Summary

Ex vivo Infeksjon av murine Epidermis med Herpes simplex virus type 1

Published: August 24, 2015
doi:

Summary

The skin is one target tissue of the human pathogen herpes simplex virus type 1 (HSV-1). To explore the invasion route of HSV-1 into tissue, we established an ex vivo infection model of murine epidermal sheets which represent the outermost layer of skin.

Abstract

Å gå inn i human vert, må herpes simplex virus type 1 (HSV-1) overvinne barrieren av slimhinneoverflater, hud eller cornea. HSV-1 mål keratinocytter under innledende inngang og etablerer en primær infeksjon i epitelet, som etterfølges av latent infeksjon av neuroner. Etter reaktive, kan virus bli tydelig på slimhinnene nettsteder som vises som hud blemmer eller slimhinne magesår. Hvordan HSV-1 invaderer hud eller slimhinner og når sine reseptorer er dårlig forstått. For å undersøke invasjonen ruten for HSV-1 inn epidermal vev på cellenivå, etablerte vi en ex vivo infeksjon modell av murine epidermis, som representerer stedet for grunnskolen og tilbakevendende infeksjon i huden. Analysen omfatter fremstilling av murin hud. Epidermis er atskilt fra dermis ved dispase II behandling. Etter flytende epidermal ark på virusholdig medium, er vevet fast og infeksjon kan visualiseres på ulike tider postinfection avfarging av infiserte celler med et antistoff mot HSV-1, umiddelbare, tidlige protein ICP0. ICP0-uttrykkende celler som kan observeres i den basale keratinocytt lag allerede ved 1,5 timer postinfection. Infeksjon med lengre tider, infiserte celler detektert i suprabasal lag, noe som indikerer at infeksjonen ikke er begrenset til de basale keratinocytter, men viruset sprer seg til andre lag i vevet. Ved hjelp av epidermale lag av forskjellige musemodeller, kan infeksjonen protokollen bestemmelse av involvering av cellulære komponenter som bidrar til HSV-1 invasjon i vev. I tillegg er analysen egnet til å teste inhibitorer i vev som forstyrrer de første inngangstrinn, celle-til-celle-spredning og virusproduksjon. Her beskriver vi ex vivo infeksjon protokollen i detalj og presentere våre resultater ved hjelp nectin-1- eller hvem-mangelfull mus.

Introduction

Herpes simplex virus (HSV) kan føre til en rekke sykdommer hos mennesker fra milde ukompliserte mucocutaneous lesjoner til livstruende infeksjoner. HSV type 1 (HSV-1) er dominant forbundet med Orofacial infeksjoner og encefalitt, mens HSV type 2 (HSV-2) mer sannsynlig forårsaker genital-infeksjoner 1. Mens det er betydelige fremskritt i å forstå hvordan HSV går celler i kultur, initierer infeksjon og produserer viral avkom, vet vi lite om viral invasjon pathway (e) i vev på cellenivå 2. For studier av HSV hud eller slimhinneinfeksjoner, mus, har kaniner og marsvin blitt anvendt som dyremodeller. Hudinfeksjon ble etablert ved intradermal injeksjon eller ved å skrape huden i nærvær av viruset, og sykdomsutvikling ble korrelert med virusproduksjon. Disse metodene har hjulpet til å forstå ulike aspekter av sykdom patogenese, og blir brukt for å evaluere antivirale medikamenter. Å studere HSV infeksjon på tissue nivå, har organotypiske menneskelig hud modeller blitt påført. Som frekvensen av infeksjon er begrenset i disse flåte kulturer, har blitt publisert bare et begrenset antall studier som undersøker infeksjon, viral spredning og effekter av antivirale komponenter 3-6.

