극저온을 이용한 거대 분자 복합체의 구조 결정은 단백질과 복합체의 특정 클래스에 대한 일상이되었습니다. 여기서이 파이프 라인은 요약 (샘플 준비, 스크리닝, 데이터 수집 및 처리) 독자는 더 어려운 표본의 경우 변경 될 수있는 추가 상세한 자원과 변수를 향해 지시된다.
극저온 전자 현미경 검사법(cryoEM)은 단일 입자 분석(SPA)을 통해 거대 분자 복합체의 구조 적 측정을 위한 강력한 기술입니다. 전체 공정에는 i) 극저온그리드에서 지원되는 박막에서 표본을 유리화하는 과정이 포함됩니다. ii) 입자 분포 및 얼음 품질을 평가하기 위해 표본을 선별; iii) 그리드가 적합한 경우 분석을 위해 단일 파티클 데이터 집합을 수집합니다. 및 iv) 이미지 처리는 EM 밀도 맵을 산출합니다. 이 프로토콜에서는 워크플로 중에 사용자가 수정할 수 있는 변수와 일반적인 문제의 문제 해결에 중점을 두고 이러한 각 단계에 대한 개요가 제공됩니다. 원격 현미경 작업이 많은 시설에서 표준이 됨에 따라 현미경에 대한 물리적 액세스가 제한될 때 사용자가 효율적인 작동 및 이미징을 지원하는 이미징 프로토콜의 변형을 설명합니다.
단일 입자 CryoEM
분자 수준에서 생명을 조사하기 위해 우리는 구조를 이해해야합니다. 단백질 구조를 조사하는 많은 기술은 NMR, X 선 결정학, 질량 분광법 및 전자 현미경 검사법 (EM)과 같은 유효합니다. 현재까지, 단백질 데이터 뱅크 (PDB)에 증착된 구조물의 대다수는 엑스레이 결정학을 사용하여 해결되었습니다. 그러나, ~2012년부터, 극저온 전자 현미경검사(cryoEM)는 단백질 구조 측정을 위한 주류 기술이 되었고 그 사용은 극적으로 증가하였다. 전자 현미경 데이터 뱅크 (EMDB)에 증착 된 EM 지도의 총 수는 2012 년 1,566에 비해 13,421 (그림 1, www.ebi.co.uk)이었다. 2012년 냉동EM 밀도 맵에서 모델링된 원자 좌표의 수는 67개에 불과했지만 2020년 12월 현재 2,309개의 구조물이 35배 증가했습니다. ‘해상도 혁명‘1이라고도 불리는 극저온 밀도 맵의 품질과 수량의 근본적인 성장은 여러 영역에서 발전의 결합에 의해 발생했습니다: 직접 전자 검출기로 알려진 이미징을 위한 새로운 카메라의 개발; 새로운 소프트웨어; 보다 안정적인 현미경2,3,4.
그림 1: 2012년부터 2020년 12월까지 EMDB에 대한 누적 제출.
단일 입자 분석(SPA)은 바이러스7,8, 멤브레인 단백질9,10, 헬리칼 어셈블리11 및 기타 동적 및 이질성 거대 분자 복합체12,13을 포함하여 격리 된 복합체의 고해상도 구조를 해명하여 다양한 샘플 유형에서 생물학적 통찰력을 생성하는 강력한 도구입니다(39kDa에서 크기)의 순서에 따라 달라지는 크기(kDa3)의 크기(kDa에서 크기)에 따라 달라지는 크기(kDa 39)의 크기(kDa에서 크기)에 따라 달라진 크기(kDa 39)의 크기(kDa에서 크기)에 따라 달라진 크기(39kDa에서 크기)에 따라 달라진 크기(kDa에서 39.kDa)의 수주에 따라 달라진 크기(kDa)의 크기(39kDa에서 의 크기)에 따라 달라진 크기(kDa 39)의 수주에 따라 달라진 크기(39kDa)의 크기(kDa에서 크기)에 따라 달라진 크기(kDa 39)의 크기(kDa에서 크기)에 따라 달라진 크기(39kDa에서 크기)에 따라 달라진 크기(39kD 14,15 ~ 수십 메가달톤). 여기서, 샘플에서 구조로 극저온 SPA에 대한 표준 파이프라인에 대한 프로토콜이 설명되어 있다.
