Summary

Dans l'imagerie in vivo de la moelle épinière de souris utilisant microscopie à deux photons

Published: January 05, 2012
doi:

Summary

Un protocole minimalement invasive pour stabiliser la colonne vertébrale de souris et d'effectuer répétitives<em> In vivo</emImagerie> moelle épinière en utilisant microscopie à deux photons est décrit. Cette méthode combine un dispositif de stabilisation vertébrale et un régime d'anesthésie afin de minimiser les mouvements induits par des voies respiratoires et de produire des données d'imagerie brutes qui ne nécessitent pas d'alignement ou d'autres post-traitement.

Abstract

L'imagerie in vivo en utilisant microscopie à deux photons dans une souris qui ont été génétiquement modifiées pour exprimer des protéines fluorescentes dans des types cellulaires 2-3 a sensiblement élargi notre connaissance des processus physiologiques et pathologiques dans de nombreux tissus in vivo 4-7. Dans les études sur le système nerveux central (SNC), il ya eu une large application de l'imagerie in vivo dans le cerveau, qui a produit une pléthore de nouvelles et les résultats souvent inattendus sur le comportement des cellules comme les neurones, les astrocytes, la microglie, sous conditions physiologiques ou pathologiques 8-17. Toutefois, des complications essentiellement techniques ont limité la mise en œuvre de l'imagerie in vivo dans des études de la moelle épinière de souris vivante. En particulier, la proximité anatomique de la moelle épinière vers les poumons et le cœur génère des artefacts importants mouvements qui permet l'imagerie de la moelle épinière qui vivent une tâche difficile. </p>

Nous avons développé une nouvelle méthode qui permet de surmonter les limitations inhérentes à l'imagerie de la moelle épinière par la stabilisation de la colonne vertébrale, réduisant respiratoires induites par les mouvements et en facilitant ainsi l'utilisation de la microscopie à deux photons à l'image de la moelle épinière de souris in vivo. Ce résultat est obtenu en combinant un dispositif de stabilisation spinale personnalisé avec une méthode d'anesthésie profonde, résultant en une réduction significative des maladies respiratoires induites par les mouvements. Ce protocole vidéo montre comment exposer une petite zone de la moelle épinière qui vivent peut être maintenu sous des conditions physiologiques stables sur de longues périodes de temps en gardant une lésion des tissus et des saignements au minimum. Représentant des images brutes acquises en détail in vivo à haute résolution de la relation étroite entre les microglies et la vascularisation. Une séquence timelapse montre le comportement dynamique des processus microgliales dans la moelle épinière de souris vivante. Par ailleurs, une analyse continue de la même z-cadre démontrents la stabilité exceptionnelle que cette méthode peut réaliser pour générer des piles d'images et / ou des films timelapse qui ne nécessitent pas d'alignement d'image post-acquisition. Enfin, nous montrons comment cette méthode peut être utilisée pour revisiter et réimager la même zone de la moelle épinière au timepoints plus tard, permettant des études longitudinales de cours de processus physiologiques ou pathologiques in vivo.

Protocol

1. Construire le dispositif de stabilisation spinale Ordre de la mission STS-A Narishige Compact Pinces moelle épinière et le Narishige MA-6N adaptateur tenant la tête. Conception sur mesure et faire une plaque en acier inoxydable de base pour tenir les deux parties Narishige dans l'alignement de sorte que la tête de l'animal est pris en charge alors que sa colonne vertébrale et la queue sont serrées. Gardez à l'esprit que l'ensemble du dispositif doit pouvoir être placés so…

Discussion

La méthode décrite ici permet de stable et répétitive en imagerie in vivo de la fluorescence densément peuplées structures cellulaires dans la moelle épinière des souris anesthésiées à l'aide microscopie à deux photons. La stabilité obtenue est le résultat d'un instrument fait sur mesure et une stabilisation de la colonne vertébrale protocole anesthésique qui réduit d'artefact mouvement respiratoire induite. Le dispositif de stabilisation vertébrale permet de répit sous l…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par la National Multiple Sclerosis Society accorde RG4595A1 / T à DD et les subventions des NIH / NINDS NS051470, NS052189 et NS066361 aux figures KA et des films adaptés et / ou tiré à part de Davalos et coll., J Neurosci Méthodes. Mars 2008 30; 169 (1) :1-7 Copyright 2008, avec la permission d'Elsevier.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Rhodamine B dextran Invitrogen D1841 70 kDa, diluted in
ACSF (3% w/v)
Ketamine HCl Bionichepharma NDC No: 67457-001-10 Injectable, 50mg/ml
Anased Lloyd Labs NADA No: 139-236 Xylazine injectable,
20mg/ml
Acepromazine Vedco NADA No: 117-531 Injectable,10mg/ml
Artificial tears
ointment
Phoenix
pharmaceutical
NDC No: 57319-760-
25
Lubricant
Betadine Fisher 19-061617  
McPherson-Westcott
Scissors
World Precision
Instruments
555500S Curved, blunt-tip
scissors
Straight Forceps World Precision
Instruments
555047FT Toothed tip forceps
Small vessel cauterize Fine Science Tools 18000-00  
Gelfoam Pharmacia,Pfizer Inc. Mixer Mill MM400  
Compact spinal cord
clamps
Narishige STS-A  
Head holding adaptor Narishige MA-6N  
Gelseal Amersham
Biosciences Corp.
80-6421-43  
Lactated Ringers Baxter Healthcare 2B8609  
Buprenex Reckit Benckiser
Pharmaceuticals Inc.
NDC No: 12496-
6757-1
Buprenorphine,
injectable
Baytril Bayer NADA 140-913 Enrofloxacin,
antibacterial injectable
2.27% (20ml)
Heating pad – Large Fine Science Tools 21060-10  

References

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Cite This Article
Davalos, D., Akassoglou, K. In vivo Imaging of the Mouse Spinal Cord Using Two-photon Microscopy. J. Vis. Exp. (59), e2760, doi:10.3791/2760 (2012).

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