この方法は、軟質炭(すなわち、酸化および非酸化褐炭および亜瀝青炭)、フミン酸鉱石および頁岩、泥炭、堆肥および商業肥料および土壌改良からの乾燥および液体材料中の腐植物質(例えば、フミン酸およびフルボ酸)の重量定量を提供する。
この方法の目的は、軟炭、腐植鉱石および頁岩、泥炭、堆肥および腐植物質含有市販製品中の腐植質(HA)および/またはフルボ酸(FA)の正確かつ正確な濃度を提供することである。この方法は、試験物質のアルカリ抽出に基づいており、抽出剤として0.1N NaOHを使用し、遠心分離によって非可溶性生成物からアルカリ可溶性腐植物物質(HS)を分離した。次いで、遠心分離されたアルカリ性抽出物のpHを、濃度HClでpH1に調整し、これがHAの沈殿をもたらす。沈殿したHAは、遠心分離によりフルボ画分(FF)(溶液中に残存するHSの画分)から分離される。次いで、HAをオーブンまたは凍結乾燥し、乾燥HAの灰分含有量を決定する。次いで、純粋な(すなわち、灰を含まない)HAの重量を、試料および得られた画分の重量で割って100を掛けて、試料中の%HAを決定する。FA含有量を決定するために、FFを疎水性DAX-8樹脂に装填し、疎水性フルボ酸(HFA)とも呼ばれるFA画分を吸着する。残りの非フルボ酸分画は、親水性フルボ画分(HyFF)とも呼ばれ、その後、すべての非吸収材料が完全に除去されるまで、脱イオン化H2Oで樹脂を洗浄することによって除去される。次いで、FAは0.1N NaOHで脱離する。得られたNa-フルベートは、強力なH+交換樹脂の上に通過させることによってプロトン化される。得られたFAをオーブンまたは凍結乾燥し、HAについて上記のようにして測定した灰分および試料中の濃度を算出した。
腐植質(HS)は、腐化と呼ばれるプロセスを通じて微生物の副産物およびバイオマス3,4,5で増強された死んだ植物組織の微生物分解および形質転換から生じる動的残留物1,2,3である6。HSは土壌、天然水、湖沼堆積物、泥炭、軟炭、腐植質頁岩に存在し、地球上の全有機炭素の推定25%を占めています7。これらの物質は、強塩基性および酸水溶液中でのそれらの異なる溶解度に基づいて3つの主要な画分に分画される何千ものユニークな分子の複雑な混合物である。これらの画分はフミン酸(HA)であり、アルカリ可溶性であるが酸不溶性画分を含む。フルボ酸(FA)、アルカリおよび酸の両方に可溶な画分;そして、すべてのpH値6、8で不溶性であるフミン画分。フルボ画分(FF)は、疎水性FA(HFA)画分と親水性画分(HyFA)にさらに細分される。これらの画分は、疎水性DAX-8樹脂(HFA)に結合するFFの部分と、樹脂に結合しない部分(HyFA)と定義される。
HSは、作物の生物刺激剤として広く使用されている農業、畜産、特に家畜飼料添加物、掘削泥の採掘、電子シャトルとしての環境修復にますます使用されています。ヒトの医療用途におけるHSの使用に関する研究も増加しています。
HAおよびFAの定量には多くの方法が存在する。ただし、これらの方法のほとんどは正確でも正確でもありません。例えば、米国でHAの測定に最も広く使用されている2つの方法は、比色法9 とカリフォルニア州食品農業省(CDFA)法であり、どちらも米国西部とカナダからの鉱石および抽出物源の範囲におけるHAの量を過大評価することが示された10。比色法または分光光度法は、HA、FA、および使用される波長ですべて吸収する他の発色団に加えて、アルカリ抽出物の吸光度に依存しており、標準物質は試験される材料を代表していないため、不正確です10。CDFA法は、灰を含まないベースでHA濃度を提供しないため、正確ではありません。異なる鉱石は異なる量の灰を有し、その一部は抽出と共に運ばれ、抽出プロセス自体が灰を追加するので、この方法はHA濃度の正確な値を提供しない10。正確で正確な方法の必要性に応えて、HAとFAの両方の定量を灰のない基準で扱うために、2014年に11 によって詳述されたものに基づく標準化された重量測定手順が公開されました12。この方法は、その後、2018年に国際標準化機構(ISO)によって「肥料および土壌改良剤」の下で「肥料材料中の腐植質および疎水性フルボ酸濃度の測定」13として、若干の変更を加えて適応されました。
この論文では、フミン酸および疎水性フルボ酸の抽出および定量のためのプロトコルを概説し、この方法から生成されるデータの精度および精度について詳細に説明する。
この方法におけるHAの抽出および単離の初期ステップは比較的単純である。HFAの単離にはカラムクロマトグラフィーが含まれるため、再現性のある結果を得るには、各ステップとプラクティスの詳細を厳守する必要があります。特に、樹脂の正しい調製が最重要事項である。ポリメチルメタクリレートDAX-8樹脂が適切に調製され、充填されることが極めて重要である。樹脂の正しいパッキングは、HFAの歩留まりと品質の両方に影響します。チャネリングが存在する場合、HFAの前処理(すなわち酸性化)または吸着はいずれも完了せず、分離は不正確な結果をもたらす。サンプルローディングの前に樹脂内のチャネルまたはスペースが観察された場合は、カラムを取り出して振とうし、チャネルなしで樹脂ビーズを再分配し、樹脂を通してきれいなDI H2Oをポンピングして再充填する必要があります。さらに、プロトコルで述べたように、FFを樹脂に装填するときに樹脂の上の液体の体積を維持することは、FFが樹脂に入る前に混合することを可能にし、より効果的な吸着をもたらす。強カチオンH+交換樹脂(材料表)の場合、完全な再生を急ぐことはできません。Na+/H+交換には時間がかかるため、樹脂を再酸性化しながら混合できるようにバルク処理を行うのが最善です。DI H2Oですすぎながら樹脂を混合すると、余分なHClを除去するのに役立ちます。酸性化した樹脂を上昇させて過剰の酸を除去する場合、樹脂を混合することはHClの除去を助ける。電気伝導度が≤0.7μS/cmに達するまで酸を除去することは非常に重要です。そうでない場合、HClはHFAに引き継がれます。
