概要

卵巣摘出マウスモデルにおける妊娠確立への子宮寄与の研究方法

Published: April 07, 2023
doi:

概要

妊娠の確立は、複雑な胚と子宮のクロストークを含む動的なプロセスです。これらの過程に対する母体の子宮環境の正確な寄与は、依然として活発な研究分野である。ここでは、これらの研究課題に対処するための in vivo 動物モデルの設計を支援するための詳細なプロトコルが提供されています。

Abstract

妊娠が確立されるためには、生存可能な胚盤胞が受容性子宮内膜(子宮内膜)とうまく相互作用して、着床と胎盤形成を促進し、継続的な妊娠を可能にする必要があります。胚の欠陥によって引き起こされる妊娠の成功の限界はよく知られており、 体外 受精(IVF)と生殖補助医療技術の台頭により、ここ数十年で大部分が克服されました。しかし、この分野はまだ、受容性が不十分な子宮内膜によって引き起こされる制限を克服していないため、体外受精の成功率が停滞しています。卵巣によって産生されるホルモンが子宮内膜の月経周期性に関与しているため、卵巣と子宮内膜の機能は密接に絡み合っています。そのため、妊娠のげっ歯類モデルを使用する場合、観察された結果が卵巣または子宮の欠損によるものであるかどうかを確認するのは難しい場合があります。これを克服するために、妊娠への子宮特異的寄与の研究を可能にするために、胚移植または人工脱落膜化を伴う卵巣摘出マウスモデルが開発されました。この記事では、卵巣摘出術の実施方法について説明し、健康なドナーからの胚移植後の人工脱落膜化または妊娠の成功をサポートするための外因性ホルモンを供給するためのさまざまな技術に関する洞察を提供します。これらの技術には、皮下注射、徐放性ペレット、および浸透圧ミニポンプが含まれます。各方法の主な長所と短所について説明し、研究者が特定の研究課題に最適な研究デザインを選択できるようにします。

Introduction

ここ数十年で生殖補助医療の使用が増えるにつれ、受胎に対する多くの障壁が克服され、不妊の問題にもかかわらず多くのカップルが家族を始めることができました1。卵母細胞または精子の欠損は、 体外 受精または細胞質内精子注入を使用してバイパスできることがよくあります。しかし、子宮と子宮内膜受容性に関連する問題は、生殖能力のとらえどころのない「ブラックボックス」のままです2

妊娠は、高品質の胚が受容性子宮内膜(子宮内膜)とうまく相互作用したときに確立されます。特定の月経周期で妊娠が成功する可能性は低く、約30%です3,4。成功したもののうち、妊娠20週を過ぎて前進するのは50%〜60%のみであり、着床の失敗は20週に達しない妊娠の75%の原因です3。これらの数字は1990年代後半にさかのぼりますが、この分野は、受容性が不十分な子宮内膜によって引き起こされる制限をまだ克服していません。その結果、近年、体外受精の成功率が停滞し、時には低下しています5,6

原因不明の不妊症の女性は、多くの場合、受容性の窓がずれているか、未知の理由で受容性を達成できません。最近、子宮内膜受容性アレイが開発され、胚移植のタイミングを個人の受容性のウィンドウに合わせて調整する目的で、数百の遺伝子の発現を評価します7,8,9しかし、この分野は、着床プロセスが完了した後に現れる妊娠合併症の病因についてまだ理解されていません。

女性の生殖器系は非常に動的で、厳密なホルモン管理下にあります。視床下部-下垂体-性腺(HPG)軸は、卵胞の成熟やエストロゲンとプロゲステロンの活性など、卵巣周期の側面を調節する黄体形成ホルモンと卵胞刺激ホルモンの放出を制御します。次に、子宮月経周期はエストロゲンとプロゲステロンによって調節されています10,11。したがって、子宮の生物学的メカニズムの研究は卵巣の影響によって複雑になります。たとえば、がん治療が子宮にどのように影響するかを研究する場合、観察された子宮表現型(妊娠喪失や月経非周期性など)が子宮への直接の侮辱の結果なのか、卵巣の損傷による結果的な影響なのかを区別するのは難しい場合があります。

生殖能力を包括的に理解するためには、妊娠への子宮の寄与を特徴付けなければなりません。重要なことに、この理解は卵巣の制御下にある子宮機能を超えて拡張されなければなりません。これは人間では研究できません。したがって、動物モデルがしばしば採用される。そのため、卵巣摘出術(OVX)は、研究者がホルモンを外因的に供給することにより、げっ歯類の発情周期(月経周期に類似)を調節できるようにするために一般的に使用されています。さらに、OVXは、卵巣の影響とは無関係に子宮反応を研究することを可能にします12。ただし、OVX後にホルモンがすぐに供給されない場合、更年期障害の表現型が発生するため、研究者は慎重に検討する必要があります。

