概要

ヒト膣チップにおける健康および嚥下障害の膣微小環境のモデリング

Published: February 16, 2024
doi:

概要

この記事では、微好気性条件下でのヒト宿主と生きた膣マイクロバイオームとの相互作用の研究を可能にするマイクロ流体膣オンチップ(膣チップ)培養デバイスを作成するためのプロトコルについて説明します。このチップは、膣疾患を調査するためのツールとしてだけでなく、潜在的な治療対策を開発およびテストするためのツールとして使用できます。

Abstract

女性の健康、特に女性の生殖管(FRT)の疾患は、不健康な生殖器系が生命を脅かす病気、不妊症、または妊娠中の有害な結果につながる可能性があるにもかかわらず、彼女たちにふさわしい注意を払われていません。この分野の障壁の1つは、FRTの生理学と病態生理学を忠実に模倣する前臨床の実験モデルが不足していることです。組織間界面、血管灌流、間質液の流れ、およびヒト臓器の主要なサブユニットの物理的微小環境を模倣できるOrgan-on-a-Chip(Organ Chip)マイクロ流体培養技術の出現は、この問題の解決策として役立つ可能性があります。最近、ヒト膣微生物コンソーシアムと、膣間質とも接種され、動的な流体の流れを経験する一次ヒト膣上皮との共培養をサポートするヒト膣チップが開発されました。このチップは、健康で腸内細菌叢の異常性に対するヒト膣の生理学的反応を再現します。人間の膣チップを作成するための詳細なプロトコルは、この記事で説明されています。

Introduction

酸性微小環境の維持に役立つ乳酸桿菌属が優勢な膣内細菌叢は、女性のリプロダクティブヘルスの維持に重要な役割を果たしています1。ただし、マイクロバイオームを構成する微生物群集の構成が変化し、膣内細菌の多様性が増加する場合があります。これらの嚥下障害の変化は、乳酸桿菌が優勢な状態から、より多様な嫌気性細菌種(ガードネレラ膣など)が優勢な状態への切り替えをもたらすことが多く、細菌性膣炎、萎縮性膣炎、尿路感染症、外陰膣カンジダ症、尿道炎、絨毛膜羊膜炎などの生殖器系のさまざまな疾患に関連しています2,3,4,5 .これらの疾患は、次に、女性が性感染症や骨盤内炎症性疾患にかかる可能性を高めます6,7,8,9。また、妊婦の早産や流産のリスクも高く、10,11,12 不妊症にも関与しています 13,14,15,16。

静的な2次元(2D)培養系17,18で培養された膣上皮細胞を用いて膣内細菌叢異常をモデル化する努力がなされてきたが、それらは膣微小環境19の生理学および複雑さを効果的に模倣していない。動物モデルは、膣の嚥下障害の研究にも使用されています。しかし、それらの月経期と宿主とマイクロバイオームの相互作用はヒトのそれとは大きく異なるため、これらの研究の結果の生理学的関連性は不明のままです19,20,21。これらの問題に対処するために、ヒト膣組織のオルガノイドおよびトランズウェルインサートモデルも、FRTにおける宿主と病原体の相互作用を研究するために使用されています19,22,23,24。しかし、これらは静的培養であるため、ヒト細胞と生きた微生物との共培養を短時間(<16〜24時間)しかサポートできず、粘液産生や体液流など、ヒト膣微小環境の他の多くの潜在的に重要な物理的特徴が欠けています22

臓器チップは、動的な流体流下で培養された生細胞によって裏打ちされた1つ以上の平行な中空マイクロチャネルを含む3次元(3D)マイクロ流体培養システムです。2チャンネルチップは、2つの平行なチャネルを分離する多孔質膜の反対側で異なる細胞タイプ(上皮と間質線維芽細胞、上皮と血管内皮など)を培養することにより、臓器レベルの組織間界面の再現を可能にします(図1)。両方の組織は独立して流体流にさらされることができ、複雑なマイクロバイオームとの共培養を可能にする微好気性条件を経験することもできます25,26,27,28。このアプローチは最近、ホルモン感受性の原発性膣上皮が下にある間質線維芽細胞とインターフェースで裏打ちされたヒト膣チップを開発するために活用され、上皮内腔の生理学的酸素濃度を低く維持し、in vitroで少なくとも3日間、健康な微生物叢と細菌叢の異なる微生物叢との共培養を可能にします29。Vagina Chipを使用して、最適な(健康な)L. crispatusコンソーシアムによるコロニー形成を研究し、コンソーシアムを含む最適でない(健康でない)G. vaginalisによって引き起こされる炎症と損傷を検出できることが実証されました。ここでは、ヒト膣チップの作成方法と、チップ上に健康で細菌叢異常の細菌群集を確立するために使用される方法について詳しく説明します。