이 파이프라인에 착수하기 전에 정제 된 샘플은 다운스트림 성공 가능성을 평가하기 위해 생화학 분석을 받아야합니다. 적합한 시료의 준비는 틀림없이 SPA에 가장 큰 장벽이며, 특히 일시적인 및 이질성 (조성 및 형태 모두) 복합체에 대한 것입니다. 거시 분자 복잡한 제제는 각 극저온EM 마이크로그래프에 많은 입자를 산출하기에 충분한 농도에서 가능한 한 적은 오염 물질을 포함해야 하며, 극저온분석에 적합한 완충조성에 있어야 한다. 자당, 글리세롤 및 높은 (~> 350mMMM의 염 농도, 시료 크기, 특성 및 기타 완충성분에 따라) 특정 완충 성분은 유리화 과정을 방해하거나 이미지의 신호 대 잡음 비율을 감소시킬 수 있어 구조 판정을 저해한다.
전형적으로, 최소크기 배제 크로마토그래피(SEC)와 SDS-PAGE 겔 분석은 샘플 순도17,18을 평가하는 데 사용해야 하지만, 원형 이색성, 기능적 분석, SEC와 다각광 산란, 열 안정성 분석 은 모두 cryoEM 분석 전에 거시분자 복합체 제제의 질적 분석을 위한 유용한 도구이다. 그러나, 이러한 생화학 적 분석에서 결과는 극저온EM 그리드에 샘플의 구조적 이질성과 행동에 약간의 통찰력을 얻을 수 있습니다. 이러한 이유로, 네거티브 얼룩 EM은 조성 및 형태 이질성을 평가하기 위한 빠르고 저렴하며 강력한 도구로 일상적으로 사용되며, 따라서 정제로부터 어떤 용출 분수가 가장 유망하거나 다른 완충 조성물을 선별하는 좋은 방법입니다19,20. 유망한 샘플이 확인되면 SPA 극저온 파이프라인으로 진행할 수 있습니다. 음의 얼룩이 항상 극저온EM에서 볼 수있는 후속 결과와 일치하지 않습니다; 때로는 샘플은 부정적인 얼룩에 의해 가난한 보이지만 극저온에서 유리체 얼음에서 볼 때 개선됩니다. 대조적으로, 때때로 견본은 음극기 단계 도중 우수해 보이지만 극저온으로 진행할 때 상당한 추가 최적화가 필요합니다. 그러나, 대부분의 경우 네거티브 얼룩은 유용한 품질 관리 단계를 제공한다.
바이트로케이션
전자 현미경의 진공 시스템 내의 가혹한 환경은 고정되지 않은 생물학적 표본에 탈수 및 방사선 손상을 모두 유발합니다21. 따라서, 원어민과 같은 상태에서 샘플을 이미지하기 위해, 생물학적 표본은 이미징 전에 보존되어야 한다. 거시분자 복합체의 정제제제를 위해, 유리화는 단지의 원자적 세부사항을 보존하면서 극저온에 의한 시각화를 가능하게 하는 방안이다. 샘플 제제의 방법으로 유리화의 발견은 두보셰가 2017년 노벨 화학상에서 인정받은 생물학적 표본의 전자 현미경 검사법의 근본적인 발전이었습니다. 시료 진동은 관심 있는 표본을 포함하는 얇은 층의 용액을 만드는 것을 포함하며, 일반적으로 수십 nm 두께의 극저온그리드 지지대에서 매달려 있다. 박막은 다음 ~-175°C에서 액체 에탄과 같은 극저온에서 매우 빠르게 동결된다. 동결속도는 ~106 °C/s로, 비정질 또는 유리체 얼음 형태가 충분히 빠르며, 얇고 단단한 필름22에서 시편을 일시 중단한다.
고려해야 할 초기 변수는 cryoEM 그리드 지원선택23입니다. EM 그리드는 일반적으로 지지 구조를 통해 천공(일반 또는 불규칙)이 있는 비정질 탄소 필름으로 구성됩니다. 상기 지지 구조는 일반적으로 직경 3.05mm의 원형 금속 그리드이지만, 일반적으로 구리로 만들어지지만, 금 또는 몰리브덴(열 팽창 특성24이 선호되는)과 같은 다른 금속을 사용할 수 있다. 때로는 그래핀, 그래핀 옥사이드 또는 얇은(~1-2nm) 비정질 탄소 층과 같은 그리드 전체에 얇고 연속적인 지지가 가해질 때가 있습니다. 표준 극저온(가장 일반적으로 400-200 메쉬 구리)이 천공된 메쉬 구리(1.2 μm 원형 구멍1.3μm(r1.2/1.3)로 분리되거나 탄소 의 2μm(r2/2)로 분리된 2μm) 탄소 지지체-많은 다른 패턴이 사용 가능하지만, 대부분의 구조에서 사용되어 왔다. 전도도 향상 및 표본 이동 감소를 가진 새로운 그리드 기술이 보고되었습니다25 . 선택된 그리드는 광방전/플라즈마 세척 처리를 통해 친수성 및 시료 적용을 가능하게 합니다26.
