概要

Cirugía y procesamiento de muestras para imágenes correlativas de la válvula pulmonar murina

Published: August 05, 2021
doi:

概要

Aquí, describimos un flujo de trabajo correlativo para la escisión, presurización, fijación e imágenes de la válvula pulmonar murina para determinar la conformación macróstica y las estructuras locales de la matriz extracelular.

Abstract

Las causas subyacentes de la enfermedad relacionada con las válvulas cardíacas (HVD) son esquivas. Los modelos animales murinos proporcionan una excelente herramienta para estudiar la HVD, sin embargo, la experiencia quirúrgica e instrumental requerida para cuantificar con precisión la estructura y la organización en múltiples escalas de longitud han atrofiado su avance. Este trabajo proporciona una descripción detallada de la disección murina, la tinción en bloque, el procesamiento de muestras y los procedimientos de imágenes correlativas para representar la válvula cardíaca en diferentes escalas de longitud. Se utilizó presión transvalvular hidrostática para controlar la heterogeneidad temporal mediante la fijación química de la conformación de la válvula cardíaca. Se utilizó la tomografía micro computarizada (μCT) para confirmar la geometría de la válvula cardíaca y proporcionar una referencia para el procesamiento de muestras aguas abajo necesario para la microscopía electrónica de barrido facial en bloque serie (SBF-SEM). Se tomaron y reconstruyeron imágenes SEM en serie de alta resolución de la matriz extracelular (ECM) para proporcionar una representación 3D local de su organización. Los métodos de imagen μCT y SBF-SEM se correlacionaron para superar la variación espacial a través de la válvula pulmonar. Aunque el trabajo presentado es exclusivamente sobre la válvula pulmonar, esta metodología podría adoptarse para describir la organización jerárquica en sistemas biológicos y es fundamental para la caracterización estructural a través de múltiples escalas de longitud.

Introduction

La válvula pulmonar (PV) sirve para asegurar el flujo sanguíneo unidireccional entre el ventrículo derecho y la arteria pulmonar. Las malformaciones de la válvula pulmonar se asocian con varias formas de cardiopatía congénita. El tratamiento actual para la enfermedad congénita de la válvula cardíaca (HVD) es la reparación valvular o el reemplazo de la válvula, que puede requerir múltiples cirugías invasivas a lo largo de la vida de un paciente1. Se ha aceptado ampliamente que la función de la válvula cardíaca se deriva de su estructura, a menudo conocida como el correlato estructura-función. Más específicamente, las propiedades geométricas y biomecánicas del corazón dictan su función. Las propiedades mecánicas, a su vez, están determinadas por la composición y organización del ECM. Mediante el desarrollo de un método para determinar las propiedades biomecánicas de las válvulas cardíacas murinas, se pueden utilizar modelos animales transgénicos para interrogar el papel de la ECM en la función y disfunción de las válvulas cardíacas2,3,4,5.

El modelo animal murino ha sido considerado durante mucho tiempo como el estándar para los estudios moleculares porque los modelos transgénicos están más fácilmente disponibles en ratones en comparación con otras especies. Los modelos transgénicos murinos proporcionan una plataforma versátil para la investigación de enfermedades relacionadas con las válvulas cardíacas6. Sin embargo, la experiencia quirúrgica y los requisitos de instrumentación para caracterizar tanto la geometría como la organización de ECM han sido un obstáculo importante en el progreso de la investigación de HVD. Los datos hstológicos en la literatura proporcionan una imagen del contenido de la matriz extracelular de la válvula cardíaca murina, pero solo en forma de imágenes 2D, y no pueden describir su arquitectura 3D7,8. Además, la válvula cardíaca es heterogénea tanto espacial como temporalmente, lo que dificulta sacar conclusiones a través de los experimentos con respecto a la organización de la ECM si el muestreo y la conformación no son fijos. Los métodos convencionales de caracterización 3D, como la resonancia magnética o la ecocardiografía 3D, no proporcionan la resolución necesaria para resolver los componentes de ecm9,10.

Este trabajo detalla un flujo de trabajo totalmente correlativo donde se abordó la heterogeneidad temporal debida al ciclo cardíaco fijando la conformación de la PV murina con presión transvalvular hidrostática. La heterogeneidad espacial se controló con precisión mediante el muestreo de regiones de interés y el registro de conjuntos de datos de diferentes modalidades de imagen, específicamente μCT y microscopía electrónica de barrido de cara de bloque serie, a través de diferentes escalas de longitud. Este método de exploración con μCT para guiar el muestreo aguas abajo se ha propuesto anteriormente, pero debido a que la válvula pulmonar exhibe variación temporal, se necesitaba un nivel adicional de control en el nivel quirúrgico11.

Los estudios in vivo que describen la biomecánica de la válvula cardíaca murina son escasos y, en cambio, se basan en modelos computacionales al describir el comportamiento de deformación. Es de vital importancia que los datos extracelulares locales en la escala de longitud nanométrica estén relacionados con la geometría y la ubicación de la válvula cardíaca. Esto, a su vez, proporciona distribuciones cuantificables y mapeadas espacialmente de proteínas ECM que contribuyen mecánicamente, que se pueden utilizar para reforzar los modelos biomecánicos existentes de válvulas cardíacas12,13,14.

