Das Protokoll beschreibt die Herstellung von CMAC-Säulen (Cell Membrane Affinity Chromatography) mit immobilisierten Zellmembranfragmenten, die funktionelle Transmembran-Tropomyosin-Kinase-Rezeptor-B-Proteine enthalten. Die Verwendung von CMAC-Säulen bei der Identifizierung spezialisierter Pflanzenmetaboliten, die mit diesen Rezeptoren interagieren und in komplexen natürlichen Mischungen vorhanden sind, wird ebenfalls erläutert.
Chemikalien, die von Pflanzen, Pilzen, Bakterien und wirbellosen Meerestieren synthetisiert werden, waren eine reiche Quelle für neue Drogen und Blei. Medikamente wie Statine, Penicillin, Paclitaxel, Rapamycin oder Artemisinin, die üblicherweise in der medizinischen Praxis verwendet werden, wurden zuerst identifiziert und aus Naturprodukten isoliert. Die Identifizierung und Isolierung von biologisch aktiven spezialisierten Metaboliten aus natürlichen Quellen ist jedoch ein herausfordernder und zeitaufwendiger Prozess. Traditionell werden einzelne Metaboliten nach der Extraktion von Biomasse aus komplexen Gemischen isoliert und gereinigt. Anschließend werden die isolierten Moleküle in funktionellen Assays getestet, um ihre biologische Aktivität zu überprüfen. Hier stellen wir die Verwendung von CMAC-Säulen (Cellular Membrane Affinity Chromatography) vor, um biologisch aktive Verbindungen direkt aus komplexen Gemischen zu identifizieren. CMAC-Säulen ermöglichen die Identifizierung von Verbindungen, die mit immobilisierten funktionellen Transmembranproteinen (TMPs) interagieren, die in ihre native Phospholipid-Doppelschichtumgebung eingebettet sind. Dies ist ein gezielter Ansatz, der voraussetzt, den TMP zu kennen, dessen Aktivität man mit dem neu identifizierten niedermolekularen Wirkstoffkandidaten modulieren will. In diesem Protokoll stellen wir einen Ansatz zur Herstellung von CMAC-Säulen mit immobilisiertem Tropomyosin-Kinase-Rezeptor B (TrkB) vor, der sich zu einem brauchbaren Ziel für die Wirkstoffforschung bei zahlreichen Erkrankungen des Nervensystems entwickelt hat. In diesem Artikel stellen wir ein detailliertes Protokoll zur Montage der CMAC-Säule mit immobilisierten TrkB-Rezeptoren unter Verwendung von Neuroblastom-Zelllinien zur Überexpression von TrkB-Rezeptoren vor. Wir stellen ferner den Ansatz vor, die Funktionalität der Säule und ihre Verwendung bei der Identifizierung spezialisierter Pflanzenmetaboliten zu untersuchen, die mit TrkB-Rezeptoren interagieren.
Botanische Mischungen sind reich an pharmakologisch aktiven Verbindungen1 und dienen als gute Quelle für die Identifizierung neuer Arzneimittel-Hits und -Leads 2,3,4,5. Die Entdeckung neuer Medikamente aus Naturprodukten war ein fruchtbarer Ansatz, und viele derzeit zugelassene Medikamente stammen aus Verbindungen, die zuerst in der Natur identifiziert wurden. Die chemische Vielfalt von Naturstoffen ist schwer von künstlichen Bibliotheken chemisch synthetisierter Moleküle zu erreichen. Viele natürliche Verbindungen interagieren mit und modulieren menschliche Proteinziele und können als evolutionär optimierte arzneimittelähnliche Molekülebetrachtet werden 6. Diese Naturstoffe eignen sich besonders gut für die Identifizierung von Wirkstoff-Blei zur Verwendung bei neurologischen Erkrankungen6. Zwei der derzeit von der FDA zugelassenen Medikamente zur Behandlung der Alzheimer-Krankheit (AD) stammen aus natürlichen Alkaloiden, nämlich: Galantamin und Rivastigmin (ein Derivat von Physostigmin)6. L-DOPA, derzeit das am häufigsten verschriebene Medikament gegen die Parkinson-Krankheit, wurde zuerst aus der breiten Bohne (Vicia faba L.) identifiziert. 