Визуализация ex vivo в реальном времени является мощным методом изучения динамических процессов клеточных движений и взаимодействий в живых тканях. Здесь мы представляем протокол, который реализует двухфотонную микроскопию для отслеживания эпителиальных клеток зубов в культивируемых цельных резцах взрослой мыши.
Непрерывно растущий резец мыши становится модельной системой с высокой проходимостью для исследования регуляции взрослых эпителиальных и мезенхимальных стволовых клеток и регенерации зубов. Эти популяции-предшественники активно делятся, перемещаются и дифференцируются, поддерживая гомеостаз тканей и оперативно регенерируя утраченные клетки. Однако традиционные анализы с использованием фиксированных срезов тканей не могли охватить динамические процессы клеточных движений и взаимодействий, что ограничивало наши возможности по изучению их регуляции. В данной статье описывается протокол сохранения целых резцов мыши в системе культивирования эксплантов и отслеживания эпителиальных клеток зубов в реальном времени с помощью многофотонной таймлапс-микроскопии. Этот метод дополняет наш существующий инструментарий для стоматологических исследований и позволяет исследователям получать пространственно-временную информацию о поведении и организации клеток в живой ткани. Мы ожидаем, что эта методология поможет исследователям в дальнейшем изучении механизмов, контролирующих динамические клеточные процессы, происходящие как во время обновления зубов, так и во время регенерации.
За последние два десятилетия резцы мыши стали бесценной платформой для исследования принципов регуляции взрослых стволовых клеток и регенерации зубов 1,2. Резец мыши постоянно растет и обновляется на протяжении всей жизни животного. Это достигается за счет поддержания как эпителиальных, так и мезенхимальных стволовых клеток, которые могут самообновляться и дифференцироваться в различные типы клеток зуба 1,2. В то время как зубные эпителиальные стволовые клетки дают начало амелобластам, которые секретируют эмалевый матрикс, зубные мезенхимальные стволовые клетки дают начало одонтобластам, цементобластам и фибробластам, которые образуют дентин, цемент и периодонтальную связку соответственно 3,4,5,6. Это постоянное поступление новых клеток поддерживает гомеостаз тканей и позволяет заменять старые клетки, которые теряются из-за жевательного износа или травм 7,8. Таким образом, выяснение клеточных и молекулярных механизмов, регулирующих поддержание и дифференцировку стоматологических стволовых клеток, занимает центральное место в понимании регенерации зубов, области, представляющей растущий интерес.
Анатомически большая часть резцов взрослой мыши заключена в челюстную кость. В то время как режущий край зуба обнажен, апикальный конец резца входит в лунку и прочно прикрепляется к окружающей кости через периодонтальные связки и соединительные ткани (рис. 1A, B). Апикальный конец резца также является областью роста зуба и поддерживает стволовые и прогениторные клетки зуба как в эпителиальном слое, так и в мезенхимальной пульпе 9,10,11,12,13. В частности, стволовые клетки зубного эпителия поддерживаются на луковичном конце эпителия, известном как апикальная почка, также называемая губной шейной петлей (рис. 1C). Подобно эпителию кишечника и эпидермису, обновление эпителия в резце в основном поддерживается активно циркулирующими стволовыми клетками и их высокопролиферативными промежуточными потомками, называемыми транзитно-амплифицирующими клетками14, 15, 16, 17, расположенными во внутренней части шейной петли. Тем не менее, содержит ли эпителий резца и использует ли он покоящиеся стволовые клетки во время регенерации, еще предстоит определить. Напротив, в апикальной пульпе были идентифицированы как активные, так и неподвижные зубные мезенхимальные стволовые клетки, а неподвижные стволовые клетки функционируют как резервная популяция, которая активируется во время восстановления травмы13,18.
Многие из открытий в области биологии обновления и регенерации резцов мышей являются результатом гистологических исследований, в ходе которых образцы получают в различных временных точках, фиксируют, обрабатывают, а затем разрезают на микронные тонкие срезы вдоль определенной плоскости. Благодаря детальному анализу гистологических срезов различных мышиных моделей, которые позволяют отслеживать родословную или генетические возмущения, ученые определили клеточные линии различных популяций предшественников, а также генетические и сигнальные пути, которые контролируют гомеостаз резцов и восстановление повреждений 19,20,21. Однако статические двумерные (2D) изображения невитальных клеток в разрезах не могут охватить весь спектр клеточного поведения и пространственных организаций в живой ткани, таких как изменения формы клеток, движения и клеточная кинетика. Обнаружение и измерение этих быстрых клеточных изменений, которые происходят в масштабе времени, неразрешимом с помощью срезов тканей, требуют другой стратегии. Более того, получение такой информации также имеет решающее значение для понимания того, как зубные клетки взаимодействуют друг с другом, реагируют на различные сигнальные стимулы и самоорганизуются для поддержания тканевых структур и функций.
