ScanLag is a high-throughput method for measuring the delay in growth, namely lag time, as well as the growth rate of colonies for thousands of cells in parallel. Screening using ScanLag enables the discrimination between long lag-time and slow growth at the level of a single variant.
Growth dynamics are fundamental characteristics of microorganisms. Quantifying growth precisely is an important goal in microbiology. Growth dynamics are affected both by the doubling time of the microorganism and by any delay in growth upon transfer from one condition to another, the lag. The ScanLag method enables the characterization of these two independent properties at the level of colonies originating each from a single cell, generating a two-dimensional distribution of the lag time and of the growth time. In ScanLag, measurement of the time it takes for colonies on conventional nutrient agar plates to be detected is automated on an array of commercial scanners controlled by an in house application. Petri dishes are placed on the scanners, and the application acquires images periodically. Automated analysis of colony growth is then done by an application that returns the appearance time and growth rate of each colony. Other parameters, such as the shape, texture and color of the colony, can be extracted for multidimensional mapping of sub-populations of cells. Finally, the method enables the retrieval of rare variants with specific growth phenotypes for further characterization. The technique could be applied in bacteriology for the identification of long lag that can cause persistence to antibiotics, as well as a general low cost technique for phenotypic screens.
Bakteriler çok stresli koşullara yanıt gelişmiştir. Strese adaptasyon genel özelliği, büyüme dinamikleri 1,2 bir değişimdir. Üstel büyüme oranı ve gecikme süresi, yeni koşullara uyum için gerekli yani zamanı: Büyüme dinamikleri iki parametre çoğunlukla karakterizedir. Yüksek verimli yöntemler, çok sayıda büyüme oranı ölçümleri odak ise yeni koşullara uyum karakterizasyonu için önemli bir parametre olan, ancak, gecikme süresi, çoğu zaman bir gözden parametredir. Değişen koşullara uyum Kantitasyonu geleneksel zahmetli manuel yöntemler 3,4 kullanılarak yapılmıştır. Daha yakın zamanda, gelişmiş teknikler tek hücre 5,6 analizi için geliştirilmiştir. Ancak, büyümenin gecikmesi yavaş büyüme (yani bir gecikme süresi) 2,3 aşağıdaki normal büyüme ayırt etmek hala zor. Otomatik bir yöntem, ScanLag 7 inşa edildiBu iki benzer fenotip arasında ayrım.
Gecikme süresi dağılımının çalışmanın önemini çarpıcı bir örnek antibiyotik tedavisi altında ortaya çıkar. Antibiyotik ve diğer gerilmeler çoğu sadece aktif olarak büyüyen hücrelerini öldürmek ve bu nedenle, "geri kalmış" edilmiş hücreler 8 korunur. Gecikme süresini izlemek için, bir mikroskop altında tek hücreleri gözlemlemek ve ilk bölümü için zaman izleyebilirsiniz. Bu yöntemin bir dezavantajı, büyük bir dinamik zaman aralığı sınırlı olduğunu; Erken büyüyen bu hücreler daha uzun etkili bir gecikme süresi ile hücrelerin büyümesini azaltarak, üstel bir oranda yüzeyini kapsamaktadır. Akış odaları kullanımı biraz bu 5 circumvents, ancak hücrelerin sınırlı sayıda izlenebilir ve nüfusun çoğunluğu artan başladıktan sonra lag faz çıkmak bakterilerin fraksiyonu gözlenen olamaz. Bu kısıtlamalara rağmen, çeşitli çalışmalar di düzeyinin etkisi değerlendirilmiştirfferent tek hücre mikroskopi 9-12 kullanılarak gecikme süresi dağılımına vurguluyor. Gecikme süresi dağılımını izlemek için başka bir yolu bulanıklık ölçümleri 13,14 geçer. Her biri tek bir hücreden ait birçok paralel kültürler, zamanla kültüründe bakteri sayısını ölçen bir optik yoğunluk okuyucu yetiştirilmektedir. Bu yöntem, ekstrapolasyon hassasiyeti ile bir plaka içinde kuyu sayısı ile sınırlıdır.
