Эта процедура описывает сбор дискретных замороженных областей мозга для получения высококачественного белка и РНК с использованием недорогих и общедоступных инструментов.
По мере того как наше вникание нейробиологии развивало, молекулярные анализы часто выполняются на малых зонах мозга such as медиальная префронтальная кора (mPFC) или accumbens ядра. Задача этой работы состоит в том, чтобы вскрыть правильную область при сохранении микросреды, которая будет рассмотрена. В этой статье мы описываем простой, недорогой метод с использованием ресурсов, легко доступных в большинстве лабораторий. Этот метод сохраняет нуклеиновой кислоты и белков, сохраняя ткани замороженными на протяжении всего процесса. Мозги разрезают на 0,5-1,0 мм с помощью матрицы мозга и устроены на замороженной стеклянной пластине. Ориентиры в каждом разделе сравниваются со ссылкой, такие как Аллен мышь мозга Атлас, и регионы вскрыты с помощью холодного скальпеля или биопсии удар. Ткань затем хранится при -80 градусах Цельсия до использования. Благодаря этому процессу крыса и мышь mPFC, ядро accumbens, дорсальный и брюшной гиппокамп и другие регионы были успешно проанализированы с помощью qRT-PCR и западных анализов. Этот метод ограничен областями мозга, которые могут быть определены четкими ориентирами.
Эта работа иллюстрирует вскрытие замороженных областей мозга для извлечения высококачественной нуклеиновой кислоты или белка с помощью ссылки, такие как Аллен Мышь мозга Атлас1, в качестве руководства. В этом методе мозги замораживаются вспышкой и хранятся при -80 градусов по Цельсию для последующего отделения и вскрытия при сохранении в замороженном состоянии. Этот процесс позволяет исследователю собрать большое количество мозгов за один сеанс, а затем вскрыть их для точного сбора нескольких областей мозга.
Точный сбор областей мозга, представляющих интерес (ROIs) часто требуется при ответе на вопросы, связанные с геном и выражением белка. В то время как фармакология, электрофизиология и оптогенетика могут быть использованы на wildtype или генетически модифицированных грызунов, чтобы помочь прояснить молекулярные изменения, лежащие в основе наблюдаемого поведения2,3,4, измерение индуцированных изменений в транскриптомах и протеом часто используется для поддержки этих выводов. Такие методы, как количественные обратной транскрипции полимеразной цепной реакции (RT-qPCR), западные blotting, RNAseq5, MAPSeq6 и HPLC7 являются надежными и относительно низкими по стоимости, что позволяет многим лабораториям для изучения индуцированных молекулярных изменений в малых областях мозга2,4,5,6.
Есть несколько способов извлечения и очищения нуклеиновой кислоты или белка из областей мозга8,,9,,10,,11,,12. Многие лаборатории собирают мозг регионов путем охлаждения и резки мозгов на льду во время сбора урожая9,13. Хотя такой подход может привести к высокому качеству нуклеиновой кислоты и белка, он несколько ограничен по времени, поскольку деградация в микроокружении тканей может происходить при таких температурах. Это может быть особенно верно при попытке вскрыть большое количество животных или roIs в один присест. Сохранение образцов замороженных помогает поддерживать молекулы-цели лабила, обеспечивая исследователю время, чтобы тщательно сравнить ориентиры с обеих сторон каждого раздела в попытке собрать относительно чистые образцы. Лазерный захват является еще одним способом сбора ткани для РНК или анализа белка из областей мозга10. Эта процедура превосходит механическое вскрытие в том, что очень маленькие и неправильной формы ROIs могут быть определены и изолированы. Однако лазерный захват ограничен использованием дорогостоящего оборудования и реагентов, занимает много времени, а также может быть более восприимчив к деградации образцов.
