这里描述的是光血栓中风模型,其中中风通过完整的头骨产生,在施用光敏染料后,使用激光照明诱导永久微血管闭塞。
在发达国家,中风是导致死亡和成人残疾的主要原因。尽管对新的治疗策略进行了广泛的研究,但中风患者的治疗选择仍然有限。因此,需要对病理生理途径进行更多的研究,如中风后炎症、血管生成、神经元可塑性和再生。鉴于 体外 模型无法重现大脑的复杂性,实验性中风模型对于分析和随后评估这些机制的新药靶点至关重要。此外,迫切需要为克服所谓的复制危机而为所有程序制定详细的标准化模型。作为免疫冲程研究财团的一项努力,描述了一个标准化的光血栓小鼠模型,该模型使用玫瑰孟加拉的腹内注射和561纳米激光照亮完好的头骨。该模型允许在没有侵入性手术的情况下将中风的效果分配给大脑的任何皮质区域:因此,使中风的研究在大脑的各个区域。在本视频中,演示了光血栓模型中中风感应的手术方法以及理论分析。
缺血性中风仍然是21世纪 发达国家的主要死因和成人残疾,2017年全球约有270万人死于缺血性中风。即使科学界作出巨大努力,也很少有治疗方法。此外,由于排除标准如此之高,许多患者无法获得这些已经有限的选择,因此迫切需要新的治疗方法来改善中风后的功能恢复。
考虑到 体外 模型无法复制大脑的复杂相互作用,动物模型对于临床前中风研究至关重要。老鼠是中风研究领域最常用的动物模型。这些小鼠模型大多旨在通过阻断中脑动脉(MCA)内的血流来诱导梗塞,因为大部分人类中风病变位于MCU区域2。虽然这些模型可以更好地回顾人类中风病变,但它们涉及高梗塞体积变异性的抽搐手术。
自从罗森布卢姆和艾尔-萨班于1977年提出光血栓模型3,后来该模型应用于老鼠沃森等人,它已成为广泛应用于缺血性中风研究5,6。光血栓中风模型诱导局部和定义的皮质梗塞,由于以前注入血液中的光敏染料的光活化。这会导致暴露在光线下的船只局部血栓。简言之,在接触注射光敏染料的光线后,诱发内皮细胞膜局部氧化损伤,导致血小板聚集和血栓形成,随后局部扰乱脑血流7。
这种技术的主要优点在于其执行的简单性和将病变引向所需区域的可能性。与其他实验性中风模型不同,执行光血栓中风模型需要少量的手术专业知识,因为病变是通过对完整头骨的照明诱导的。此外,划定良好的边界(图2A和图5B)和灵活性诱导病变到特定的大脑区域,可以促进研究细胞反应内缺血或完整的皮质区域8。由于这些原因,这种方法适用于皮质可塑性细胞和分子机制的研究。
在过去几十年中,人们越来越担心研究小组之间缺乏可复制性,这引发了所谓的复制危机。在2015年10月协调了第一个临床前随机对照多中心试验研究后,一个改进临床前研究的拟议工具11、12、13被证实,独立实验室临床前研究不重复的一个原因是实验性中风模型和结果参数缺乏足够的标准化。因此,当免疫中风联合体成立(https://immunostroke.de/)时,一个旨在了解中风恢复机械原理背后的大脑免疫相互作用的合作,每个研究小组中所有实验性中风模型的标准化至关重要。
这里描述的是上述研究联合体中使用的光血栓模型诱导的标准化程序。简言之,一只动物接受了麻醉,在腹内接受了玫瑰孟加拉注射(10μL/g),从布雷格玛留下的3毫米完整的头骨立即被561纳米激光照亮20分钟(图1)。此外,还报告了分析此模型中风结果的相关理论和行为方法。所有方法都基于实验室制定和使用的标准操作程序。
提交的协议描述了光血栓形成的实验性中风模型,用561纳米激光照亮完好的头骨,并进行了玫瑰孟加拉的腹内注射。直到最近,这种模式的使用一直很低,但正在稳步增加。
此模型中中风诱导期间的死亡率不存在。手术过程中,由于麻醉并发症或在符合排除标准后做出牺牲,总死亡率低于5%。为保证该模型的低变异性和可重复性,建议以下排除标准:1) 操作时间超过 30 分钟…
The authors have nothing to disclose.
我们感谢免疫中风联盟(FOR 2879,从免疫细胞到中风恢复)的所有合作伙伴的建议和讨论。这项工作由德国福松斯格梅因沙夫特(DFG,德国研究基金会)在德国系统神经学集群(EXC 2145 SyNergy – ID 390857198)框架内的卓越战略下,以及根据LI-2534/6-1、LI-2534/7-1和LL-112/1-1的赠款资助。
561 nm wavelenght laser | Solna | Cobolt HS-03 | |
Acetic Acid | Sigma Life Science | 695092 | |
Anesthesia system for isoflurane | Drager | ||
ApopTag Peroxidase In Situ Apoptosis Detection Kit | Millipore | S7100 | |
Bepanthen pomade | Bayer | 1578681 | |
C57Bl/6J mice | Charles River | 000664 | |
Collimeter | Thorlabs | F240APC-A | |
Cotons | NOBA Verbondmitel Danz | 974116 | |
Cresyl violet | Sigma Life Science | C5042-10G | |
Cryostat | Thermo Scientific CryoStarNX70 | ||
Ethanol 70% | CLN Chemikalien Laborbedorf | 521005 | |
Ethanol 96% | CLN Chemikalien Laborbedorf | 522078 | |
Ethanol 99% | CLN Chemikalien Laborbedorf | ETO-5000-99-1 | |
Filter paper | Macherey-Nagel | 432018 | |
Fine Scissors | FST | 15000-00 | |
Forceps | FST | 11616-15 | |
Heating blanket | FHC DC Temperature Controller | 40-90-8D | |
Isoflurane | Abbot | B506 | |
Isopentane | Fluka | 59070 | |
Ketamine | Inresa Arzneimittel GmbH | ||
Laser Speckle | Perimed | PeriCam PSI HR | |
Mayor Scissors | FST | 1410-15 | |
Phosphate Buffered Saline PH: 7.4 | Apotheke Innestadt Uni Munchen | P32799 | |
Protective glasses | Laser 2000 | NIR-ZS2-38 | |
Rose Bengal | Sigma Aldrich | 198250-5G | |
Roti-Histokit mounting medium | Roth | 6638.1 | |
Saline solution | Braun | 131321 | |
Stereomikroskop | Zeiss | Stemi DV4 | |
Stereotactic frame | Stoelting | 51500U | |
Superfrost Plus Slides | Thermo Scientific | J1800AMNZ | |
Xylacine | Albrecht |