For å karakter cellulære determinants som spiller en rolle under HSV-1-infeksjon i intakt epitel, etablerte vi en protokoll for ex vivo infeksjon studier av murine epidermis 7. Huden ble fremstilt av nyfødte eller fra haler av voksne mus. Siden HSV-1 ikke kan forurense fullstendige hudprøver, som ble nedsenket i virusholdig medium, separeres vi epidermis fra dermis ved dispase II behandling. Etter flytende av de epidermale arkene på virusinneholdende medium, kan infiserte celler visualiseres i epidermal basallaget ved forskjellige tider postinfection (pi) 7. For å visualisere initieringen av infeksjon hos individuelle celler før en viral replikasjonnd virusproduksjon, vi farget med et antistoff mot infiserte celleprotein 0 (ICP0), som er en av de første proteinene uttrykt i løpet av HSV-1 infeksjon. Den cellulære lokalisering av ICP0 går gjennom forskjellige faser i løpet av tidlig infeksjon. Mens ICP0 er til stede i kjerne foki i løpet av et tidlig stadium av viral genekspresjon, relocalization av ICP0 til cytoplasma indikerer en etterfølgende fase av infeksjonen 8.

Vi brukte ex vivo infeksjon assay av epidermale ark fra forskjellige musemodeller for å teste potensielle rolle av ulike cellulære faktorer i løpet av infeksjonen. For å møte virkningen av Rac1 som en viktig regulator av aktin dynamikk, vi smittet epidermis av mus med en keratinocyte spesifikk sletting av Rac1 genet 9. Denne modellen tillot oss å studere konsekvensene av mangelfull Rac1 på effektiviteten av HSV-1-infeksjon i epidermal keratinocytt lag. Sammenligningen til infiserte epidermis av kontroll littermates revealed ingen signifikant forskjell, noe som indikerer at det ikke foreligger Rac1 hadde ingen effekt på initiering av infeksjon i basallaget av epidermis 7. Bruken av ytterligere musemodeller tillater oss å ta opp som cellulære reseptorer medierer inntreden i epidermis. Infiserer epidermale ark fra enten nectin-1- eller HVEM-manglende mus med HSV-1 viste at den opprinnelige viral inngang til vev avhenger sterkt av tilstedeværelsen av en 10-nectin. Videre våre resultater viser at HVEM kan også tjene som reseptoren i murine epidermis, men mindre effektivt enn nectin-1 10.

For å møte den romlige fordelingen av infiserte celler i epidermal lag, visualiserer vi ICP0 uttrykk i vevssnitt og epidermal hele mounts (figur 1). I frysesnitt av fullstendig hud, blir ingen ICP0-uttrykkende celler detektert (Figur 1). I motsetning til dette frysesnitt av epidermale lag demonstrere cytoplasmiskICP0 ekspresjon i basallaget allerede ved 3 timer pi (figur 1). På senere tidspunkt, viral spredning til suprabasal lag kan visualiseres. Den romlige fordeling av infiserte celler i det basale lag kan lett følges i epidermale hele monteringer (figur 1). Etter infeksjon med HSV-1 ved 100 PFU / celle, ca. 50% av basale keratinocytter i interfollicular epidermis viser ICP0 ekspresjon på 1,5 timer pi På dette tidspunkt de infiserte celler uttrykker atom ICP0. Den relocalization av ICP0 til cytoplasma som indikerer et senere stadium av tidlig genekspresjon er til stede i nesten alle celler i 3 timer pi (figur 1). Disse modi for å visualisere infiserte celler ved ex vivo HSV-1 infeksjon tilveiebringe en kraftig assay for å studere effekten av inhibitorer eller slettede / muterte cellulære komponenter på viral inngang og spredning i vev.

Protocol

Etikk uttalelse. Utarbeidelse av epidermal ark fra ofret dyr blir utført i henhold til anbefalingene fra Guide av Landesamt für Natur, Umwelt og Verbraucherschutz, Northrhine-Westfalen (Tyskland). Studien ble godkjent av LANUV NRW (Antall 8.84-02.05.20.13.018). 1. Utarbeidelse av Instrumenter og Culture Media Dyrk epidermale ark i Dulbeccos modifiserte Eagles medium (DMEM) / high glucose inneholdende glutamin dipeptid, 10% FCS, 100 IU / ml penicillin…

Representative Results

Utfordringen med fremgangsmåten er å fremstille epidermale lag i hvilket HSV-1 kan trenge fra basallaget. Det kritiske trinnet er separasjon av epidermis fra dermis ved dispase II-behandling, som, avhengig av musestammen, må tilpasses. Konsentrasjonen av dispase II kan variere fra 2,5 til 5 mg / ml, og inkubasjonstiden 20-45 min. Farging av mellomfilament protein keratin 14 lett kan forutsi om basal epidermal lag kan bli smittet eller om det vil vise bare et svært begrenset antall infiserte celler (figur 2)….

