概要

Standard-Membran-Fütterungstest zum Nachweis von Plasmodium falciparum-InfektionenAnopheles-Mückenvektoren

Published: May 12, 2022
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概要

Der Standard Membrane Feeding Assay (SMFA) gilt als Goldstandard für die Bewertung und Identifizierung potenzieller Malariamittel. Dieses künstliche Fütterungssystem wird verwendet, um Moskitos zu infizieren, um die Auswirkungen solcher Verbindungen auf die Intensität und Prävalenz des Parasiten Plasmodium falciparum weiter zu bewerten.

Abstract

Malaria ist nach wie vor eine der verheerendsten Krankheiten weltweit und bis heute ist die afrikanische Region für 94% aller Fälle weltweit verantwortlich. Diese parasitäre Krankheit erfordert einen Protozoenparasiten, einen Anopheles-Mückenvektor und einen Wirbeltierwirt. Die Gattung Anopheles umfasst mehr als 500 Arten, von denen 60 als Vektoren des Parasiten bekannt sind. Die Gattung Plasmodium parasite besteht aus 250 Arten, von denen 48 an der Übertragung von Krankheiten beteiligt sind. Darüber hinaus hat der Parasit Plasmodium falciparum in den letzten Jahren zu schätzungsweise 99,7% der Malariafälle in Afrika südlich der Sahara beigetragen.

Gametozyten sind Teil des sexuellen Stadiums des Parasiten und werden von der weiblichen Mücke aufgenommen, wenn sie sich von einem infizierten menschlichen Wirt ernährt. Die weitere Entwicklung des Parasiten innerhalb der Mücke wird durch günstige Umweltbedingungen im Mittelbauch der Mücke verstärkt. Hier findet die Verschmelzung der weiblichen und männlichen Gameten statt, und die beweglichen Ookinetes entstehen. Die Ookinetes dringen in das Mitteldarmepithel der Mücke ein, und reife Ookinetes bilden Oozysten, die wiederum bewegliche Sporozoite produzieren. Diese Sporozoiten wandern zu den Speicheldrüsen der Mücke und werden injiziert, wenn eine Mücke eine Blutmahlzeit einnimmt.

Für die Wirkstoffforschung wurden Moskitos künstlich mit Gametozyten-infiziertem Blut im Standard-Membranfütterungstest (SMFA) infiziert. Um eine Infektion innerhalb der Mücke zu erkennen und/oder die Wirksamkeit von Malariamitteln zu beurteilen, wurden die Mitteleingeweide der weiblichen Moskitos nach der Infektion entfernt und mit Mercurochrom angefärbt. Diese Methode wurde verwendet, um die visuelle Erkennung von Oozysten unter dem Mikroskop für die genaue Bestimmung der Oozystenprävalenz und -intensität zu verbessern.

Introduction

Malaria, bekannt als eine der zerstörerischsten Krankheiten weltweit, stellt immer noch eine große Bedrohung für mehrere Länder dar – insbesondere für diejenigen in der afrikanischen Region – und trägt zu etwa 95% der Fälle weltweit bei1. Diese Krankheit wird durch einen Protozoenparasiten verursacht und zusammen mit seinem Anopheles-Mückenvektor können diese Täter dem menschlichen Wirt großen Schaden zufügen2. Genauer gesagt ist die Falciparum-Art der Gattung Plasmodium parasite für schätzungsweise 99% der Malariafälle in Afrika südlich der Saharaverantwortlich 1. Darüber hinaus könnten mehrere wichtige Anopheles-Mückenvektoren (einschließlich An. gambiae Giles, An. arabiensis Patton, An. coluzzii Coetzee & Wilkerson sp.n. und An. funestus Giles) für mehr als 95% der weltweiten Parasitenübertragung verantwortlich gemacht werden 3,4,5,6,7,8 . Damit die ideale Parasiten-Vektor-Gesellschaft hergestellt werden kann, sollte der Moskitovektor anfällig für den Parasiten sein und in der Lage sein, ihn zu übertragen9. Darüber hinaus sollten sowohl der Vektor als auch der Parasit physische Barrieren überwinden, um die perfekte infektiöse Kombination zu bilden – der Moskitovektor sollte in der Lage sein, die Parasitenentwicklung aufrechtzuerhalten, und der Parasit sollte die Fähigkeit haben, die Abwehrmechanismen des Wirts zu überwinden10,11.

Gametozyten, das Sexualstadium des Parasiten P. falciparum, spielen eine entscheidende Rolle bei der Verbindung der Vektor- und Parasitenpartner12. Die sexuelle Entwicklung findet in vivo statt, und die Gametozytogenese beschreibt den Prozess der Differenzierung reifer Gametozyten in bewegliche männliche Mikrogameten und weibliche Makrogameten13. Ein weiterer Prozess, der innerhalb der Mücke stattfindet, ist die Exflagellation – der Prozess, bei dem sich der männliche Gametozyt in Gameten verwandelt und aus den roten Blutkörperchen austritt, die während einer Blutmahlzeit aufgenommen werden11. Es wird ferner vorgeschlagen, dass der Exflagellationsprozess durch eine günstige Veränderung der Umgebung des Mückenmitteldarms verstärkt wird14. Nach der Exflagellation wird durch die Verschmelzung der männlichen und weiblichen Gameten eine Zygote gebildet13. Aus der Zygote entsteht eine bewegliche Ookinete und bewegt sich von der Blutmahlzeit zum Epithel des Mückenmitteldarms13. Hier reift die Ookinete heran und es bildet sich eine Oozyste, die wiederum bewegliche Sporozoiten13,15 produziert. Die Sporozoiten wandern dann zu den Speicheldrüsen der Mücken, und wenn die Mücke eine Blutmahlzeit von ihrem Wirt nimmt, werden diese Sporozoiten in den Blutkreislauf des Wirts injiziert15.