Otomatik bir yöntem bile çok uzun bir gecikme süresine sahip bir popülasyonda bakterilerin küçük bir yüzdesi için, değerlendirilecek gecikme süresi ve büyüme süresi dağılımı sağlayan, ScanLag adlandırılan geliştirilmiştir. Yöntem, geleneksel besleyici agar plakaları 15 (Şekil 1) kolonilerin tespiti dayanmaktadır. Algılamasını 16,17 periyodik plakaların görüntüleri elde etmek için ev yazılım tarafından yönlendirilir ticari tarayıcılar 18 bir dizi otomatikleştirmek için tasarlanmış oldu. Yazılım olduotomatik olarak görüntüleri analiz ve bu süre 80 piksel 20 piksel büyümeye olarak burada tanımlanan her koloninin, her koloni ve büyüme zamanı görünüm zamanı olarak kantitatif parametreleri 19,20, çıkarmak için tasarlanmıştır. Burada sistemin kurulum ve daha iyi bir kullanıcı arayüzü ile geliştirilmiş otomatik bir görüntü analiz yazılımı kullanımı da dahil olmak üzere, detaylı bir yöntem sunuyoruz.
Bu yöntem, bu tür morfolojisi ve rengi gibi koloni diğer özelliklerini ölçmek için adapte edilebilir. Bu tür parametrelerin ölçülmesi boyutlu phenomics olarak sistem kullanılmasını sağlayacaktır. Yöntem, tek hücrelerden koloniler tespit gibi, sistem nüfus düzeyinde ölçümleriyle ölçülemez yeni fenotipi ortaya çıkarabilir. Bu teknik az varyantlarının saptanması ve alınmasını sağlayan ve istenen özellikleri için tarama kolaylaştırır.
Doğrudan gözleme dayalı mikroskobik yöntemler genellikle tek hücre davranışlarını incelemek için "altın standart" olarak kabul edilmektedir. Bakteri popülasyonlarında lag kez dağılımının ölçümü sağlar ScanLag, tek hücreli analizinden elde edilen dağılımı ile iyi bir uyum içinde veri sağlayan ve daha yüksek bir istatistik sağlar.
Birkaç kritik adımlar iyi çalışması için bu yöntem için yapılması gerekir: Birincisi, iyi bir görüntü elde etmek için 4,800 x 9,600 olmalıdır tarayıcı çözünürlük, üzerinde uzlaşma yok. İkincisi, güç yönetimi modülü (adım 1.6) olmadan, sıcaklık gradyanı dorse yüzeyinde gelişebilir ve büyümeyi etkileyebileceğini unutmayın. Diğer önemli bir adım yanlışlıkla yazılım tarafından koloni sayılır olabilir toz gibi kusurların filtrasyon. Yazılımın dahili arka plan çıkarma genellikle bu kusurları üstesinden gelir, ama bazen "yanlış" kolonileri varel ile filtrelenebilir.
(A) mikroorganizmaların büyüme hızı sıcaklıktan etkilenir: Ana sorun giderme adımları çeşitli nedenlerden dolayı, kurulum arası plaka değişimi ele alabilir. Farklı sıcaklık ve nem koşulları nedeniyle inkübatör çanak düzensiz havalandırma veya yere oluşabilir. (B) tarayıcının elektronik tarayıcının yüzeyi boyunca bir sıcaklık gradyanı ısınmasına ve neden olabilir. 10 birlikte önce tarayıcı yüzeyi üzerindeki sıcaklık ölçümleri ile, Bacillus bakteriler üzerinde mekansal ısı derecesinde etkisini gösterir ve Şekil güç yönetimi modülü uygulanmasından sonra (1.6 adım). Bu modül yeni tarayıcılar için gerekli olmayabilir, ve tarayıcı yüzeyinin sadece bir bölümü kullanılır ise, güç yönetimi gereksiz olabileceğini unutmayın. (C) agar besin farklı donukluk ile Tabaklar algılama farklı düzeylerde yol açabilir. 11. gösterileri inci Şekilfarklı opasiteler neden besin agar farklı hacimlerde e tolerans.
Deneysel ScanLag tekniği gerçekleştirmek kolaydır ve sadece standart Petri yemekleri mikroorganizmaları plaka ve tarayıcının bir yüzeye koyun gerektirir. Geliştirilen yazılım tüm prosedürü kontrol eder. Görüntü elde etme otomatik olarak yapılır ve koloni izleme için görüntü analizi de otomatik olur. Ayrıca, sistem ölçekli kadar olabilir, aynı zamanda bir çok farklı koşullar ölçmek için. Son olarak, bu yöntem, ticari ofis tarayıcılar dayanır ve bu nedenle, düşük maliyetli.