Protocol

この研究は、ヒト細胞の使用に関する機関のガイドラインに準拠して実施されました。細胞は商業的に入手した( 資料表参照)。すべてのステップは、バイオセーフティキャビネット(BSC)で無菌的に実行する必要があります。このプロトコルには、フィルター(またはバリア)ピペットチップのみを使用してください。 1. ヒト膣上皮細胞の培養 <l…

Representative Results

人間の膣は、線維芽細胞に富むコラーゲン間質を覆う層状上皮によって裏打ちされています。これをモデル化するために、2チャンネルのマイクロ流体臓器チップデバイス内で、一般的な多孔質膜の反対側にある初代ヒト膣上皮と線維芽細胞を培養することにより、組織界面を作成しました。膣上皮の形成は、明視野顕微鏡イメージングを用いてモニターされ、複数の細胞層を徐々に形成する…

Discussion

ヒト膣の過去のin vitroモデルは、膣組織の構造、体液の流れ、および宿主と病原体の相互作用を忠実に再現していません19,22。動物モデルは、マイクロバイオームの種間変動や発情周期または月経周期の違いによっても制限されます19,22。この原稿では、健康で嚥下障害のある微生物群集に対する人…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Materials

0.22 µm Steriflip Millipore  SCGP00525 To degas media
2 channel chip Emulate BRK-S1-WER-24 Part of the two-channel Chip kit
200 μL barrier tips (or filter tips) Thomas Scientific, SHARP 1159M40 Tips used for chip seeding
Activation Reagent 1 (or ER-1 powder)  Emulate Chip S1 Basic Research kit-24PK Part of the two-channel Chip kit; Storage temperature -20 °C  
Activation Reagent 2 (or ER-2 solution)  Emulate Chip S1 Basic Research kit-24PK Part of the two-channel Chip kit; Storage temperature 4 °C
Adenine Sigma Aldrich  A2786 Component of the Differentiation media
Brucella blood agar plates VWR International Inc.  89405-032 with Hemin and Vitamin K; For the enumeration of Gardnerella vaginalis
Ca2+ and Mg2+ free DPBS (DPBS (-/-) ScienCell 303 For washing cells
Calcium Chloride Sigma Aldrich  C5670 Component of the Differentiation media
Calcium chloride (anhyd.)  Sigma Aldrich  499609 Component of HBSS (LB/+G)
Collagen I  Corning 354236 For the coating solution for HVEC
Collagen IV  Sigma Aldrich  C7521 For the coating solution for HVEC
Collagenase IV Gibco 17104019 For the dissociation of cells from the Vagina Chips
Complete fibroblast medium  ScienCell 2301 Media for the culture of HUF
Complete vaginal epithelium medium Lifeline LL-0068 Media for the culture of HVEC
D-Glucose (dextrose)  Sigma Aldrich  158968 Component of HBSS (LB/+G)
DMEM (Low Glucose)  Thermofisher 12320-032 Component of the Differentiation media
Dynamic Flow Module (or Zoë) Emulate Zoë-CM1 Regulates the flow rate of the chips
Ham's F12 Thermofisher 11765-054 Component of the Differentiation media
Heat inactivated FBS  Thermofisher  10438018 Component of the Differentiation media
Human uterine fibroblasts ScienCell 7040 HUF
Human vaginal epithelial cells Lifeline FC-0083 HVEC
Hydrocortisone Sigma Aldrich  H0396 Component of the Differentiation media
ITES Lonza 17-839Z Component of the Differentiation media
L-glutamine Thermofisher 25030081 Component of the Differentiation media
Magnesium chloride hexahydrate Sigma Aldrich  M2393 Component of HBSS (LB/+G)
Magnesium sulfate heptahydrate Sigma Aldrich  M1880 Component of HBSS (LB/+G)
MRS agar plates VWR International Inc.  89407-214 For enumeration of Lactobacillus
O-phosphorylethanolamine Sigma Aldrich  P0503 Component of the Differentiation media
Pen/Strep Thermofisher  15070063 Component of the Differentiation media
pH strips Fischer-Scientific 13-640-520 For measurement of pH 
Pods (1/chip)  Emulate BRK-S1-WER-24 Part of the two-channel Chip kit
Poly-L-lysine ScienCell 403 For the coating solution for HUFs
Potassium chloride  Sigma Aldrich  P3911 Component of HBSS (LB/+G)
Potassium phosphate monobasic Sigma Aldrich  P0662 Component of HBSS (LB/+G)
Sterile 80% glycerol  MP Biomedicals  113055034 For freezing bacterial samples
Triiodothyronine Sigma Aldrich   T6397 Component of the Differentiation media
Trypan Blue Solution (0.4%)  Sigma Aldrich  T8154 For counting live/dead cells
TrypLE Express Thermofisher  12605010 For the dissociation of cells from the Vagina Chips
Trypsin Neutralizing Solution (TNS)  ScienCell 113 For neutralization of Trypsin
Trypsin/EDTA Solutiom (0.25%) ScienCell 103 For cell dissociation 
β-estradiol  Sigma Aldrich  E2257 Hormone for differentiation media