Interventionen zur Malariabekämpfung, die Vektorkontrollstrategien und den Einsatz wirksamer Malariamedikamente kombinieren, sind bei der Bekämpfung dieser Krankheit von entscheidender Bedeutung geworden15. Mit zunehmender Resistenz gegen Parasiten und Moskitos steigt die Dringlichkeit der Identifizierung neuartiger Malariamittel16. Daher ist die in vivo Bewertung von transmissionsblockierenden Verbindungen wichtig16. Nach der Entwicklung solcher wirksamen übertragungsblockierenden Medikamente wurde das SMFA verwendet, um zu beurteilen, ob diese Verbindungen die sexuelle Entwicklung von P. falciparum in der Anopheles-Mücke hemmen 17,18,19. Dieser Assay hat seit den 1970-1980er Jahren Anerkennung als Goldstandard für die Bewertung der Übertragungsblockierung20,21 erlangt. Dieser Assay bietet eine billigere Alternative als andere Assays wie RT-qPCR, die spezielle Ausrüstung erfordern. Darüber hinaus werden keine Patienten benötigt, um die Experimente durchzuführen. Dieser Assay beinhaltet auch die Bereitstellung von Gametozyten-induziertem Blut an weibliche Moskitos, die dann seziert werden, um zu beurteilen, ob eine Oozystenentwicklung vorliegt21. Dies ermöglicht die Gametozytenquantifizierung und den Nachweis deformierter Oozysten aufgrund der Verbindungen22. Damit eine Verbindung als wirksam eingestuft werden kann, müssen die Prävalenz (der Anteil der Moskitos, die mindestens eine Oozyste im Mitteldarm beherbergen) und die Anzahl der Oozysten (Intensität) im Mückenmitteldarm bewertet werden, um die Infektionshemmung zu beurteilen 17,21,22.

Protocol

Abbildung 1 zeigt das Protokoll. Die Ethikkommission für Gesundheitswissenschaften der Universität Pretoria (506/2018) hat eine ethische Freigabe für die Entnahme und Verwendung von menschlichem Blut erhalten. 1. Gametozytenkultur HINWEIS: Vor der Einrichtung des SMFA wurde an der Universität von Pretoria eine Gametozytenkultur vorbereitet (siehe Reader et al.22 für das vollständige Protokoll…

Representative Results

Die Gesamtzahl der sezierten Kontrollproben betrug 47, mit einer durchschnittlichen Prävalenz von 89% und einer Intensität von 9,5 Oozysten pro Mitteldarm (Tabelle 1, wie zuvor veröffentlicht22). Für die Verbindung MMV1581558 erreichte die Stichprobengröße insgesamt 42 Proben mit einer Oozystenprävalenz von 36% und einer durchschnittlichen Intensität von 1,5 Oozysten. Dies zeigt eine Reduktion der Oozystenprävalenz um 58% und eine TRA von 82% über alle drei biologischen …

Discussion

Damit dieses Protokoll erfolgreich ausgeführt werden kann, sollte jedem Schritt Aufmerksamkeit geschenkt werden, auch wenn dies ein langwieriger und mühsamer Prozess sein kann. Einer der wichtigsten Schritte besteht darin, sicherzustellen, dass die Gametozytenkultur von guter Qualität ist und dass sie aus reifen Gametozyten mit dem richtigen Verhältnis von Mann zu Frau besteht, bevor die SMFA23,24 beginnt. Während der SMFA ist es auch wichtig, die Gametozyte…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Autoren danken Prof. Lyn-Mari Birkholtz und Dr. Janette Reader vom Department of Biochemistry, Genetics and Microbiology, Institute for Sustainable Malaria Control, an der University of Pretoria, für die Kultivierung und Bereitstellung der Gametozytenkultur. Der Parasitenstamm wurde von der letztgenannten Abteilung bezogen (nicht Teil dieser Publikation). das Department of Science and Innovation (DSI) und die National Research Foundation (NRF); South African Research Chairs Initiative (UID 64763 an LK und UID 84627 an LMB); die NRF Communities of Practice (UID 110666 zu LMB und LK); und die Strategic Health Innovation Partnerships (SHIP) des South African Medical Research Council werden ebenfalls für Mittel der DSI anerkannt.

Materials

Bovine intestine/ Butchery
Compound MMV1581558 MMV Pandemic response box
Dissecting needles WRIM Custom made
falcon tube Lasec
Glass feeders Glastechniek Peter Coelen B.V.
Graphpad Prism (8.3.0) Graphpad
Mercurochrome Merck (Sigma-Aldrich) 129-16-8
Microscope slides Merch (Sigma-Aldrich) S8902
Parafilm Cleansafe
PBS tablets ThermoFisher Scientific BP2944
Perspex biosafety cabinet Wits University Made by the contractors at Wits
Plastic cups (350 mL) Plastic Land

参考文献

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記事を引用
Erlank, E., Venter, N., Koekemoer, L. L. Standard Membrane Feeding Assay for the Detection of Plasmodium falciparum Infection in Anopheles Mosquito Vectors. J. Vis. Exp. (183), e63546, doi:10.3791/63546 (2022).

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