OVXはげっ歯類モデル13,14,15,16,17で頻繁に利用され、適切な訓練後に比較的容易に実施できる。方法は、卵巣のみを取り除くか、卵巣と卵管を切除するか、および動物の年齢によって異なります(成体、サイクリング動物は、表面に黄体が見える大きな卵巣を持っているため、卵巣が視覚化しやすいことを意味します)。同様に、皮下注射14、徐放性ペレット15、浸透圧ミニポンプ18、および卵巣移植を含むホルモン補充の多くの方法が存在する。

この記事では、卵巣摘出術を行い、皮下注射、徐放性ペレット、浸透圧ミニポンプを含む3種類のホルモン補給を準備する方法について詳しく説明します。OVXとそれに続く外因性ホルモン補給(胚移植および人工脱落膜化)の恩恵を受ける実験エンドポイントには、2つの詳細なプロトコルが提供されています。この記事では、特に妊娠と生殖能力の研究分野で、子宮への影響を分離するための研究を実行する方法について研究者を導くことを目的として、各アプローチの長所と短所について説明します。

Protocol

すべての動物は、温度管理された高バリア施設(モナッシュ大学動物研究所)に収容され、無料の食料と水へのアクセスと12時間の明暗サイクルがありました。すべての手順は、モナッシュ動物研究プラットフォーム倫理委員会(#21908、17971)の承認に従って実行され、動物の世話と使用に関する国立保健医療研究評議会の行動規範に従って実行されました。 1.外科的準備<…

Representative Results

人工脱落膜化の十分に特徴付けられたモデルは、このプロトコルペーパーに記載されています(図1A)。ここで、若年成体雌マウス(8週齢)は、セクション1およびセクション2に記載されるように外科的卵巣摘出術を受けた。その後、マウスを2週間休ませて、内因性卵巣ホルモンが消散してから、セクション3〜7およびセクション9に記載されているように外?…

Discussion

この記事では、妊娠と出産への子宮の寄与を理解することに焦点を当てた研究のために、OVXを実行し、外因性ホルモンを提供する方法について段階的に説明します。これらの方法の2つの実験的応用について、胚移植の実施および人工的な脱落膜化の誘導を含む2つの詳細なプロトコルが提供されている。

OVXの実行は、特にげっ歯類モデルに不慣れな研究者にとって、最初…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作業は、ビクトリア州政府の運用インフラストラクチャサポートとオーストラリア政府国家保健医療研究評議会(NHMRC)IRIISSを通じて可能になりました。この作業は、モナッシュ大学医学部、看護、健康科学プラットフォームへのアクセス助成金によってサポートされました A.L.W.(Winship-PAG18-0343)モナッシュ生殖サービスプラットフォームにアクセスするため。A.L.W.は、オーストラリア研究評議会(ARC)からのDECRA資金DE21010037によってサポートされています。JNHとLRAは、オーストラリア政府の研究トレーニングプログラム奨学金によってサポートされています。LRAは、モナッシュ大学院優秀奨学金によってサポートされています。KJHは、ARCフューチャーフェローシップFT190100265によってサポートされています。

Materials

ALZET 1002 mini osmotic pumps BioScientifica 1002 Delivers 0.25 µL/h for 14 days. Use for section 7 (Experimental procedure – Embryo transfer).
ALZET 1003D mini osmotic pumps BioScientifica 1003D Delivers 1 µL/h for 14 days. Use for section 8 (Experimental procedure – Artificial decidualization).
ALZET Reflex 7 mm clips BioScientifica 0009971 Either Reflex clips or Michel clips can be used for wound closure, depending on preference
ALZET Reflex clip applicator BioScientifica 0009974 Either Reflex clips or Michel clips can be used for wound closure, depending on preference
ALZET Reflex clip remover BioScientifica 0009976 Either Reflex clips or Michel clips can be used for wound closure, depending on preference
Bupivicaine injection Pfizer NA Stock 0.5%. Use at 0.05% in saline
Estradiol Sigma E8875
Meloxicam Ilium NA Active constituent 0.5 mg/mL. Use 3.5 mL per 200 mL cage bottle, or as your institutions vet prescribes.
Michel clips Daniels NS-000242
Multi purpose sealant Dow Corning 732
Non-surgical embryo transfer (NSET) device ParaTechs 60010 Contains 6 mm speculum. Single use only.
Progesterone Sigma P0130 Soluble in ethanol. Use for  section 3 (Hormone preparation – subcutaneous injection) and  section 4 (Hormone preparation – slow-release pellets)
Progesterone Sigma P7556 Soluble in water. Use for section 5 (Hormone preparation – osmotic mini pumps)
Refresh eye ointment Allergan NA 42.5% w/v liquid paraffin, 57.3% w/v soft white paraffin
Rimadyl Carprofen Zoetis NA Stock 50 mg/mL. Use at 5 mg/kg
Rubber tubing Dow Corning 508-008 Washed in 100% ethanol and cut into 1 cm pieces. Inside diameter 1.57 mm ±  0.23 mm; outside diamater 3.18 mm ± 0.23 mm; wall 0.81 mm.
Sesame oil Sigma S3547
Sofsilk Silk sutures size 3-0 Covidien GS-832

