Hier beschreiben wir ein Protokoll zur Gewinnung von Rohgiftextrakt aus Seeanemone und zum Nachweis seiner hämolytischen und Phospholipase-Aktivität.
Die Zusammensetzung des Seeanemonengifts umfasst Polypeptid- und Nichtproteinmoleküle. Zytolytische Komponenten haben ein hohes biotechnologisches und biomedizinisches Potenzial für die Entwicklung neuer molekularer Werkzeuge. Seeanemonengift lokalisiert sich in Drüsenzellen aus Ektoderm und subzellulären Strukturen, die Nematozysten genannt werden, die beide im gesamten Meeresanemonenkörper verteilt sind. Diese Eigenschaft bringt Herausforderungen mit sich, da die Zellen und die Nematozyste lysiert werden müssen, um die Giftkomponenten mit anderen ungiftigen Molekülen freizusetzen. Daher wird das Gift zunächst aus einem Rohextrakt (Mischung aus verschiedenen und vielfältigen Molekülen und Gewebeablagerungen) gewonnen. Der nächste Schritt besteht darin, Polypeptide mit spezifischen Bioaktivitäten nachzuweisen. Hier beschreiben wir eine effiziente Strategie zur Gewinnung des Ozeananemonen-Rohölextrakts und des Bioassays, um das Vorhandensein von Cytolysinen zu identifizieren. Der erste Schritt beinhaltet kostengünstige und unkomplizierte Techniken (Rühr- und Frost-Tau-Zyklus) zur Freisetzung von Cytolysinen. Wir erhielten die höchste zytolytische Aktivität und das höchste Protein (~ 500 mg Protein aus 20 g Trockengewicht). Als nächstes wurde die Polypeptidkomplexität des Extrakts durch SDS-PAGE-Gel analysiert, das Proteine mit Molekulargewichten zwischen 10 kDa und 250 kDa nachweist. Im hämolytischen Assay verwendeten wir rote Blutkörperchen von Schafen und bestimmten HU50 (11,1 ± 0,3 μg/ml). Im Gegensatz dazu wurde das Vorhandensein von Phospholipasen im Rohextrakt unter Verwendung von Eigelb als Substrat in einem festen Medium mit Agarose bestimmt. Insgesamt verwendet diese Studie ein effizientes und kostengünstiges Protokoll zur Herstellung des Rohextrakts und wendet replizierbare Bioassays an, um Cytolysine, Moleküle mit biotechnologischen und biomedizinischen Interessen, zu identifizieren.
Meerestiere sind eine reiche Quelle biologisch aktiver Verbindungen. In den letzten Jahrzehnten hat die Zusammensetzung des Seeanemonengifts wissenschaftliche Aufmerksamkeit erregt, da es eine Vielzahl von Polypeptiden mit hämolytischer, zytotoxischer, enzymatischer (Phospholipase, Protease, Chitinase) und neurotoxischer Aktivität und hemmenden Wirkungen auf die proteolytische Aktivitätumfasst 1. Darüber hinaus sind diese Polypeptide potenzielle Quellen für die Entwicklung molekularer Werkzeuge im biotechnologischen und therapeutischen Einsatz 2,3.
Es gibt nur wenige Berichte über Seeanemonengift und seine molekularen Komponenten aufgrund der Komplexität der Gewinnung des Giftes, sogar der Isolierung und Charakterisierung von Toxinen. Die in den Berichten verwendeten Extraktionsmethoden beinhalteten die Lyse und Entleerung des Inhalts von Zellen, die mit der Giftproduktion zusammenhängen und nicht damit zusammenhängen1.
Ein besonderes Merkmal bei allen Nesseltieren ist das Fehlen eines Systems zur Produktion und Freisetzung des Giftes, das in einer einzigen anatomischen Region zentralisiert ist. Stattdessen sind die Nematozysten Strukturen, die das Gift 4,5 halten. Andere Arten von Zellen, sogenannte epidermale Drüsenzellen, sezernieren ebenfalls Toxine und sind auch im ganzen Körper der Seeanemonenverteilt 6.
Die erste und wichtigste Herausforderung bei der Gewinnung des Giftes ist die Erzeugung eines Extrakts mit ausreichender Manipulation in nachfolgenden Prozessen, ohne die Inaktivierung oder den Abbau von labilen Proteinen. Als nächstes müssen die Zellen lysiert werden, und die Komponenten – in diesem Fall Polypeptide – müssen effizient und schnell extrahiert werden, wobei Proteolyse und Hydrolyse vermieden werden, während andere zelluläre Komponenten eliminiertwerden 7.
Verschiedene Methoden werden verwendet, um den Rohextrakt einer Seeanemone zu erhalten; Einige beinhalten das Opfern des Organismus, während andere es erlauben, ihn am Leben zu erhalten. Methoden, die die Verwendung des gesamten Körpers des Organismus implizieren, ermöglichen die Freisetzung der meisten Toxine aus dem Gift8, verglichen mit Methoden, die Organismen am Leben erhalten, die nur einige Bestandteile des Giftesextrahieren 9. Die Herstellung eines Extrakts erfordert die Bewertung des Vorhandenseins und der Wirksamkeit einer Substanz von Interesse durch einen spezifischen Bioassay, der Strategien zur Beobachtung der pharmakologischen Wirkungen durch In-vivo- oder In-vitro-Methoden 10 umfasst.