광선 배출 에 이어 다음 단계는 박막 형성입니다. 이 박막은 가장 일반적으로 그리드에서 여분의 액체를 제거하기 위해 필터 종이를 사용하여 형성된다. 이 수동으로 수행 할 수 있지만, 플런지 동결 장치의 숫자는 비트 로봇 Mk IV (열 피셔 과학), EM GP II (라이카) 및 CP3 (가탄)를 포함하여 시판적으로 사용할 수 있습니다. 이러한 장치를 사용하면 용액의 샘플 ~3-5 μL이 EM 그리드에 적용되고 필터 용지를 사용하여 과도한 용액을 블롯합니다. 박막이 매달려 있는 그리드는 액체 질소(LN2)에 의해 냉각된 액체 에탄으로 뛰어들어 ~-175°C로 떨어지게 된다. 일단 동결되면, 그리드는 편각점(-137°C) 이하의 온도에서 유지되고, 이미징 중에 유지된다.
표본 선별 및 데이터 수집
극저온EM 그리드의 진동에 따라 다음 단계는 그리드를 스크리그하여 품질을 평가하고 그리드가 고해상도 데이터 수집을 진행하는 것이 적합한지 여부를 결정하는 것입니다. 이상적인 저온EM 그리드에는 얼음 두께가 표본의 가장 긴 치수를 수용할 수 있는 유리체 얼음(결정얼음 반대)이 있어 주변 얼음이 가능한 한 작은 소음을 냅니다. 얼음 내의 입자는 생화학과 일치하는 크기와 (알려진 경우) 모양을 가져야하며, 이상적으로 입자 배향의 임의 분포와 함께 단일 분산되어야합니다. 마지막으로 그리드는 원하는 데이터 수집 길이를 충족하기에 충분한 품질 영역을 가져야 합니다. 시편에 따라 최적의 그리드가 생성될 때까지 많은 진동 및 스크리닝이 필요할 수 있습니다. 다행히도 불행히도 극저온EM 그리드의 입자 분포를 변경하기 위해 경험적으로 테스트할 수 있는 다양한 변수가 있습니다(in16,27 검토). 본 원고에서는 막 단백질 프로젝트에 대한 대표적인 결과가 나타났다10.
적절한 그리드가 확인되면 데이터 수집이 진행될 수 있습니다. 생물학적 표본을 위한 저온 전염 전자 현미경의 몇몇 모형은 자동화된 방식으로 고해상도 데이터를 수집하기 위하여 최적화됩니다. 일반적으로 데이터는 300kV 또는 200kV 시스템에서 수집됩니다. EPU(써모 피셔 과학) 28, 레기논29, JADAS30 및 시리얼EM31,32를 포함한 소프트웨어를 사용하여 자동화된 데이터 수집을 달성할 수 있습니다. 최신 검출기가 있는 자동화된 데이터 수집은 일반적으로 24시간 동안 원시 데이터의 테라바이트(TB)를 생성합니다(평균 데이터 집합은 ~ 4TB 크기).
2020년 12월 에 위치한 COVID-19 제한으로 인해 많은 현미경 시설이 원격 액세스를 제공하기 위해 이동했습니다. 그리드가 현미경의 오토로더에 로드되면 원격으로 데이터 수집을 수행할 수 있습니다.