参考文献

  1. Smith, S. B., Ravel, J. The vaginal microbiota, host defence and reproductive physiology. J Physiol. 595 (2), 451-463 (2017).
  2. Van De Wijgert, J., Jespers, V. The global health impact of vaginal dysbiosis. Res Microbiol. 168 (9-10), 859-864 (2017).
  3. Ralph, S. G., Rutherford, A. J., Wilson, J. D. Influence of bacterial vaginosis on conception and miscarriage in the first trimester: Cohort study. BMJ. 319 (7204), 220-223 (1999).
  4. Goldenberg, R. L., Hauth, J. C., Andrews, W. W. Intrauterine infection and preterm delivery. N Engl J Med. 342 (20), 1500-1507 (2000).
  5. Han, Y., Liu, Z., Chen, T. Role of vaginal microbiota dysbiosis in gynecological diseases and the potential interventions. Front Microbiol. 12, 643422 (2021).
  6. Leitich, H., Kiss, H. Asymptomatic bacterial vaginosis and intermediate flora as risk factors for adverse pregnancy outcome. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 21 (3), 375-390 (2007).
  7. Torcia, M. G. Interplay among vaginal microbiome, immune response and sexually transmitted viral infections. Int J Mol Sci. 20 (2), 266 (2019).
  8. Van Oostrum, N., De Sutter, P., Meys, J., Verstraelen, H. Risks associated with bacterial vaginosis in infertility patients: A systematic review and meta-analysis. Hum Reprod. 28 (7), 1809-1815 (2013).
  9. Lewis, F. M. T., Bernstein, K. T., Aral, S. O. Vaginal microbiome and its relationship to behavior, sexual health, and sexually transmitted diseases. Obstet Gynecol. 129 (4), 643-654 (2017).
  10. Hong, X., et al. The association between vaginal microbiota and female infertility: A systematic review and meta-analysis. Arch Gynecol Obstet. 302 (3), 569-578 (2020).
  11. Peelen, M. J., et al. The influence of the vaginal microbiota on preterm birth: A systematic review and recommendations for a minimum dataset for future research. Placenta. 79, 30-39 (2019).
  12. Smith, P. P., et al. Outcomes in prevention and management of miscarriage trials: A systematic review. BJOG. 126 (2), 176-189 (2019).
  13. Harp, D. F., Chowdhury, I. Trichomoniasis: Evaluation to execution. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 157 (1), 3-9 (2011).
  14. Pastorek, J. G., Cotch, M. F., Martin, D. H., Eschenbach, D. A. Clinical and microbiological correlates of vaginal trichomoniasis during pregnancy. The vaginal infections and prematurity study group. Clin Infect Dis. 23 (5), 1075-1080 (1996).
  15. Petrin, D., Delgaty, K., Bhatt, R., Garber, G. Clinical and microbiological aspects of trichomonas vaginalis. Clin Microbiol Rev. 11 (2), 300-317 (1998).
  16. Edwards, T., Burke, P., Smalley, H., Hobbs, G. Trichomonas vaginalis: Clinical relevance, pathogenicity and diagnosis. Crit Rev Microbiol. 42 (3), 406-417 (2016).
