Эта статья демонстрирует экстрадуральный подход, чтобы уничтожить морской свинки эндофолфатического мешка и травмировать эндофолхатический проток с тонкой забрать для того, чтобы вызвать экспериментальные эндофолфатических гидропов.
Эндополхатические гидропы является расширение моль сми, что чаще всего связано с болезнью Меньера, хотя патофизиологический механизм (ы) остаются неясными. Для того, чтобы адекватно изучить атрибуты эндофолфатических гидропов, такие как происхождение низкочастотной потери слуха, необходима надежная модель. Морская свинка является хорошей моделью, потому что она слышит в низкочастотных регионах, которые, как предполагается, пострадавших от эндофолфатических гидропов. Предыдущие исследования показали, что эндолимфатические гидропы могут быть индуцированы хирургическим путем с помощью внутридуральных или экстрадуральных подходов, которые включают бурение на эндолимфатических протоков и мешка. Однако удалось ли создать модель эндофолфатических гидропов с использованием экстрадурального подхода, избежав которого опасное бурение на эндофолфатическом протоке и мешке, неизвестно. Цель этого исследования состояла в том, чтобы продемонстрировать пересмотренный экстрадуральный подход, чтобы вызвать экспериментальные эндофолфатические гидропы на 30 дней после операции, уничтожив эндомфатический мешок и ранив эндолимфатический проток с тонкой киркой. Размер образца состоял из семи морских свинок. Были проведены функциональные измерения слуха, и височные кости были впоследствии собраны для гистологического анализа. Уровень успеха этого подхода составил 86% в достижении эндополфатических гидропов. Риск утечки спинномозговой жидкости был минимальным. В пробе не было случаев смерти или травм в задней полукруглой канализации. Представленный метод демонстрирует безопасный и надежный способ индацилимтических гидропов в относительно быстрое время 30 дней. Клинические последствия в том, что представленный метод обеспечивает надежную модель для дальнейшего изучения происхождения низкочастотной потери слуха, которые могут быть связаны эндофолфатических гидропов.
Эндополхатические гидропы – это расширение сcala-носителей. Наличие эндофолфатических гидропов можно измерить с помощью поперечной области scala-носителей. Считается, что клинические эндофолфатические гидропы могут быть связаны с низкочастотной сенсоневральной потерей слуха, как, например, при болезни Меньера. Но происхождение (ы) потери слуха остаются неясными. Для адекватного изучения происхождения низкочастотной потери слуха, связанной с эндофолфатическими гидропсами, необходима надежная модель.
В 1965 году Кимура и Шукнехт описали, как вызвать эндофолфатические гидропы у морской свинки с помощью внутриуральского подхода1. Их техника включала использование заднего черепного подхода ямки для доступа к оперкулуму и субаркуатной фоссе. Шаги включали в себя прорезывание дюра, втягивание мозжечка с раствором Ringer, пропитанной ватным тампоном, и бурение по эндополмхатическим протоку и промежуточной части эндолимфатического мешка. Кость воска затем был помещен в оперкулум, чтобы отделить эндофолфатический проток от дистального эндофолфатического мешка. Дефект краниотомии был закрыт путем размещения абсорбируемого желатина порошка (например, Gelfoam) и повторного приближения надлежащих мышц. Гистологические свидетельства эндофолфатических гидропов были последовательно найдены в послеоперационные дни 1, 3, 7, 14, 21 и 30, демонстрируя, что внутридуральный подход является надежным методом, чтобы вызвать гистологически подтвержденные эндофолфатические гидропы. Используя тот же внутридуральный подход, как Кимура и Schuknecht, но с различными точками времени, Соль и DeMott подтвердил, что скала сми во втором повороте улиты был значительно увеличен на 4 день и за2. В то время как фактическая заболеваемость индуцирования спинномозговой жидкости (CSF) утечки с использованием Кимура и Schuknecht в интрадуральный подход не сообщалось в первоначальном исследовании, наличие утечки CSF может увеличить риск менингита. Было высказано предположение, что потеря CSF может привести к оттоку perilymph, в результате чего одновременное временное расширение эндополхического объема в морской свинки3. Более безопасным вариантом был бы экстрадуральный подход к индуцированию эндополфатических гидропов.
В 1989 году Эндрюс и Бомер описал два экстрадуральных хирургических подходов для достижения эндомфитратический мешок и проток, либо через средний черепа ямсы подход или задний черепного ямсы подход, чтобы уничтожить эндолимфатический мешок4. Они описали удаление оперкулума с помощью алмазной дрели, а затем либо сверлить промежуточную часть эндолимфатического мешка, либо использовать тонкий выбор, чтобы нарушить эндофолфатический мешок и проток. В 1993 году Ли, Райт и Мейерхофф описали аналогичный подход, который включал бурение через эндофолфатический мешок и проток, но отличался тем, что они также одновременно препятствовали кохлеарному акведуку5. Они продемонстрировали наличие эндолимфатических гидропов, оцениваемых по гистологии, через четыре недели после уничтожения эндофолфатического мешка и препятствования кохлеаческому акведуку. Megerian et al. был первым, кто опубликовал видеостатьу, демонстрирующую экстрадуральную облитерацию эндолимфатического мешка и протока, в котором участвовалбурение непосредственно на медиальной части оперкулума, чтобы войти в эндомфитратический мешок и проток6. Они продемонстрировали гистологические доказательства эндофолфатических гидропов в морской свинке, принесенных в жертву через 28 недель после операции, а также потерю слуха в районе 16 кГц6. Удалось ли вызвать гистологически подтвержденные эндофолфатические гидропы и низкочастотную потерю слуха на раннем этапе с помощью экстрадуральных подходов, неизвестно.