参考文献

  1. Szamatowicz, M. Assisted reproductive technology in reproductive medicine – Possibilities and limitations. Ginekologia Polska. 87 (12), 820-823 (2016).
  2. Evans, J., et al. Fertile ground: Human endometrial programming and lessons in health and disease. Nature Reviews. Endocrinology. 12 (11), 654-667 (2016).
  3. Norwitz, E. R., Schust, D. J., Fisher, S. J. Implantation and the survival of early pregnancy. The New England Journal of Medicine. 345 (19), 1400-1408 (2001).
  4. Zinaman, M. J., Clegg, E. D., Brown, C. C., O’Connor, J., Selevan, S. G. Estimates of human fertility and pregnancy loss. Fertility & Sterility. 65 (3), 503-509 (1996).
  5. Kupka, M. S., et al. Assisted reproductive technology in Europe, 2010: Results generated from European registers by ESHRE†. Human Reproduction. 29 (10), 2099-2113 (2014).
  6. Gleicher, N., Kushnir, V. A., Barad, D. H. Worldwide decline of IVF birth rates and its probable causes. Human Reproduction Open. 2019 (3), (2019).
  7. Diaz-Gimeno, P., et al. A genomic diagnostic tool for human endometrial receptivity based on the transcriptomic signature. Fertility & Sterility. 95 (1), 50-60 (2011).
  8. Amin, J., et al. Personalized embryo transfer outcomes in recurrent implantation failure patients following endometrial receptivity array with pre-implantation genetic testing. Cureus. 14 (6), e26248 (2022).
  9. Patel, J. A., Patel, A. J., Banker, J. M., Shah, S. I., Banker, M. R. Personalized embryo transfer helps in improving in vitro fertilization/ICSI outcomes in patients with recurrent implantation failure. Journal of Human Reproductive Sciences. 12 (1), 59-66 (2019).
  10. Khan, K. N., et al. Biological differences between functionalis and basalis endometria in women with and without adenomyosis. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 203, 49-55 (2016).
  11. Richards, J. S., Ren, Y. A., Candelaria, N., Adams, J. E., Rajkovic, A. Ovarian follicular theca cell recruitment, differentiation, and impact on fertility: 2017 update. Endocrine Reviews. 39 (1), 1-20 (2018).
  12. Corciulo, C., et al. Pulsed administration for physiological estrogen replacement in mice. F1000Research. 10, 809 (2021).
  13. Greaves, E., et al. A novel mouse model of endometriosis mimics human phenotype and reveals insights into the inflammatory contribution of shed endometrium. The American Journal of Pathology. 184 (7), 1930-1939 (2014).
  14. Griffiths, M. J., Alesi, L. R., Winship, A. L., Hutt, K. J. Development of an embryo transfer model to study uterine contributions to pregnancy in vivo in mice. Reproduction & Fertility. 3 (1), 10-18 (2022).
  15. Cousins, F. L., et al. Evidence from a mouse model that epithelial cell migration and mesenchymal-epithelial transition contribute to rapid restoration of uterine tissue integrity during menstruation. PLoS One. 9 (1), e86378 (2014).
  16. Cousins, F. L., et al. Androgens regulate scarless repair of the endometrial "wound" in a mouse model of menstruation. FASEB Journal. 30 (8), 2802-2811 (2016).
  17. Fullerton, P. T., Monsivais, D., Kommagani, R., Matzuk, M. M. Follistatin is critical for mouse uterine receptivity and decidualization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (24), E4772-E4781 (2017).
  18. Rowland, R. R., Reyes, E., Chukwuocha, R., Tokuda, S. Corticosteroid and immune responses of mice following mini-osmotic pump implantation. Immunopharmacology. 20 (3), 187-190 (1990).
  19. Barton, B. E., et al. Roles of steroid hormones in oviductal function. Reproduction. 159 (3), R125-R137 (2020).
  20. Lee, J. E., et al. Autophagy regulates embryonic survival during delayed implantation. Endocrinology. 152 (5), 2067-2075 (2011).
  21. Hamatani, T., et al. Global gene expression analysis identifies molecular pathways distinguishing blastocyst dormancy and activation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (28), 10326-10331 (2004).
  22. Cui, L., et al. Transcervical embryo transfer in mice. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 53 (3), 228-231 (2014).

Play Video

記事を引用
Griffiths, M. J., Higgins, J. N., Cousins, F. L., Alesi, L. R., Winship, A. L., Hutt, K. J. Methods for Studying Uterine Contributions to Pregnancy Establishment in an Ovariectomized Mouse Model. J. Vis. Exp. (194), e64763, doi:10.3791/64763 (2023).

View Video