Protocol

El uso de animales en este estudio fue de acuerdo con el comité institucional de cuidado y uso de animales del Nationwide Children’s Hospital bajo el protocolo AR13-00030. 1. Escisión de la válvula pulmonar Autoclave las herramientas necesarias para la disección del ratón. Esto incluye tijeras finas, micro pinzas, pinzas micro vasculares, pinzas de aplicación de pinzas, soportes para microagujas, tijeras de resorte y retractores. Aclimata a todos los ratones durante u…

Representative Results

La anastomosis de la arteria pulmonar al tubo de presurización se muestra en la Figura 1A. Después de la aplicación de presión hidrostática, el tronco pulmonar se distiende radialmente (Figura 1B) lo que indica que las valvas de la válvula pulmonar están en una configuración cerrada. La conformación de la válvula pulmonar se confirmó mediante μCT. En este caso, las valvas fueron coaptas (cerradas) y el anillo fue circular(Figura …

Discussion

La extirpación de los ventrículos sirve para dos propósitos. Primero, exponer el lado del ventrículo a la presión atmosférica, por lo que solo necesita aplicar una presión transvalvular desde el lado arterial de la válvula pulmonar para cerrar, y segundo, proporcionar una base estable para evitar la torsión del tronco pulmonar. Durante la presurización, el tronco pulmonar se distiende radial e inferiormente, haciéndolo propenso a torcerse, causando el colapso del tronco pulmonar. La precarga de la válvula pul…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo está respaldado, en parte, por las subvenciones R01HL139796 y R01HL128847 a CKB y RO1DE028297 y CBET1608058 para DWM.

Materials

25% glutaraldehyde (aq) EMS 16210 Primary fixative component
0.9% sodium chloride injection Hospira Inc. NDC 0409-4888-10
1 mL syringe BD 309659
10 mL syringe BD 309604
200 proof ethanol EMS 15055
22G needle BD 305156
3 mL syringe BD 309657
3-way stopcock Smiths Medical ASD, Inc. MX5311L
4% osmium tetroxide EMS 19150 Staining component
4% paraformaldehyde (aq) EMS 157-4-100 Primary fixative component
Absorbable hemostat Ethicon 1961
Acetone EMS 10012
Black polyamide monofilament suture, 10-0 AROSurgical instruments Corporation TI38402
Black polyamide monofilament suture, 6-0 AROSurgical instruments Corporation SN-1956
C57BL/6 mice Jackson Laboratories 664 Approximately 1 yo
Calcium chloride Sigma-Aldrich 10043-52-4
Clamp applying forcep FST 00072-14
Cotton tip applicators Fisher Scientific 23-400-118
DPBS Gibco 14190-144
Dumont #5 forcep FST 11251-20
Dumont #5/45 forceps FST 11251-35
Dumont #7 fine forcep FST 11274-20
Durcupan ACM resin EMS 14040 For embedding
Fine scissor FST 14028-10
Heliscan microCT Thermo Fisher Scientific Micro-CT
Ketamine hydrochloride injection Hospira Inc. NDC 0409-2053
L-aspartic acid Sigma-Aldrich 56-84-8 Staining component
Lead nitrate EMS 17900 Staining component
low-vacuum backscatter detector Thermo Fisher Scientific VSDBS SEM backscatter detector
Micro-adson forcep FST 11018-12
Millex-GP filter, 0.22 um, PES 33mm, non-sterile EMD Millipore SLGP033NS
Non-woven songes McKesson Corp. 94442000
Potassium hexacyanoferrate(II) trihydrate Sigma-Aldrich 14459-95-1 Staining component
Potassium hydroxide Sigma-Aldrich 1310-58-3
Pressure monitor line Smiths Medical ASD, Inc. MX562
Saline solution (sterile 0.9% sodium chloride) Hospira Inc. NDC 0409-0138-22
Size 3 BEEM capsule EMS 69910-01 Embedding container
Sodium cacodylate trihydrate Sigma-Aldrich 6131-99-3 Buffer
Solibri retractors FST 17000-04
Sputter, carbon and e-beam coater Leica EM ACE600 Gold coater
Surgical microscope Leica M80
Thiocarbohydrazide (TCH) EMS 21900 Staining component
Tish needle holder/forcep Micrins MI1540
Trimmer Wahl 9854-500
Uranyl acetate EMS 22400 Staining component
Volumescope scanning electron microscope Thermo Fisher Scientific VOLUMESCOPESEM Serial Block Face Scanning Electron Microscope
Xylazine sterile solution Akorn Inc. NADA# 139-236

参考文献

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記事を引用
Liu, Y., Lee, Y., Yi, T., Wu, K., Bouchet-Marquis, C., Chan, H., Breuer, C. K., McComb, D. W. Surgery and Sample Processing for Correlative Imaging of the Murine Pulmonary Valve. J. Vis. Exp. (174), e62581, doi:10.3791/62581 (2021).

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