Imaging embryonal vävnad i realtid är en utmaning under långa tidsperioder. Här presenterar vi en analys för att övervaka cellulära och sub-cellulära förändringar i chick ryggmärgen under långa perioder med hög rumslig och temporal upplösning. Denna teknik kan vara anpassade för andra regioner av nervsystemet och utvecklande embryot.
Den embryonala ryggmärgen består av cykling neurala progenitorceller som ger upphov till en stor andel av de neuronala och glia-celler i det centrala nervsystemet (CNS). Även om mycket är känt om de molekylära mekanismer som mönster ryggmärgen och framkallar neuronal differentiering 1, 2, saknar vi en djup förståelse för dessa tidiga händelser på nivå cellens beteende. Det är sålunda kritiskt att studera uppträdandet av neurala progenitorceller i realtid, eftersom de undergår neurogenes.
Tidigare har realtid avbildning av tidig embryonal vävnad har begränsats av cell / vävnads viabilitet i odling liksom de fototoxiska effekten av fluorescerande avbildning. Här presenterar vi en ny analys för avbildning sådan vävnad under långa perioder, att använda en ny ex vivo-protokoll slice kultur och brett fält fluorescensmikroskopi (Fig. 1). Detta tillvägagångssätt ger på lång sikt time-lapse övervakning av chick embryonal sPinal sladd stamceller med hög rumslig och temporal upplösning.
Denna analys kan modifieras till bild en rad av embryonala vävnader 3, 4 Förutom observation av cellulära och sub-cellulära beteenden, utveckling av nya och mycket känsliga reportrar för genaktivitet (till exempel Notch signalering 5) gör denna analys ett kraftfullt verktyg för att förstå hur signalering reglerar cellens beteende under fosterutvecklingen.
Vi presenterar här en ny time-lapse avbildning analys för att övervaka cellens beteende i kyckling embryonal skiva kultur. Denna analys möjliggör hög upplösning avbildning av levande vävnad för upp till 70 timmar, även om tidsramar mellan 24-48 timmar är lättare att fånga. Användningen av en hög NA olja mål och relativt korta intervall mellan tidpunkter gör bilden förvärvet med hög upplösning, samt ger oss möjlighet att övervaka cellens beteende som ofta sker snabbt och kan lätt missa under vanlig time-lapse avbildning med konfokal mikroskopi.
Den stora fördelen med denna analys är förmågan att bilden celler under långa tidsperioder. Användningen av breda fält 6 i stället för konfokala laser scanning 7 mikroskopi är avgörande för detta. Konfokalmikroskopi har traditionellt erbjudit flera fördelar jämfört med brett fält mikroskopi, inklusive möjligheten att ta optiska sektioner och eliminera ofokuserad information direkt <sup> 7, men användningen av ett litet hål leder till en förlust av ljus till detektorn 8, med undantag av en signifikant mängd information, och nödvändiggör längre exponeringstider. Bred-mikroskopi, å andra sidan, använder fullständig fältbelysning och allt ljus som passerar genom objektiv sänds till detektom. Detta tillsammans med en hög kvanteffektivitet kyldes anordning (CCD)-kamera säkerställer avbildning med en hög signal till brusförhållande i jämförelse med konfokalmikroskopi 9, med mycket snabba exponeringstider. I vår ansökan måste vi bilden under långa perioder, spela 3D-stackar och slutligen lösa små nära diffraktionsbegränsad strukturer. Även konfokalmikroskopi förhindrar out-of-fokus ljuset från att någonsin nå detektorn och därmed avsevärt minskar bakgrund i tjocka, tätt-märkta prover 7, 8, uppnår bara en användbar signal-brus-förhållande med mycket större ljus input än bred- mikroskopi 10. För mycket ljuskänsliga sparselY-märkta prover som våra elektroporerade ryggmärgen skivor, därför genomför brett fält mikroskopi bättre än konfokalmikroskopi. När den kombineras med bild restaurering av avfaltning, som tar bort ur fokus information och förbättrar kontrast, wide-fältet är då särskilt bra för detektering av små, dunkla föremål 11. Även om inte lämpliga för alla vävnader avbildning experiment har detta tillvägagångssätt varit mycket effektiva för vår levande cell imaging program.
