Vi beskriver en standard antistoffarging protokoll for bruk ved mikroskopi for å bestemme membranen ekspresjon og lokalisering av gangliosider i hvilende og aktiverte humane naive CD4 + T-celler. Det er også beskrevet real-time PCR eksperimenter ved hjelp av <40000 celler som ikke krever ekstra lave innspill RNA kits.
Fremgangsmåtene beskrevet heri for aktivering av naive CD4 + T-celler i suspensjon og deres tilslutning i dekkglass for konfokal mikroskopi-analyse tillate den romlige lokalisering og visualisering av gangliosider som er involvert i CD4 + T-celleaktivering, som utfyller uttrykk profilering eksperimenter som flowcytometri, western blotting eller real-time PCR. Kvantifisering av gangliosid uttrykk ved strømningscytometri og deres cellulære lokalisering ved hjelp av mikroskopi kan oppnås ved bruk av anti-gangliosid-antistoffer med høy affinitet og spesifisitet. Ikke desto mindre en tilstrekkelig behandling av celler i suspensjon innbefatter behandling av kulturplater for å fremme den nødvendige tilslutning kreves for fluorescens eller konfokal mikroskopi anskaffelse. I dette arbeidet, beskriver vi en protokoll for å bestemme GD3 og GD2-gangliosid uttrykk og colocalization med TCR i løpet av naive CD4 + T-celleaktivering. Også real-time PCR eksperimenter ved hjelp av <40.000 celler er beskrevet for bestemmelse av GD3 og GM2 / GD2-syntase-gener, noe som viser at genet analyse eksperimenter kan utføres med et lavt antall celler og uten behov for ekstra lave inngangs RNA kits.
CD4 + T-celler organisere immunresponsen gjennom sine effektorfunksjoner etter aktivering av antigen-presenterende celler 1. Studiet av de cellulære mekanismer som er modulert under aktivering tillater innsyn i en grunnleggende prosess med immunfunksjon. Imidlertid kan studiet av naive CD4 + T-celler være komplisert fordi de representerer en meget liten populasjon av celler i blodet periferien 2.
Gjennom fluorescensmikroskopi flere rapporter har studert for lokalisering av forskjellige molekyler som er involvert i CD4 + T-celleaktivering, i hovedsak proteiner forbundet til plasmamembranen 3. Gangliosidene er sialinsyre-inneholdende glykosfingolipider og selv om de har blitt omfattende studert i nerveceller, hvor de er rikelig, andre celler, for eksempel immunceller som også uttrykker gangliosider med biologisk relevante funksjoner 4,5. Vi har tidligere rapportert that ved aktivering av humane naive CD4 + T-celler er det en oppregulering av den α2,8 sialyltransferase ST8Sia 1 (GD3 syntase) og GM2 / GD2-syntase, som induserer den betydelige overflate neoexpression av GD2 og oppregulering av GD3 gangliosid 6. Videre studier av GD3, GD2 og andre gangliosider i immunceller er nødvendig for å utfylle en proteinbasert delvis utsikt over immunforsvar.
Vanligvis blir studiet av gangliosidet uttrykk basert på teknikker, slik som tynnsjiktskromatografi (TLC) 7, men denne teknikken tillater ikke den romlige lokalisering av gangliosider ved plasmamembranen, eller i subcellulære kamre, noe som begrenser biologisk analyse.
I dette arbeidet, beskriver vi en protokoll for antistoff-mediert identifikasjon og lokalisering av GD3 og GD2 gangliosider i humane naive CD4 + T-celler og PBMC etter at anti-CD3 / anti-CD28-aktivering. Med denne protokollen det jegs også mulig å analysere genet og molekyl ekspresjon av gangliosider i et lavt antall celler i suspensjon, med anskaffelse av bilder av høy kvalitet 6, tatt i betraktning den lille størrelsen av lymfocytter (9 um).
Den beskrevne protokoll kan benyttes for å lokalisere gangliosider eller proteiner i cellesuspensjoner av CD4 + T-celler eller andre immune celler (f.eks PMBCs, figur 5) ved å starte fra et lite antall celler. På grunn av den lille størrelsen på T-celler og ikke-heftende egenskapene, oppkjøp av fluorescens mikroskopiske bilder gir dårlig informasjon eller lav kvalitet hvis cellene er ikke riktig overholdt.
Denne protokollen kombinert med en god kva…
The authors have nothing to disclose.
We are grateful to Dr. José Luis Daniotti for comments. We thank the assistance to Dr. J. Arturo Pimentel and the Laboratorio Nacional de Microscopìa Avanzada-UNAM for acquisition of confocal images. I.M.-D. and T.M.V.C. were supported by grants 157634 and 253596 from Consejo Nacional de Ciencia y Tecnologìa (CONACYT), Sociedad Latinoamericana de Glicobiologìa, A.C. T.M.V.-C. is recipient of a scholarship (245192) from CONACYT. We also thank the support of the Red Temática Glicociencia en Salud – CONACYT (253596).
Advanced RPMI 1640 | Thermo Fisher Scientific | 12633-012 | Suplemented with 3% FBS |
mouse anti human CD3 antibody | eBioscience | 16-0037-81 | OKT3 clone |
mouse anti human CD28 antibody | ebioscience | 16-0288-81 | CD28.6 clone |
mouse anti human GD3 antibody | Abcam | ab11779 | R24 clone |
mouse anti human GD2 antibody | Santa Cruz Biotechnology | sc-53831 | 14G2a clone |
FITC-conjugated anti-mouse IgG3 antibody |
Abcam | ab97259 | |
Alexa Fluor 488 conjugated antimouse | Thermo Fisher Scieni¡tific | A-21131 | |
IgG2a antibody | |||
Alexa Fluor 647 conjugated antimouse | Thermo Fisher Scieni¡tific | A-21241 | |
IgG2a antibody | |||
Hoechst 333258 | Sigma-Aldrich | 861405 | |
Ficoll Paque-Plus | GE | 17-1440-02 | |
Trizol Reagent | Invitrogen | 15596-026 | |
Naive CD4+ T Cell Isolation Kit II, human | MACS Miltenyi Biotec | 130-094-131 | |
BD FACSAria II | BD Biosciences | Sorting | |
Nunc Lab-tek chamber slide system | Sigma-Aldrich | C7182 | |
Olympus FV 1000 Laser Confocal Microscope (Olympus) | Olympus | Upright BX61WI and IX81 | |
Forward sequence primer GD3 synthase | 5´-GAGCGTTCAGGAAACAAATGG- 3´ | Ref. 7 | |
Reverse sequence primer GD3 synthase | 5´-CCTGTGGGAAGAGAGAGTAAG-3´ | Ref. 7 | |
Forward sequence primer GM2/GD2 synthase | 5´-CAACACAGCAGACACAGTCC-3´ | Ref. 7 | |
Reverse sequence primer GM2/GD2 synthase | 5´-GTGGCAATCGTGACTAGAGC-3´ | Ref. 7 |