7. Pergolid und Lisurid, dopaminerge Rezeptoragonisten sind die Derivate natürlicher Mutterkornalkaloide aus dem parasitären Pilz Claviceps purpurea8. Reserpine, ein aus der indischen Schlangenwurzel (Rauvolfia serpentina (L.) Benth. ex Kurz) isoliertes Alkaloid, war eines der ersten Antipsychotika9. In jüngster Zeit wurden eine fehlregulierte Immunantwort und eine systemische Entzündung mit der Entwicklung zahlreicher neurologischer Erkrankungen wie schweren depressiven Störungen oder neurodegenerativen Erkrankungen in Verbindung gebracht10. Es wurde festgestellt, dass eine pflanzliche Ernährung zusammen mit anderen Lebensstilinterventionen die kognitiven und funktionellen Fähigkeiten bei älteren Menschen verbessert 11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21 . Es wurde festgestellt, dass bestimmte elektrophile Moleküle, die zu Triterpenen und Polyphenolen gehören, Entzündungsreaktionen sowohl in vitro- als auch in vivo-Modellen modulieren 12. Zum Beispiel stören natürliche Verbindungen, die α,β-ungesättigtes Carbonyl (z. B. Curcumin, Zimtaldehyd) oder Isothiocyanatgruppe (z. B. Sulforaphan) enthalten, die Toll-like-Rezeptor-4 (TLR4) -Dimerisierung, die die nachgeschaltete Synthese von proinflammatorischen Zytokinen in einer murinen Interleukin-3-abhängigen Pro-B-Zelllinie hemmt12,22 . Epidemiologische Beweise deuten stark darauf hin, dass diätetische Phytochemikalien, die in komplexen Lebensmittelmatrizen vorhanden sind, auch eine brauchbare Quelle für neue Arzneimittelleitungen darstellenkönnen 6.
Eines der Haupthindernisse bei der Identifizierung biologisch aktiver Moleküle in Pflanzenextrakten, einschließlich pflanzlicher Lebensmittel, ist die Komplexität der untersuchten Proben. Traditionell werden die einzelnen Verbindungen isoliert, gereinigt und anschließend auf biologische Aktivität getestet. Dieser Ansatz führt in der Regel zur Identifizierung der am häufigsten vorkommenden und gut charakterisierten Verbindungen. Phänotypische Wirkstoffforschungsansätze ohne definiertes molekulares Ziel beruhen auf der bio-geführten Fraktionierung komplexer Gemische23. Bei diesem Ansatz wird ein Extrakt in weniger komplexe Unterfraktionen fraktioniert, die anschließend in phänotypischen Assays getestet werden. Die Isolierung und Reinigung von Wirkstoffen wird durch die im Assay verifizierte biologische Aktivität geleitet. Die Kenntnis der Identität eines spezifizierten Wirkstoffziels kann die Identifizierung pharmakologisch aktiver Verbindungen, die in komplexen Gemischen vorhanden sind, erheblich beschleunigen. Diese Ansätze basieren in der Regel auf der Immobilisierung des molekularen Ziels, beispielsweise eines Enzyms, auf einer festen Oberfläche, wie magnetischen Perlen23. Die immobilisierten Targets werden anschließend in den Screening-Experimenten verwendet, was zur Isolierung von Verbindungen führt, die mit dem Target interagieren. Während dieser Ansatz bei der Identifizierung von Verbindungen, die auf zytosolische Proteine abzielen, umfassend verwendet wurde, wurde er bei der Identifizierung von Chemikalien, die mit Transmembranproteinen (TMPs) interagieren, seltener angewendet23. Eine zusätzliche Herausforderung bei der Immobilisierung von TMPs ergibt sich aus der Tatsache, dass die Aktivität des Proteins von seiner Wechselwirkung mit Zellmembranphospholipiden und anderen Molekülen in der Doppelschicht wie Cholesterin23,24 abhängt. Es ist wichtig, diese subtilen Wechselwirkungen zwischen Proteinen und ihrer nativen Phospholipid-Doppelschichtumgebung zu erhalten, wenn versucht wird, das Transmembranziel zu immobilisieren.
In der Zellmembranaffinitätschromatographie (CMAC) werden Zellmembranfragmente und nicht gereinigte Proteine auf den stationären Phasenpartikeln der künstlichen Membran (IAM)immobilisiert 23. Stationäre IAM-Phasen werden durch kovalente Bindung von Phosphatidylcholinanaloga an Siliciumdioxid hergestellt. In jüngster Zeit wurden neuartige Klassen von stationären IAM-Phasen entwickelt, in denen freie Amin- und Silanolgruppen endgekappt sind (IAM. PC. DD2-Partikel). Während der CMAC-Säulenvorbereitung werden Zellmembranfragmente durch Adsorption auf die Oberfläche von IAM-Partikeln immobilisiert.