  17. Eade, C. R., et al. Identification and characterization of bacterial vaginosis-associated pathogens using a comprehensive cervical-vaginal epithelial coculture assay. PLoS One. 7 (11), e50106 (2012).
  18. Fichorova, R. N., Yamamoto, H. S., Delaney, M. L., Onderdonk, A. B., Doncel, G. F. Novel vaginal microflora colonization model providing new insight into microbicide mechanism of action. mBio. 2 (6), e00168 (2011).
  19. Herbst-Kralovetz, M. M., Pyles, R. B., Ratner, A. J., Sycuro, L. K., Mitchell, C. New systems for studying intercellular interactions in bacterial vaginosis. J Infect Dis. 214, S6-S13 (2016).
  20. Johnson, A. P., et al. A study of the susceptibility of three species of primate to vaginal colonization with gardnerella vaginalis. Br J Exp Pathol. 65 (3), 389-396 (1984).
  21. Yildirim, S., et al. Primate vaginal microbiomes exhibit species specificity without universal lactobacillus dominance. ISME J. 8 (12), 2431-2444 (2014).
  22. Edwards, V. L., et al. Three-dimensional models of the cervicovaginal epithelia to study host-microbiome interactions and sexually transmitted infections. Pathog Dis. 80 (1), 026 (2022).
  23. Zhu, Y., et al. Ex vivo 2D and 3D HSV-2 infection model using human normal vaginal epithelial cells. Oncotarget. 8 (9), 15267-15282 (2017).
  24. Barrila, J., et al. Modeling host-pathogen interactions in the context of the microenvironment: Three-dimensional cell culture comes of age. Infect Immun. 86 (11), e00282 (2018).
  25. Bein, A., et al. Microfluidic organ-on-a-chip models of human intestine. Cell Mol Gastroenterol Hepatol. 5 (4), 659-668 (2018).
  26. Jalili-Firoozinezhad, S., et al. A complex human gut microbiome cultured in an anaerobic intestine-on-a-chip. Nat Biomed Eng. 3 (7), 520-531 (2019).
  27. Valiei, A., Aminian-Dehkordi, J., Mofrad, M. R. K. Gut-on-a-chip models for dissecting the gut microbiology and physiology. APL Bioeng. 7 (1), 011502 (2023).
  28. Izadifar, Z., et al. Mucus production, host-microbiome interactions, hormone sensitivity, and innate immune responses modeled in human endo- and ecto-cervix chips. bioRxiv. , (2023).
  29. Mahajan, G., et al. Vaginal microbiome-host interactions modeled in a human vagina-on-a-chip. Microbiome. 10 (1), 201 (2022).
  30. Masson, L., et al. Inflammatory cytokine biomarkers to identify women with asymptomatic sexually transmitted infections and bacterial vaginosis who are at high risk of HIV infection. Sex Transm Infect. 92 (3), 186-193 (2016).
  31. Amsel, R., et al. Nonspecific vaginitis. Diagnostic criteria and microbial and epidemiologic associations. Am J Med. 74 (1), 14-22 (1983).

Play Video

記事を引用
Gulati, A., Jorgenson, A., Junaid, A., Ingber, D. E. Modeling Healthy and Dysbiotic Vaginal Microenvironments in a Human Vagina-on-a-Chip. J. Vis. Exp. (204), e66486, doi:10.3791/66486 (2024).

View Video