Discussion

Når epidermale ark av voksen hud fra C57BL / 6 er infisert med HSV-1 ved omtrent 100 PFU / celle, vi observerer infeksjon i nesten alle celler av basallaget i interfollicular epidermis mens lavere virusdoser korrelerer med mindre infiserte celler og en langsommere fremdriften av infeksjon. Generelt hårsekker viser et variabelt antall infiserte celler; mens de fleste av de ganske små keratinocytter lining utviklings hårsekkene blir smittet, er det bare håret kimen til den voksne hårsekken fullstendig infisert. Avhe…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Peter Staeheli for å gi B6.A2G-MX1 mus og Semra Özçelik for teknisk rådgivning.

Dette arbeidet ble støttet av den tyske Research Foundation gjennom SFB829 og KN536 / 16, og Köln Fortune Program / Det medisinske fakultet, Universitetet i Köln.

Materials

DMEM/high glucose/GlutaMAX Life Technologies 31966047 needed for cultivation of epidermal sheets
dispase II powder Roche 4942078001 has to be solved in heated PBS
enzyme-free cell dissociation solution Sigma C5914 needed for very gentle dissociation of epidermal sheets
TrypLE select cell dissociation solution Life Technologies 12563-029 needed for dissociation of epidermal sheets
chelex 100 resin Bio-Rad 142-2832 needed for chelation of polyvalent metal ions from the fetal calf serum
gelatin from cold water fish skin  Sigma G7765 needed for minimization of non-specific antibody binding
Keratin 14 Polyclonal Antibody (AF64) (conc.: 1 mg/ml) Covance PRB-155P used to visualize the intermediate filament keratin 14 which is a marker of the basal layer of the epidermis
Mouse IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor® 488 conjugate (conc.: 2 mg/ml) Life Technologies A-11029 used as secondary antibodies
Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor® 555 conjugate (conc.: 2 mg/ml) Life Technologies A-21429 used as secondary antibodies
4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI dihydrochloride)                             (conc.: 0.1 mg/ml) Sigma 36670 used to counterstain the nucleus