Общая цель настоящего доклада заключается в том, чтобы продемонстрировать экстрадуральный подход, чтобы вызвать экспериментальные эндофолфатических гидропов на 30 дней после операции, уничтожив эндомфатический мешок и ранив эндолимфатического протока с тонкой киркой. Обоснование использования этого метода является преимуществом избегая необходимости сверлить на перус височной кости, тем самым устраняя риск случайно травмы дюры и вызывая утечку CSF, смягчая возможность ранения заднего полукруглого канала, и снижение риска повреждения сигмоидной синусовой.
Представленный экстрадуральный метод имел коэффициент успеха 86% в достижении гистологически подтвержденных эндофолфатических гидропов и низкочастотной потере слуха. Метод надежно достиг гистологических доказательств эндополфатических гидропов к послеоперационному дню 30, в соотве…
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим Шеннон М. Лефлер за помощь с цифрами и таблицематериалов. Исследования, о которых сообщается в этой публикации, были поддержаны Национальным институтом глухоты и других коммуникационных расстройств в рамках Национальных институтов здравоохранения, через “Развитие клиники / исследователей в академическом ЛОР” учебный грант, награда номер T32DC000022 (C.V.V.) и R01 DC014997 (J.T.L). Содержание является исключительно ответственностью авторов и не обязательно отражает официальные взгляды Национальных институтов здравоохранения.
12 mL syringe | Henke-Sass Wolf | 5100-X00V0 | |
1 mL and 3 mL syringe | BD Precision(Ordered from Fischer Sci) | 14-826-87 15859152 | |
27.5 butterfly gauge needle | Terumo Surflo Winged Infusion Set, Terumo Corporation, Japan) (Ordered from McKesson) | 448407 | |
4-0 suture | McKesson | 1034507 | |
4×4 gauze sponges | Dukal (Ordered form McKesson) | 374454 | |
60mL syringe | Fisher Sci | 22-031-375 | |
Anspach otologic drill | Anspach | SC2100 | |
atipamezole | Zoetis | 107204-6 | |
autoclave | Fisher sci | 15-103-0508 | |
autoclave bags | McKesson | 524881 | |
bayonet separator | Olympus | AL 130564 | |
bupivicaine | auro Medics Pharma | 555150-169-10 | |
clear sterile drape | 3M | 1020 | |
cotton balls | Fisherbrand (ordered from Fisher Sci) | 22-456-885 | |
cotton swabs | McKesson | 508716 | |
diamond burrs #3, #2, #1, and #0.5 mm | Anspach | QD8-3SD; QD8-2SD; QD8-1SD; QD8-05SD | |
diaper pad | McKesson | 945330 | |
disposable 15 blade | Swann-Morton | 0305 | |
enrofloxacin | Hospira | 0409-4888-01 | |
epinephrine | McKesson | 63739-0456 | |
eye ointment | Dechra Vet Products | 17033-211-38 | |
Freer elevator | Grace Medical | 215100FX | |
gelfoam | Pfizer (Ordered from McKesson) | 82830 | |
hair trimmers | Oster Power Pro Cordless (ordered from Amazon) | 078400-020-000 | |
iodine scrub | Purdue Pharma (ordered from mcKesson) | 521243 | |
iris scissors | Olympus | CL-542114 | |
ketamine | Henry Schein Animal Health | 55853 | |
lactated ringers | B. Braun Medical (ordered from McKesson) | 186662 | |
lancet knife by Rosen | Grace Medical | 151100FX | referred to as curette in the text |
lubricant | Milex (ordered from Cooper Surgical) | MX5030 | |
masking tape | 3M (ordered from fisher sci | 19047259 | |
metal rectangle basin | Amazon | B07NQDBC6T | |
needle holder | Olympus | CR 213015-ENT | |
needles: 27 gage, 18 gauge | BD Precision(Ordered from Fischer Sci) | 14-826-48 14-826-5D | |
neonatal warming isollete | Air Borne Life Support Systems | 731-1800 | |
operating microscope | Carl Zeiss | OPMI pico | |
oxygen tank | AirGas | OX USP200 | |
pulse ox | CapnoTrue (Ordered from Medacx) | M-3090112001 | |
rectal probe with heating blanket | Harvard Apparatus | probe: PY2 50-7217 Heating Blanket: PY2 50-7214 | |
red body holder | Lichtenhan Lab | N/A | In-house product |
right angle | Olympus | BV-230337 | |
rosen needle | Olympus | AM-130566 | customized, it is the instrument I use to tear the sac |
rubber tubing for O2 administration | Fisher Sci | 14-171-104 | |
saran wrap | Fisher Sci | NC9617977 | |
stereotactic head holder | WUSTL Instrument Machine Shop | N/A | In-house product |
sterile drapes | Cardinal Health | 7553 | |
suction tube by Baron | Grace Medical | 034903FX 034905FX | #3 and #5 Suction |
tissue forceps adson brown | Grace Medical | 325112FX | |
Weitlander retractor | Olympus Grace Medical | BL200011 100313FX | |
xylazine | Akorn | 59399-110-20 |