CMAC-Säulen wurden bisher verwendet, um verschiedene Klassen von TMPs zu immobilisieren, einschließlich Ionenkanäle (z. B. Nikotinrezeptoren), GPCRs (z. B. Opioidrezeptoren), Proteintransporter (z. B. p-Glykoprotein) usw. 24. Die immobilisierten Proteintargets wurden bei der Charakterisierung der Pharmakodynamik (z. B. Dissoziationskonstante, Kd) oder der Bestimmung der Bindungskinetik (kon und koff) von niedermolekularen Liganden, die mit dem Ziel interagieren, sowie bei der Identifizierung potenzieller neuer Wirkstoff-Leads in komplexen Matrizen verwendet24 . Hier stellen wir die Herstellung von CMAC-Säulen mit dem immobilisierten Tropomyosin-Kinase-Rezeptor B (TrkB) vor, der sich als brauchbares Ziel für die Wirkstoffforschung bei zahlreichen Erkrankungen des Nervensystems herausgestellt hat.
Frühere Studien zeigten, dass die Aktivierung des vom Gehirn abgeleiteten neurotrophen Faktors (BDNF) / TrkB-Signalwegs mit der Verbesserung bestimmter neurologischer Erkrankungen wie AD oder schwerer depressiver Störungverbunden ist 25,26,27,28. Es wurde berichtet, dass BDNF-Spiegel und seine Rezeptor-TrkB-Expression bei AD abnehmen, und ähnliche Reduktionen beeinträchtigen die Hippocampus-Funktion in Tiermodellen von AD29. Verminderte BDNF-Spiegel wurden im Serum und im Gehirn von AD-Patienten berichtet 30,31,32. Es wurde festgestellt, dass Tau-Überexpression oder Hyperphosphorylierung die BDNF-Expression in primären Neuronen und AD-Tiermodellen herunterreguliert33,34,35. Darüber hinaus wurde berichtet, dass BDNF in vitro und in vivo36 schützende Wirkungen auf die β-Amyloid-induzierte Neurotoxizität hat. Es wurde gezeigt, dass die direkte BDNF-Verabreichung in das Rattengehirn das Lernen und das Gedächtnis bei kognitiv beeinträchtigten Tierenerhöht 37. BDNF/TrkB erwies sich als gültiges Ziel für die Linderung neurologischer und psychiatrischer Erkrankungen, einschließlich AD28,38. Die Ausrichtung auf den BDNF/TrkB-Signalweg für die Entwicklung von Therapien bei AD wird möglicherweise unser Verständnis der Krankheitverbessern 39. Leider kann BDNF selbst wegen seiner schlechten pharmakokinetischen Eigenschaften und Nebenwirkungen nicht als Behandlung verwendetwerden 40. Kleine Molekülaktivatoren von TrkB/BDNF-Signalwegen wurden als potenzielle TrkB-Liganden41,42,43 untersucht. Unter den getesteten niedermolekularen Agonisten wurde gezeigt, dass 7,8-Dihydroxyflavon (7,8-DHF) den BDNF / TrkB-Signalweg 41,44,45,46 aktiviert. Ein Derivat von 7,8-DHF (R13; 4-Oxo-2-phenyl-4H-chromen-7,8-diylbis(methylcarbamat)) wird derzeit als mögliches Medikament für AD47 in Betracht gezogen. Kürzlich wurde gezeigt, dass mehrere Antidepressiva direkt an TrkB binden und die BDNF-Signalgebung fördern, was die Bedeutung der Verfolgung von TrkB als gültiges Ziel zur Behandlung verschiedener neurologischer Erkrankungenweiter unterstreicht 48.
Das Protokoll beschreibt den Prozess der Zusammenstellung der funktionalen TrkB-Spalte und der TrkB-NULL-Negativkontrollsäule. Die Säulen werden mit einem bekannten Naturprodukt kleinmolekularer Liganden charakterisiert: 7,8-DHF. Darüber hinaus beschreiben wir den Prozess des Screenings komplexer Matrizen am Beispiel von Pflanzenextrakt zur Identifizierung von Verbindungen, die mit TrkB interagieren.
Die Identifizierung von Wirkstoffen, die in komplexen Mischungen spezialisierter Metaboliten vorhanden sind, ist eine sehr anspruchsvolle Aufgabe23. Traditionell werden einzelne Verbindungen isoliert und ihre Aktivität in verschiedenen Assays getestet. Dieser Ansatz ist zeitaufwendig und kostspielig und führt häufig zur Isolierung und Identifizierung der am häufigsten vorkommenden und gut charakterisierten Verbindungen23. Die derzeit verwendeten Hochdurchsatz-Screening…
The authors have nothing to disclose.