이미지 프로세싱 및 모델 구축
데이터 수집 세션이 일반적으로 0.5-4일 일 수 있는 경우 컴퓨팅 리소스의 가용성에 따라 후속 이미지 처리에는 몇 주 및 몇 주가 걸릴 수 있습니다. 초기 이미지 처리 단계, 즉 모션 보정 및 콘트라스트 전송 기능(CTF) 추정에 대한 표준으로 ‘즉석’ 33,34를 수행한다. 다운스트림 처리를 위해 다양한 소프트웨어 제품군을 사용할 수 있습니다. 입자는 ‘수확’하고 현미경 그래프35,36에서 추출됩니다. 입자를 추출하면 표준 프로토콜은 여러 단계의 분류(두 차원(2D)와 3차원(3D) 및/또는 특정 관심 영역에 초점을 맞춘 여러 계라운드를 통해 입자를 처리하여 동질적인 입자 하위 집합에 도달하는 것입니다. 그런 다음 입자의 균일한 하위 집합은 3D 재구성을 생성하기 위해 함께 평균됩니다. 이 시점에서 데이터는 CTF 정제, 왜곡 보정37 및 Bayesian 연마38을 통해 가능한 최고 품질의 맵을 생성하기 위해 더 수정되는 경우가 많습니다. 이 이미지 처리의 결과는 관심있는 생물학적 표본의 3D 극저온맵입니다. 300kV 현미경 시스템에서 수집된 데이터는 단백질 복합체의 크기와 유연성에 따라 일반적으로 10Å와 2Å 사이인 충분한 품질의 그리드에서 ‘표준’ 자동화된 단일 입자 실험에 도달한 해상도 범위가 있습니다. 이상적인 표본을 사용하면 이제 SPA 워크플로를 사용하여 ~1.2 Å의 해상도에 도달했습니다. 이 프로토콜은 EM 밀도 맵을 획득하는 단계를 자세히 설명하지만, 일단 이 프로토콜이 손에 들어오면 단백질 모델을 피팅하고 정제하여 추가로 해석될 수 있습니다(해상도가 3.5Å에 < 경우) 또는 건물 드 novo39. 구조 결정 실험과 관련된 데이터는 EM 밀도 맵(전자 현미경 데이터 뱅크)40, 결과 원자 좌표(단백질 데이터 뱅크) 41 및 원시 데이터 세트(전자 현미경 공공 이미지 아카이브)를 포함하여 온라인 공개 저장소에 증착될 수 있습니다.
본 프로토콜에서, 포르피로모나스 진기발리스 로부터의 외부막 단백질 복합체 라그AB(~340 kDa)는 대표적인 거대분자 복합체10 (EMPIAR-10543)으로 사용된다. 극저온에 익숙하지 않은 경우 iNEXT 디스커버리 및 지시와 같은 자금 지원 접근 체계를 통해 샘플에서 구조로 이 파이프라인을 통한 샘플을 지원할 수 있습니다.
이 프로토콜에서 우리는 일상적인 SPA에 적합한 표본에 적용되는 기본 파이프 라인을 설명했습니다. 박막 형성 및 유리화의이 필터 종이 블로팅 방법은 의심 할 여지없이 현재까지 SPA 프로젝트의 대부분에 사용 주어진 성공이지만, 그것은 단점의 숫자와 함께 제공됩니다. 여기에는 시료 낭비, 박막을 형성하고 시편을 동결하는 데 필요한 느린 시간 척도(초)가 포함되며, 불경정성을 보고하고 필터 용지를 사용하여 과잉 액체50을 멀리 하는 부정적인 효과를 보고하였다. 최근에는 박막 제작의 재현성을 높이기 위해 신기술이 개발되었다51,52. 샘플 응용 분야와 바이트로피화 53,54,55 사이의 시간을 줄이는 다른 기술이 개발되었습니다. 박막 형성을 위한 필터 종이 기반 방법은 작성 시 SPA 극저온 샘플 제제의 가장 유비쿼터스 방법이지만, 이러한 새로운 기술은 그리드 바이트로화의 효율성과 재현성 측면에서 다양한 이점을 가져올 뿐만 아니라, 진동 화 전에 시간 해결 및 신속한 혼합과 같은 추가적인 실험 차원을 가져올 수 있는 새로운 기회를 창출할 수 있다.