Вскрытие микропунда на замороженных тканях не ново. Ранние работы Миклоша Палковича и других подробно описывают основные методы14,,15. Эта презентация в значительной степени соответствует первоначальной работе, с некоторыми улучшениями для облегчения эффективности и сокращения расходов на оборудование, необходимое. Например, участки мозга сделаны в замороженном мозговом блоке, а не на криостате. Это приводит к более толстым секциям, что уменьшает количество секций, необходимых для сбора образцов окупаемое окупаемое инвестиций. Этот метод также вскрывает образцы на замороженной стеклянной пластине, которая сидит на сухом льду в изолированной коробке. Это создает под-замораживания этапе на скамейке, на которой работать. Разделы, расчлененные таким образом, легко манипулируют, что позволяет исследователю сравнивать обе стороны каждого раздела со ссылкой, чтобы ограничить загрязнение из регионов за пределами желаемой рентабельности инвестиций.
Преимущества этого протокола в том, что 1) мозг находится в замороженном состоянии на протяжении всего процесса, что помогает сохранить белок и нуклеиновой кислоты и дает исследователю время, чтобы тщательно собирать ROIs, и 2) реагенты, необходимые являются недорогими и находятся в большинстве лабораторий молекулярной биологии. В этом процессе целые мозги разделены до 0,5-1,0 мм в матрице мозга и помещаются на замороженную стеклянную пластину, которая постоянно охлаждается сухим льдом. Ориентиры, найденные в Атласе мозга Аллена1 или других атласах мозга16,17 используются для выявления областей, представляющих интерес, которые затем вскрыты с помощью либо холодный пунш или скальпель. Поскольку ткань никогда не оттаяла, регионы, собранные таким образом, обеспечивают высокое качество РНК и белка для анализа ниже по течению.
Эта работа описывает метод изолировать небольшие, специфические области мозга, ограничивая деградацию нуклеиновой кислоты и белка. Повреждение тканей мозга происходит быстро, как только организм умирает. Это частично связано с быстрым накоплением внеклеточного глутамата и в результ?…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана NIH, DA043982 и DA046196.
0.5 mm Mouse coronal brain matrice | Braintree Scientific | BS-SS 505C | Cutting block |
0.5 mm Rat coronal brain matrice | Braintree Scientific | BS-SS 705C | Cutting block |
1.0 mm Biopsy Punch with plunger | Electron Microscopy Sciences | 69031-01 | |
1.5 mL microcentrifuge tubes | Dot Scientific | 229443 | For storing frozen ROIs |
1.5 mm Biopsy Punch with plunger | Electron Microscopy Sciences | 69031-02 | |
2.0 mm Biopsy Punch with plunger | Electron Microscopy Sciences | 69031-03 | |
4-12% NuPage gel | Invitrogen | NPO323BOX | protein gradient gel |
Bioanalyzer System | Agilent | 2100 | RNA analysis system |
Dounce tissue grinder | Millipore Sigma | D8938 |
Glass tissue homogenizer |
Dry Ice | |||
Fiber-Lite | Dolan-Jenner Industries Inc. | Model 180 | Cool lamp |
Glass plates | LabRepCo | 11074010 | |
HALT | ThermoFisher | 78440 | protease inhibitor cocktail |
Low profile blades | Sakura Finetek USA Inc. | 4689 | |
mouse anti-actin antibody | Developmental Studies Hybridoma Bank | JLA20 | Antibody |
Nanodrop | Thermo Scientific | 2000C | Used in initial RNA purity analysis |
No. 15 surgical blade | Surgical Design Inc | 17467673 | |
Odyssey Blocking buffer | LiCor Biosciences | 927-40000 | Western blocking reagent |
Omni Tissue Master 125 | VWR | 10046-866 | Tissue homogenizer |
rabbit anti-KCC2 antibody | Cell Signaling Technology | 94725S | Antibody |
RNA Plus Micro Kit | Qiagen | 73034 | Used to extract RNA from small tissue samples |
RNaseZap | Life Technologies | AM9780 | |
Scalpel handle | Excelta Corp. | 16050103 | |
Standard razor blades | American Line | 66-0362 | |
TRIzol Reagent | ThermoFisher Scientific | 15596026 | Used to extract RNA from tissue |