Valet av fluorescerande protein är en viktig faktor som kan påverka cellöverlevnad. Vi finner att de bästa resultaten erhålles från konstruktioner som använder grönt fluorescerande protein (GFP) 12 som en markör. Vi utvärderar för närvarande ett antal röda fluorescerande proteiner som effektivt kan användas i kombination med GFP för dubbla kanaler time-bortfaller. Det finns ett flertal sådana proteiner som finns 13. Även om många proteiner är stabila som fusioner med en fluorescerande proteinKan vissa proteiner göras instabil genom sammansmältning, vilket resulterar i reducerad cellviabilitet. I sådana fall är användningen av konstruktioner innehållande en inre ribosominträdesställe (IRES) är användbara för att separera det intressanta proteinet från det fluorescerande proteinet.
När imaging ryggmärgen skivor, måste man för att minimera exponeringen för fluorescerande ljus. De mikroskop okular får endast användas med ljus (brightfield) för att hitta och position skivor. Fluorescerande bilder bör alltid köpas med hjälp av mikroskop programvaran med minimal exponering gånger. Dessa bör hållas i intervallet 5-50 ms och användning av neutrala densitet filter bör experimenteras med. Även om längre exponeringstider kan initialt producera tydligare bilder, kan de fototoxiska effekten av fluorescerande ljus exponering leder till celldöd. De första 5-10 | im i vävnad som är närmast den täckglaset bör inte avbildas som denna region innehåller vävnad som kan ha skadats underskivning.
Även om exemplen som presenteras här är embryon elektroporerades vid HH skede 10 och avbildade 6-7 timmar senare, kan denna metod användas för embryon upp till HH scenen 18. I senare skeden är ryggmärgsvävnad mycket större och så är det svårt att skära hand. I dessa fall kan bädda embryona i agaros med låg smältpunkt och snittning med en vibratom erhålla bättre resultat. Även om vi presentera denna analys som ett förfarande för avbildning av celler i u ryggmärgen har detta tillvägagångssätt också modifierats för att avbilda andra embryonala vävnader, inklusive den sensoriska placodes 3.
The authors have nothing to disclose.
Reagent | Company | Catalogue number | Comments |
WillCo Dish | WillCo Wells | GWst-3522 | |
poly-l-lysine | Sigma | P8970 | 0.1% in Tris |
Borosilicate glass capillaries | Harvard Instruments | GC100-10 | 1.0mm outer diameter, 0.58mm inner diameter |
Electrodes (Genetrodes, in ovo, L-shaped | BTX | 10-001850-01 | 5mm gold plated |
ECM 830 square pulse generator | BTX | 45-0002 | for in ovo electroopration |
Fast Green | Sigma | F7258 | |
Type I rat collagen | Sigma | C3857 | |
L-15 medium (powder) | Sigma | 2.76 g/L in distilled water for 5x solution |
|
Sodium bicarbonate | Sigma | S8761 | 7.5% solution |
Neurobasal medium | Invitrogen | 12348-017 | without phenol red |
Glutamax | Invitrogen | A1286001 | 100x solution |
B-27 supplement | Invitrogen | 17504-044 | |
Gentamicin | Invitrogen | 15710049 | 10 mg/ml |
L15 medium (liquid 1x) | Invitrogen | 11415-049 | |
Microknife | Altomed | A10102 | 15 degree incline |
Stainless steel headless pins | Watkins and Doncaster | E6871 | A1 size |
Sylgard 184 elastomer | VWR | 634165S | |
DeltaVision Core microscope system | Applied Precision | ||
Coolsnap HQ2 CCD camera | Photometrics |