Seeanemonengift enthält zytolytische Polypeptide, porenbildende Toxine (PFTs)11 und Phospholipasen12; Diese Moleküle sind Modelle bei der Untersuchung der Protein-Lipid-Interaktion, molekulare Werkzeuge in der Krebstherapie und Biosensoren auf der Grundlage von Nanopore3. Die Klassifizierung von Seeanemonen-PFTs erfolgt nach ihrer Größe oder ihrem Molekulargewicht, von 5 kDa bis 80 kDa. Das 20 kDa PFT, das am meisten untersuchte und als Actinoporine11 bekannte PFT, ist von besonderem Interesse wegen seines biomedizinischen Potenzials bei der Entwicklung molekularer Werkzeuge für mögliche Anwendungen wie krebshemmende, antimikrobielle und nanoporenbasierte Biosensoren. Ein anderes Cytolysin, einschließlich Phospholipasen, insbesondere Phospholipase A2 (PLA2)13, setzt eine Fettsäure frei und hydrolysiert Phospholipide, wodurch die Zellmembran destabilisiert wird. Aufgrund dieses Wirkmechanismus verspricht PLA2 ein wesentliches Modell für die Erforschung und Anwendung bei entzündlichen Erkrankungen zu sein. Es könnte als Modell für Untersuchungen des Lipidverhaltens in der Zellmembrandienen 14.
Hier beschreiben wir ein effizientes Protokoll zur Gewinnung des Rohölextrakts aus der Seeanemone Anthopleura dowii Verrill, 1869, und zum Nachweis von Hämolysinen und Phospholipasen. Beide sind relevante Toxine, die als Vorlage für die Entwicklung neuer molekularer Werkzeuge verwendet werden könnten.
Die hohe Nachfrage nach neuen Verbindungen mit Anwendungen in verschiedenen Bereichen der Wissenschaft und Industrie hat zur Erforschung von Gift geführt. Venom stellt eine reiche Quelle von Molekülen dar, die als Vorlage für die Generierung neuer molekularer Werkzeuge dient. Die Komplexität dieser Gifte erfordert jedoch die Implementierung und Kombination verschiedener Methoden, um sie zu erhalten und zu untersuchen.
Hier zeigen wir eine Methode zur Gewinnung und Analyse des Giftes der <e…
The authors have nothing to disclose.
Diese Arbeit wurde von Programa de Apoyo a Proyectos de Investigación e Innovación Tecnológica (PAPIIT) mit der Fördernummer IT200819 unterstützt. Die Autoren danken Tom Musselman, Rock Paper Editing, LLC, für die Überprüfung der englischen Grammatik dieses Manuskripts; und die technische Hilfe von Samanta Jiménez (CICESE, Ensenada) und Juan Manuel Barbosa Castillo (Instituto de Fisiología Celular, UNAM). Wir danken auch Dr. Augusto César Lizarazo Chaparro (CEPIPSA) für die Gewinnung von Schafblut. Wir danken insbesondere Dr. José Saniger Blesa, ICAT-UNAM, für die Einrichtungen in seinem Labor für die Videoaufzeichnung.
15 mL conical centrifuge tube | Corning | 430766 | |
2-Bromophenol blue | Sigma | B75808 | |
2-mercaptoetanol | Sigma-Aldrich | M6250-100ML | |
50 mL conical centrifuge tubes | Corning | 430828 | |
Acetic Acid Glacial | J.T. Baker | 9515-03 | |
Acrylamide | Promega | V3115 | |
Agarose | Promega | V3125 | |
Bisacrylamide | Promega | V3143 | |
Bovine Serum Albumin Fraction V | Sigma | A3059-100G | |
Bradford Protein Assays | Bio-Rad | 5000006 | |
Calcium chloride | Sigma-Aldrich | C3306 | |
Cell culture plates 96 well, V-bottom | Corning | 3894 | |
Centrifuge | Eppendorf | 5804R | |
Centrifuge tubes | Corning | CLS430829 | |
ChemiDoc MP system | Bio-Rad | 1708280 | |
Citric acid | Sigma-Aldrich | 251275 | |
Clear flat.bottom 96-Well Plates | Thermo Scientific | 3855 | |
Coomassie Brilliant Blue G-250 | Bio-Rad | #1610406 | |
Coomassie brilliant blue R-250 | Bio-Rad | 1610400 | |
Dextrose | J.T. Baker | 1916-01 | |
Ductless Enclosure | Labconco | Vertical | https://imagej.nih.gov/ij ImageJ 1.53c |
Gel Doc EZ | Bio Rad. | Gel Documentation System | |
Glycerol | Sigma-Aldrich | G5516-4L | |
Hemocytometer | Marienfeld | 650030 | |
ImageJ (Software) | NIH, USA | Version 1.53c | |
Incubator 211 | Labnet | I5211 DS | |
Methanol | J.T. Baker | 9049-03 | |
Mini-PROTEAN tetra cell | Bio-Rad | 1658000EDU | |
Na2HPO4 | J.T. Baker | 3824-01 | |
NaCl | J.T. Baker | 3624-01 | |
NaH2PO4.H2O | J.T. Baker | 3818-05 | |
Origin software | version 9 | To design the plot with sigmoidal adjustments | |
Petridish | Falcon | 351007 | |
Pipetman kit | Gilson | F167380 | |
Precast mini gel | BioRad | 1658004 | |
Prestained Protein Ladder | Thermo Scientific | 26620 | |
Protease Inhibitor Cocktail | Roche | 11836153001 | |
Protein Assay Dye Reagent Concentrate | Bio-Rad | 5000006 | |
Rhodamine 6G | Sigma-Aldrich | 252433 | |
SDS | Sigma-Aldrich | L4509 | |
Sodium citrate dihydrate | JT Baker | 3646-01 | |
Spectrophotometer | THERMO SCIENTIFIC | G10S UV-VIS | |
Tris Base | Sigma-Aldrich | 77-86-1 | |
Volt Power Supply | Hoefer | PS300B |