Появление четырехмерной (4D) визуализации глубоких тканей с использованием двухфотонной микроскопии22, технологии, которая объединяет три пространственных измерения с временным разрешением, преодолевает ограничения, присущие гистологическому анализу, позволяя проводить пространственно-временное исследование культивируемых тканевых эксплантов, органоидов или даже тканей in situ 23,24,25,26 . Например, 4D-визуализация развивающегося эпителия зуба в реальном времени выявила пространственно-временные закономерности деления и миграции клеток, которые координируют рост тканей, формирование сигнального центра и морфогенез зубного эпителия 27,28,29,30,31,32. В резце взрослой мыши 4D-визуализация недавно была адаптирована для изучения клеточного поведения во время восстановления повреждений зубного эпителия. Визуализация в реальном времени показала, что промежуточные клетки слоя в надбазальном слое могут быть непосредственно преобразованы в амелобласты в базальном слое для регенерации поврежденного эпителия, что бросает вызов традиционной парадигме восстановления повреждений эпителия15.
Здесь мы опишем вскрытие, культивирование и визуализацию резца взрослой мыши, уделяя особое внимание эпителиальным клеткам в губной шейной петле (рис. 1). Этот метод сохраняет жизнеспособность зубных клеток в течение более 12 часов и позволяет отслеживать флуоресцентно меченные клетки в реальном времени с разрешением одной клетки. Этот подход позволяет исследовать движение и миграцию клеток, а также динамические изменения формы клеток и ориентации деления в нормальных условиях культивирования или в ответ на генетические, физические и химические возмущения.
Визуализация живых тканей является важным методом, который позволяет нам изучать динамические процессы и поведение клеток, когда они сохраняются в своей нишевойсреде. В идеале визуализация в реальном времени выполняется in vivo с высоким пространственно-временным разр…
The authors have nothing to disclose.
Выражаем признательность Лаборатории передовой световой микроскопии/спектроскопии Калифорнийского университета в Лос-Анджелесе и Центру передового опыта Leica Microsystems при Калифорнийском институте наносистем (RRID:SCR_022789) за предоставление двухфотонной микроскопии. AS был поддержан ISF 604-21 Израильским научным фондом. JH поддержали R03DE030205 и R01DE030471 из NIH/NIDCR. AS и JH также получили грант 2021007 от Американо-израильского двунационального научного фонда (BSF).
24 well, flat bottom tissue culture plate | Olympus plastics | 25-107 | |
25x HC IRAPO motCORR water dipping objective | Leica | 11507704 | |
Ascorbic acid (Vitamin C) | Acros Organics | 352685000 | |
D-(+)-Glucose bioxtra | Sigma Aldrich | G7528 | |
Delta T system | Bioptechs | 0420-4 | Including temperature control, culture dishes, and perfusion setup |
Dissection microscope- LEICA S9E | Leica | LED300 SLI | |
DMEM/F12 | Thermo Scientific | 11039047 | Basal media without phenol red |
Feather surgical blade (#15) | Feather | 72044-15 | |
Fine forceps | F.S.T | 11252-23 | |
Glutamax | Thermo Scientific | 35050-061 | Glutamine substitute |
Leica SP8-DIVE equipped with a 25X HC IRAPO motCORR water dipping objective | Leica | n/a | |
low-melting agarose | NuSieve | 50080 | |
non-essential amino acids (100x) | Thermo Scientific | 11140-050 | |
penicillin–streptomycin | Thermo Scientific | 15140122 | 10,000 U/mL |
Petri dish | Gen Clone | 32-107G | 90 mm |
Rat serum | Valley Biomedical | AS3061SC | Processed for live imaging |
Razor blade #9 | VWR | 55411-050 | |
Scalpel handle | F.S.T | 10003-12 | |
Scissors | F.S.T | 37133 | |
serrated forceps | F.S.T | 11000-13 | |
spring scissors | F.S.T | 91500-09 |