , которые значительно различаются по их протоколу изоляции (например, диссоциации печени (комбинацией ферментов и длительность процесса), средней плотности и скорости центрифугирования) 2. Оптимизированный метод выделения, обеспечивая лучшую жизнеспособность популяций редких клеток и отражает подмножество состава, была разработана и опубликована недавно 12. Цель данной статьи состоит в том, чтобы обеспечить более йеболело протокол этой процедуры выделения клеток печени и анализа подмножества для обеспечения надлежащего воспроизведения техники. Кроме того, протокол включает в себя сравнение с предыдущим методом изоляции, чтобы продемонстрировать различия по сравнению с новым протоколом.
Воспаление печени и травмы различного происхождения вызывают регенеративные процессы в печени, сопровождающихся расширением клеток – предшественников и активации 2, 3. Эти клетки-предшественники печени обладают стволовые клеточные характеристики и, ве…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана Александра фон Гумбольдта премии Софьи Ковалевской в VLK.
RPMI | Life Technologies | 21875-034 | |
phenol red free DMEM | Life Technologies | 31053-028 | |
FBS | Life Technologies | 10270-106 | |
Collagenase P | Sigma-Aldrich | 11249002001 | |
DNAse-I | Sigma-Aldrich | 10104159001 | |
Dispase | Life Technologies | 17105041 | |
ACK Lysing Buffer | Life Technologies | A10492-01 | |
HBSS | Life Technologies | 14025-050 | |
PBS | Sigma-Aldrich | D8537 | |
Sodium Azide | Sigma-Aldrich | S2002 | Prepare 1 % stock solution |
10 % BSA | Miltenyi Biotec | 130-091-376 | |
autoMACS Rinsing Solution | Miltenyi Biotec | 130-091-222 | add 0.5 % (v/v) BSA and store on ice |
Phenol-red free DMEM | Sigma-Aldrich | D1145 | |
counting Beads Count Bright | Life Technologies | C36950 | |
PI | Miltenyi Biotec | 130-093-233 | |
FcR Blocking Reagent | Miltenyi Biotec | 130-092-575 | |
anti-CD31 MicroBeads | Miltenyi Biotec | 130-097-418 | |
anti-CD45 MicroBeads | Miltenyi Biotec | 130-052-301 | |
Dead Cell Removal Kit | Miltenyi Biotec | 130-090-101 | |
anti-Biotin MicroBeads | Miltenyi Biotec | 130-090-485 | |
CD64 Purified | BioLegend | 139302 | Dilution: 1:100 |
CD16/32 Purified | BioLegend | 101302 | Dilution: 1:100 |
CD45 APC/Cy7 | BioLegend | 103116 | Dilution: 1:200, marks hematopoetic cells |
CD31 Biotin | BioLegend | 102504 | Dilution: 1:200, marks endothelial cells |
ASGPR1 Purified | Bio-Techne | AF2755-SP | Dilution: 1:100, marks hepatocytes |
Podoplanin APC | BioLegend | 127410 | Dilution: 1:1400, marks progenior cells |
Podoplanin Biotin | BioLegend | 127404 | Dilution: 1:1400 |
CD133 PE | Miltenyi Biotec | 130-102-210 | use 3 µl, marks progenitor cells |
CD133 Biotin | BioLegend | 141206 | Dilution: 1:100 |
CD34 Biotin | eBioScience | 13-0341-81 | Dilution: 1:100 |
CD90.2 Pacific Blue | BioLegend | 140306 | Dilution: 1:800 |
CD157 PE | BioLegend | 140203 | Dilution: 1:600 |
EpCAM Brilliant Violet 421 | BioLegend | 118225 | Dilution: 1:100 |
Sca-1 Biotin | Miltenyi Biotec | 130-101-885 | use 10 µl |
Mouse IgG2b, κ PE | BioLegend | 400311 | |
Rat IgG1 PE | BioLegend | 400407 | |
Rat IgG2b, κ APC/Cy7 | BioLegend | 400624 | |
Rat IgG2a, κ Biotin | BioLegend | 400504 | |
Rat IgG2a, κ Brilliant Violet 421 | BioLegend | 400535 | |
Syrian Hamster IgG APC | BioLegend | 402012 | |
Syrian Hamster IgG Biotin | BioLegend | 402004 | |
Normal Goat IgG Control Purified | Bio-Techne | AB-108-C | |
Donkey anti-Goat IgG Alexa Fluor 488 | Life Technologies | A11055 | Dilution: 1:800 |
Streptavidin Alexa Fluor 405 | Life Technologies | S32351 | Dilution: 1:400 |
100 µm Filter mesh | A. Hartenstein | PAS3 | |
LS Column | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
QuadroMACS separator | Miltenyi Biotec | 130-090-976 | |
MACSQuant Analyzer 10 | Miltenyi Biotec | 130-096-343 | |
AutoMACS Pro Separator | Miltenyi Biotec | 130-092-545 | |
FACS AriaTMIII | BD Biosciences | ||
FACSDiva sofware | BD Biosciences | ||
Polypropylene Round bottom tube | Falcon | 352063 | |
Rneasy plus mini kit | Qiagen | 74134 | RLT lysis buffer is included |