Z.C.A. wurde vom Scientific and Technological Research Council of Turkey (TUBITAK) 2219- International Postdoctoral Research Fellowship Program unterstützt. Die in dieser Veröffentlichung berichtete Forschung wurde vom National Center for Complementary and Integrative Medicine der National Institutes of Health unter der Preisnummer 1R41AT011716-01 unterstützt. Diese Arbeit wurde auch teilweise durch den American Society of Pharmacognosy Research Starter Grant, den Regis Technologies Grant an L.C. unterstützt. Der Inhalt liegt in der alleinigen Verantwortung der Autoren und stellt nicht unbedingt die offiziellen Ansichten der National Institutes of Health dar.
7-8 Dihydroxyflavone hydrate | Sigma-Aldrich | D5446-10 mg | ≥98% (HPLC) |
Adenosine 5'-triphosphate (ATP) disodium salt hydrate | Sigma-Aldrich | A2383-1 g | |
Ammonium acetate | VWR Chemicals BDH | BDH9204-500 g | |
BDNF antibody | Invitrogen | PA5-15198-400 μL | Primary antibody; 2 mg/mL of concentration |
Benzamidine hydrochloride hydrate | Sigma-Aldrich | B6506-25 g | |
Brain derived neurotrophic factor (BDNF) human | Sigma-Aldrich | B3795-10 μg | Recombinant, expressed in E. coli, lyophilized powder, suitable for cell culture |
Calcium chloride | VWR Analytical | BDH9224-1 kg | |
Cholic acid sodium salt | Alfa Aesar | J62050-100 g | |
Dounce homogenizer | VWR | 71000-516 | 40 mL, 285 mm (overall lenght), 32 x 140 mm (O.D. x H) |
Ethanol | Sigma-Aldrich | 493511 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | VWR Analytical | BDH-9232-500 g | |
Fetal bovine serum | Sigma-Aldrich | F2442-500 mL | sterile-filtered, suitable for cell culture |
G418 disulfate salt solution | Sigma-Aldrich | G8168-100 mL | 50 mg/mL in H2O, 0.1 μm filtered, suitable for cell culture |
Glycerol | VWR Life Science | E520-100 mL | |
Immobilized artificial membrane (IAM.PC.DD2) | Regis Technologies, Inc. | 1-771050-500 | |
Magnesium chloride hexahydrate | VWR Analytical | BDH9244-500 mL | |
Methanol | Sigma-Aldrich | 322425 | |
Nikon Plan Fluor | Nikon | Confocal laser scanning microscope | |
Normal goat serum (10%) | Life Technologies | 50197Z | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma-Aldrich | P4333-100 mL | |
Phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) | Thermo Scientific | 36978-5 g | |
Phosphate buffered saline (PBS) | VWR Life Science | K812-500 mL | 1x |
Potassium chloride | VWR Chemicals BDH | 0395-1 kg | |
Protease inhibitor cocktail | VWR Life Science Ambreso | M221-1 mL | Proteomics grade, containing 50 mM AEBSF, 30 µM aprotonin, 1 mM bestatin, 1 mM E-64 and 1 mM leupeptin |
RPMI-1640 medium | Sigma-Aldrich | R8758-500 mL | with L-glutamine and sodium bicarbonate, liquid, sterile-filtered, suitable for cell culture |
Secondary antibody goat anti-rabbit IgG (H+L) | Invitrogen Alexa Flour Plus 488 | A32731 | |
SH-SY5Y Neuroblastoma cell lines expressing Trk-B | Kerafast | ECP007 | |
SH-SY5Y Trk-NULL cell line | Kerafast | ECP005 | |
Snake skin dialysis tubing | Thermo Scientific | 88245 | 10K MWCO, 35 mm dry I.D. |
Sodium azide | Sigma-Aldrich | S2002 | |
Sodium chloride | BDH VWR Analytical | BDH9286-2.5 kg | |
Tricorn 5/20 column | GE Healthcare | 24-4064-08 | |
Tris-HCl | VWR Life Science | 0497-1 kg | |
Trypsin-EDTA solution | Sigma-Aldrich | T4049-500 mL | 0.25%, sterile-filtered, suitable for cell culture, 2.5 g porcine trypsin and 0.2 g EDTA |