最後に、DAX-8 樹脂から HFA を脱離するとき、流入液の吸光度が流出液の吸光度と等しくなったら、カラムを数時間放置して、追加の HFA が放出されるかどうかを確認することをお勧めします。その場合、樹脂の上方の液体の黄変として見られるであろう。これが発生した場合、流入/流出の吸光度が再び等しくなるまで、追加のHFAを継続的な脱着によって除去することができる。
HFA 分離の欠点の 1 つは、プロセス全体に時間がかかることです。DAX-8樹脂からのHFAの完全な脱離およびH+交換樹脂からの完全除去は、両方とも、回転蒸発によって減少しなければならないかなりの量のHFAをもたらす。これは間違いなく分析のボトルネックです。この時間を減らすために、0.1 M NaOHではなくアセトンを使用してDAX-8樹脂からHFAを脱離させることが示唆されている14。著者らは、NaOHの代わりに脱着剤として50%アセトンを使用することによって、同様のHFA結果が得られ、DAX-8が適切に再生され、したがってH+交換ステップを排除できると主張した。この修正により、生成される体積が減少し、アセトンが水と比較してより速く回転蒸発するため、分析時間が大幅に短縮されました。この修正は、さらなる研究を駆逐する。
この方法は、加湿の過程を経た有機物の分析に限定され、泥炭および軟炭の場合、泥炭化のさらなる過程および泥炭化および炭化の両方をそれぞれ行う。保湿は、死んだ、主に植物材料が、ますます反抗的な基質を消費し、修正する一連の微生物によって分解されるプロセスである。非生物的プロセスはまた、分解および再合成反応に関与する。硫化は、最終的に、HSを形成する分子量の範囲および炭素、酸素および水素含有量を形成する数千の分子の不均一な混合物を含む比較的反抗的な材料の生成をもたらす。HSは泥炭化および炭化によってさらに修飾される。したがって、この方法は、化学プロセスによって改変された植物材料には適していない。例えば、リグノスルホネートはHFA混入剤として広く使用されている。リグノスルホネートは、亜硫酸パルプ化プロセスの副産物である。したがって、この材料は、加湿のプロセスによって製造されていない。また、DAX-8樹脂に結合する物質も多く存在する。例えば、DAX-8樹脂は、溶液15から農薬を吸着するために使用されている。明らかに、農薬はHSではありません。したがって、DAX-8樹脂への材料の結合は、それがHFAであるという主張を正当化するものではない。前提条件は、加湿による製造とDAX-8樹脂への結合の両方です。
異なる用途におけるHSの様々な成分の寄与についてより多くが学習されるにつれて、HSをさらに分画し、したがってそれに応じて方法を修正することが有利になり得る。存在するので、この方法はHHYFAを定量化しない。しかしながら、この画分はまた、例えば、FF全体が精製HFAではなく農業処理において一般的に適用される植物の生体刺激において活性を有する可能性がある。
The authors have nothing to disclose.
著者らは、フミック製品貿易協会(HPTA)が、この論文に記載されている方法の標準化をもたらした作業に資金を提供し、ローレンス・メイヒュー博士とダン・オルク博士とポール・ブルーム博士が標準化作業中に技術支援を行ったことに感謝したい。
Amberlite IR 120 H+-exchange resin | Sigma-Aldrich | 10322 | H+ form |
Analytical Balance | Ohaus | PA214 | w/ glass draft shield |
Centrifuge | Beckman Coulter | Allegra X-14 | minimum 4300 rpm |
Centrifuge tubes | Beckman Coulter | To fit rotor selected | |
Ceramic Combustion Crucibles | Sigma | Z247103 | |
Chromatography column for DAX-8 | Diba | Omnifit 006EZ-50-25-FF | |
Chromatography column for IR 120 | Chemglass | CG-1187-21 2 in. by 24 in. | |
Dessicator | Capitol Scientic | Kimax 21200-250 | Vacuum type |
Drying Oven | Fisher Scientific | Isotemp | Precision±3˚C |
Electrical conductivity meter | HM Digital | EC-3 | |
Erlenmeyer Flasks | Amazon | 1L, 2L | |
HCl concentrated | Sigma-Aldrich | 320331 | |
Magnetic Stir Plate | Barnstead-Thermolyne | Dataplate 721 | |
Magnetic Stir bars | These can be obtained at many outlets | ||
Muffle Furnace | Fisher scientific | Thermolyne Type 47900 | |
NaOH | Sigma-Aldrich | 795429 | |
Nitrogen gas | Praxair | UNI1066 | 99.99% purity |
Peristaltic pump | Cole Parmer | Masterflex 7518-00 | |
Perstaltic tubing | Cole Parmer | Masterflex Pharmed 06508-17 | |
pH meter | Oakton Instruments | WD-35618–03 | |
Rotary Evaporator | Buchi | R-210/R-215 | |
Spectrophotometer | Healthcare SCiences | Ultrospec II | Dual beam 200 to 900 nm with wavelength accuracy of ±1 nm and reproducibility of ±0.5 nm. |