대부분의 사용자에 대한 그리드 스크리닝 과정은 현재 낮은 배율 아틀라스를 획득한 다음 그리드 전체에서 높은 배율 이미지를 사용하여 입자 분포를 평가하는 질적 프로세스입니다. 이것은 몇몇 유형의 견본을 위한 충분히 견고한 접근이지만, 표본이 실제로 연구원이 이미지에 바라고 있는 무슨또는 선호하는 방향을 가지고 있는지, 예를 들면 작은 (<200 kDa) 견본을 가진 또는 저해상도 형태학이 입자 분포의 범위가 존재하는 경우에 눈으로 확인하기 어렵게 만드는 경우에 눈으로 평가하기 어려울 수 있습니다. 일부 프로젝트의 경우, 시편이 원하는 지 여부를 결정하는 것은 불가능하며, 예를 들어 리간드가 결합되어 있거나 샘플이 스크리밍되는 위치가 작은(예를 들어, 10kDa) 하위 단위가 여전히 복합체와 연계되어 있는지 여부를 평가하는 것이 불가능합니다. 이러한 프로젝트의 경우 데이터 분석을 위한 완전 자동화된 파이프라인과 '짧은' 0.5- 1-h 컬렉션이 결합되어 이미지 처리 단계를 통해 2D 분류 또는 3D 분류 및 개선으로 진행할 수 있어 더 긴 컬렉션이 보증되는지 여부를 효율적으로 결정하는 데 도움이 됩니다. 이러한 파이프라인은 아직 개발 중이며 현재 널리 구현되지는 않지만, 특히 까다로운 표본의 경우 극저온 그리드 스크리닝의 효율성을 향상시킬 수 있습니다.
직접 전자 검출기의 개선뿐만 아니라 이미지 시프트 데이터 수집과 같은 이미지 처리의 발전과 결합된 현미경 검사법의 수정은 데이터 수집 중에 생성된 이미지의 처리량과 품질을 증가시켰습니다. 수집되는 데이터의 비율이 증가하는 것은 많은 TB의 데이터를 수집하기 전에 극저온그리드를 철저히 검사해야 할 필요성을 강조합니다.
CryoEM SPA는 진정으로 주류 구조 생물학 기술이되었으며, 많은 경우에 이질성 및 음순 거대 분자 복합체와 같은 일부 종류의 표본에 대한 ‘이동’접근 방식이 되었습니다. 여기에 프로토콜은 SPA 파이프 라인의 기본 개요를 설명하는 동안, 여기에 적용되는 각 섹션 (그리드 바이크리제이션 및 스크리닝, 극저온 EM 및 이미지 처리) SPA 프로젝트의 개발 중에 탐구의 그 자체로 가치가있는 주제입니다. 샘플 준비 및 현미경 기술이 발전하고 새로운 이미지 처리 알고리즘과 접근 방식이 온라인상태가 됨에 따라 SPA는 복잡한 생물학적 시스템에 대한 통찰력을 얻기 위해 연구자들이 지속적으로 파이프라인으로 발전할 것입니다.
The authors have nothing to disclose.
이 작품은 유럽 위원회의 호라이즌 2020 프로그램에 의해 투자 iNEXT-디스커버리 (그랜트 871037)에 의해 지원되었다. J B. R. 화이트는 웰컴 트러스트(215064/Z/18/Z)의 자금을 지원받습니다. FEI 티탄 크리오스 현미경은 리즈 대학 (UoL ABSL 상)과 웰컴 트러스트 (108466/ Z / 15 / Z)에 의해 투자되었다. 우리는 그의 현미경 분석 스크립트의 사용에 대한 M Iadanza 감사합니다. 우리는 웰컴 트러스트, MRC 및 BBRSC가 지원하는 영국 국립 전자 바이오 이미징 센터 (eBIC)에서 저온-EM 시설에 대한 액세스 및 지원을 위한 다이아몬드 광원을 인정합니다.
Blunt tweezers | Agar Scientific | AGT5022 | |
Cryo EM round storage box | Agar Scientific | AGG3736 | |
CryoEM autogrid boxes | ThermoFisher Scientific | 1084591 | |
CryoEM grids | Quantifoil | N1-C14nCu30-01 | |
Ethane gas | Boc | 270595-F | |
LN2 foam dewar | Agar Scientific | AG81760-500 | |
LN2 storage dewar | Worthington industries | HC 34 | |
Pipette | Gilson | 10082012 | |
Pipette tips | Star labs | s1111-1706 | |
Syringe | BD | BD 300869 | |
Type II lab water | Suez | select fusion | |
Vitrobot | ThermoFisher Scientific | 1086439 | |
Vitrobot filter paper | Whatman | 1001-055 | |
Vitrobot styrophome container assembly | ThermoFisher Scientific | 1086439 | |
Vitrobot tweesers | ThermoFisher Scientific | 72882-D | |
Software | |||
EPU | ThermoFisher Scientific | 2.8.1.10REL | |
TEM server | ThermoFisher Scientific | 6.15.3.22415REL | |
Tia | ThermoFisher Scientific | 5.0.0.2896REL | |
Titan krios microscope | ThermoFisher Scientific | Titan Krios G2 |