Bu teknik, E'den farklı mikroorganizmaların çalışma uzatılabilir E. coli K-12, ancak bazı noktalar yapılması gerekir. İlk olarak, daha sonra olanlar erken görünen kolonilerin etkisi önceki bir yayında 7'de ayrıntılı olarak tarif edildiği gibi, değerlendirilmelidir. E. Coli K-12,plaka başına CFU maksimum yoğunluğu. kolonilerin farklı boyutlarda olan diğer suşlar 200 ve koloniler arasındaki diğer muhtemel çapraz talk, farklı bir yoğunluk gerektirebilir. İkinci olarak, plakaların analiz katı, orta ve koloniler arasındaki kontrast bağlı olarak, modifiye edilmesi gerekebilir özel yazılım tabanlı bir eşik için kalibre edilir. Yazılım lag ve büyüme oranı ötesinde diğer koloni özelliklerini elde etmek için de uzatılabilir. Yazılım kodu açıktır ve koloni şekli, parlaklık, yumuşaklık ve renk elde etmek için modifiye edilebilir.
Ölçümleri tek hücrelerden köken kolonileri üzerinde yapılmış olduğundan, verileri nüfus seviyesi ölçümlerine göre edilemeyen yeni fenotipleri ortaya koymaktadır. Gecikme süresi dağılımının önemi antibiyotiklerin varlığında ortaya çıkar. Birçok antibiyotikler sadece artan hücrelerine karşı etkili olduğu bilinmektedir; Bu nedenle sürece hücreler gecikme aşamasında kalır ve büyümek değil, onlar proBu antibiyotik 21 etkilerinden koruma altında. Kalanlar bakterilerin sayıları antibiyotik tedavisi 15,22,23 sırasında zaman aralıklarında değerlendirildiğinde, persisters adı bakteri alt popülasyonu, çoğu zaman ortaya çıkar. Bazı durumlarda, antibiyotik tedavisine uzun süreli bağışıklık lag kaynaklanmaktadır. Bu kurulumu kullanarak, bu gecikme ortaya ve genellikle önemsiz olmayan bir dağılımı 24 (Şekil 6) vardır. Bu yöntem, aynı zamanda az bulunan mutantların alınmasını sağlar. Örneğin, mutasyona uğramış bir nüfus kaplama sonrası, mutantlan fenotip göre tespit edilebilir ve seçim olmadan, direkt olarak izole edilmiştir. Kurulum da at kolonilerinin yoğunluğunun bir fonksiyonu olarak kolonilerin büyümesini ölçmek yoluyla hücre-hücre etkileşimleri izleyebilir ve bu çekirdek algılama veya sarılmış bakterilerin yayılması gibi olayları ölçmek için kullanılabilir. Bu yöntemi kullanarak gelecek deneylerle ortaya boyutlu bilgi mikrobiyal nüfusun daha iyi karakterizasyonu yol açacaktırs tıbbi ve çevresel araştırma gelişmeler.
The authors have nothing to disclose.
We thank Eliq Oster for the images of the Bacillus subtillis. The work is supported by the European Research Council (# 260871) and the Israel Science Foundation (#592/10).
Name of Material | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Bacto Agar | BD | 214010 | |
Difco LB broth | BD | 240230 | |
Petri dish 90mm | Miniplast | 20090-01 | |
Name of Equipment | |||
Epson Perfection v37 | Epson | B11B207201 | Flatbed Scanner with Optical resolution: 4800 dpi, Hardware Resolution: 4800 x 9600 dpi, color bit depth 48-bit. |
Epson Perfection v200 | Epson | B11B188011 | |
Epson Perfection 3490 | Epson | B11B177011 | |
ADU200 USB Relay | ONTRAK | ||
pieces of sterile black felt cloth | custon made | approximatly 100 x100 mm | |
white plate holders | custon made | surface size, with 6 x 99mm diameter hole | |
Delerin rings the size of the Petri dish | custon made | inner diameter: 72 mm outer diameter: 86 mm top outer diameter: 90 mm |