References

  1. Koelle, D. M., Corey, L. Herpes simplex: insights on pathogenesis and possible vaccines. Annu. Rev. Med. 59, 381-395 (2013).
  2. Roizman, B., Knipe, D. M., Whitley, R. J. Herpes simplex Viruses. Fields Virology. , 1823-1897 (2013).
  3. Syrjänen, S., Mikola, H., Nykänen, M., Hukkanen, V. In vitro establishment of lytic and nonproductive infection by herpes simplex virus type 1 in three-dimensional keratinocyte culture. J. Virol. 70, 6524-6528 (1996).
  4. Visalli, R. J., Courtney, R. J., Meyers, C. Infection and replication of herpes simplex virus type 1 in an organotypic epithelial culture system. Virology. 230, 236-243 (1997).
  5. Hukkanen, V., Mikola, H., Nykänen, M., Syrjänen, S. Herpes simplex virus type 1 infection has two separate modes of spread in three-dimensional keratinocyte culture. J. Gen. Virol. 80, 2149-2155 (1999).
  6. Gescher, K., et al. Inhibition of viral adsorption and penetration by an aqueous extract from Rhododendron ferrugineum L. as antiviral principle against herpes simplex virus type-1. Antiviral Res. 82, 408-413 (2010).
  7. Petermann, P., Haase, I., Knebel-Mörsdorf, D. Impact of Rac1 and Cdc42 signaling during early herpes simplex virus type 1 infection of keratinocytes. J. Virol. 83, 9759-9772 (2009).
  8. Everett, R. D., Maul, G. G. HSV-1 IE protein Vmw110 causes redistribution of PML. EMBO J. 13, 5062-5069 (1994).
  9. Chrostek, A., et al. Rac1 is crucial for hair follicle integrity but is not essential for maintenance of the epidermis. Mol. Cell. Biol. 26, 6957-6970 (2006).
  10. Petermann, P., et al. Entry mechanisms of Herpes Simplex Virus Type 1 into murine epidermis: Involvement of nectin-1 and HVEM as cellular receptors. J. Virol. 89, 262-274 (2015).
  11. McGeoch, D. J., et al. The complete DNA sequence of the long unique region in the genome of herpes simplex virus type 1. J. Gen. Virol. 69, 1531-1574 (1988).
  12. Schelhaas, M., Jansen, M., Haase, I., Knebel-Mörsdorf, D. Herpes simplex virus type 1 exhibits a tropism for basal entry in polarized epithelial cells. J. Gen. Virol. 84, 2473-2484 (2003).
  13. Braun, K. M., Niemann, C., Jensen, U. B., Sundberg, J. P., Silva-Vargas, V., Watt, F. M. Manipulation of stem cell proliferation and lineage commitment: visualisation of label-retaining cells in wholemounts of mouse epidermis. Development. 130, 5241-5255 (2003).
  14. Rahn, E., Petermann, P., Hsu, M. J., Rixon, F. J., Knebel-Mörsdorf, D. Entry pathways of herpes simplex virus type 1 into human keratinocytes are dynamin- and cholesterol-dependent. PLoS One. 6, e25464 (2011).
  15. Everett, R. D., Cross, A., Orr, A. A truncated form of herpes simplex virus type 1 immediate-early protein Vmw110 is expressed in a cell type dependent manner. Virology. 197, 751-756 (1993).
  16. Horisberger, M. A., Staeheli, P., Haller, O. Interferon induces a unique protein in mouse cells bearing a gene for resistance to influenza virus. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 80, 1910-1914 (1983).
  17. Christian, A. E., Haynes, M. P., Phillips, M. C. Use of cyclodextrins for manipulating cellular cholesterol content. J. Lipid Res. 38, 2264-2272 (1997).
  18. Ilangumaran, S., Hoessli, D. C. Effects of cholesterol depletion by cyclodextrin on the sphingolipid microdomains of the plasma membrane. Biochem. J. 335, 433-440 (1998).
  19. Yancey, P. G., et al. Cellular cholesterol efflux mediated by cyclodextrins: Demonstration of kinetic pools and mechanism of efflux. J. Biol. Chem. 271, 16026-16034 (1996).
  20. Montgomery, R. I., Warner, M. S., Lum, B. J., Spear, P. G. Herpes simplex virus-1 entry into cells mediated by a novel member of the TNF/NGF receptor family. Cell. 87, 427-436 (1996).
  21. Geraghty, R. J., Krummenacher, C., Cohen, G. H., Eisenberg, R. J., Spear, P. G. Entry of alphaherpesviruses mediated by poliovirus receptor-related protein 1 and poliovirus receptor. Science. 280, 1618-1620 (1998).
  22. Taylor, J. M., Lin, E., Susmarski, N., Yoon, M., Zago, A., Ware, C. F., Pfeffer, K., Miyoshi, J., Takai, Y., Spear, P. G. Alternative entry receptors for herpes simplex virus and their roles in disease. Cell Host Microbe. 2, 19-28 (2007).
  23. Barron, M. J., Brookes, S. J., Draper, C. E., Garrod, D., Kirkham, J., Shore, R. C. The cell adhesion molecule nectin-1 is critical for normal enamel formation in mice. Hum. Mol. Genet. 17, 3509-3520 (2008).
  24. Wang, Y., Subudhi, S. K., Anders, R. A., Lo, J., Sun, Y., Blink, S., Wang, Y., Liu, X., Mink, K., Degrandi, D., Pfeffer, K., Fu, Y. X. The role of herpesvirus entry mediator as a negative regulator of T cell-mediated responses. J. Clin. Invest. 115, 711-717 (2005).
check_url/kr/53046?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Rahn, E., Thier, K., Petermann, P., Knebel-Mörsdorf, D. Ex Vivo Infection of Murine Epidermis with Herpes Simplex Virus Type 1. J. Vis. Exp. (102), e53046, doi:10.3791/53046 (2015).

View Video