In deze studie hebben we de mogelijkheden voor gegevensanalyse van het DARTS experiment verbeterd door de veranderingen in de eiwit stabiliteit te monitoren en de affiniteit van eiwit-ligand interacties te schatten. De interacties kunnen in twee krommen worden uitgezet: een Proteolytische curve en een Dosisafhankelijkheid. We hebben mTOR-rapamycine interactie gebruikt als een voorbeeldige zaak.
Drug Affinity responsieve doel stabiliteit (DARTS) is een robuuste methode voor de detectie van nieuwe kleine molecuul eiwit targets. Het kan worden gebruikt om bekende kleine molecuul-eiwit interacties te controleren en om potentiële eiwit doelen voor natuurlijke producten te vinden. In vergelijking met andere methodes gebruikt DARTS native, ongewijzigde, kleine moleculen en is eenvoudig en eenvoudig te bedienen. In deze studie hebben we de mogelijkheden voor gegevensanalyse van het DARTS experiment verder verbeterd door de veranderingen in de eiwit stabiliteit te monitoren en de affiniteit van eiwit-ligand interacties te schatten. De eiwit-ligand interacties kunnen in twee krommen worden uitgezet: een Proteolytische curve en een dosis-afhankings curve. We hebben de interactie mTOR-rapamycine gebruikt als een voorbeeldige Case voor de totstandkoming van ons protocol. Uit de Proteolytische curve zagen we dat de proteolyse van mTOR door pronase werd geremd door de aanwezigheid van rapamycine. De dosis-afhankelijkheids curve stelde ons in staat om de bindingsaffiniteit van rapamycine en mTOR te schatten. Deze methode is waarschijnlijk een krachtige en eenvoudige methode voor het nauwkeurig identificeren van nieuwe doel eiwitten en voor de optimalisatie van de betrokkenheid van het doel van de drug.
Identificeren van kleine molecule doelwit eiwitten is essentieel voor het mechanistische begrip en de ontwikkeling van potentiële therapeutische geneesmiddelen1,2,3. Affiniteits chromatografie, als een klassieke methode voor het identificeren van de doel eiwitten van kleine moleculen, heeft goede resultaten opgeleverd4,5. Echter, deze methode heeft beperkingen, in die chemische modificatie van kleine moleculen resulteert vaak in verminderde of veranderde bindende specificiteit of affiniteit. Om deze beperkingen te overwinnen, zijn onlangs verschillende nieuwe strategieën ontwikkeld en toegepast om de kleine molecuul doelen te identificeren zonder chemische modificatie van de kleine moleculen. Deze directe methoden voor de identificatie van het label vrij kleine moleculen omvatten responsieve doel stabiliteit (DARTS)6, stabiliteit van eiwitten uit oxidatiemiddelen (sprox)7, cellulaire thermische verschuiving assay (cetsa)8 ,9, en thermische Proteoom profilering (TPP)10. Deze methoden zijn zeer voordelig omdat ze natuurlijke, ongewijzigde kleine moleculen gebruiken en alleen op directe bindende interacties vertrouwen om doel eiwitten11te vinden.
Onder deze nieuwe methoden, darts is een relatief eenvoudige methodologie die gemakkelijk kan worden overgenomen door de meeste Labs12,13. DARTS is afhankelijk van het concept dat ligand-gebonden eiwitten een gemodificeerde gevoeligheid voor enzymatische afbraak ten opzichte van ongebonden eiwitten aantonen. Het nieuwe doeleiwit kan worden gedetecteerd door onderzoek van de veranderde band in SDS-PAGE gel door middel van vloeistofchromatografie-massaspectrometrie (LC-MS/MS). Deze aanpak is met succes geïmplementeerd voor de identificatie van eerder onbekende doelwitten van natuurlijke producten en geneesmiddelen14,15,16,17,18, 19. het is ook krachtig als middel om te schermen of te valideren binding van verbindingen met een specifiek eiwit20,21. In deze studie presenteren we een verbetering van het experiment door het monitoren van de veranderingen in de eiwit stabiliteit met kleine moleculen en het identificeren van eiwit-ligand bindende verwantschappen. We gebruiken mTOR-rapamycine interactie als voorbeeld om onze aanpak te demonstreren.
DARTS maakt het mogelijk om kleine molecuul doelen te identificeren door het beschermende effect van eiwitbinding tegen afbraak te benutten. DARTS vereist geen chemische modificatie of immobilisatie van het kleine molecuul26. Hierdoor kunnen kleine moleculen worden gebruikt om hun directe bindende eiwit doelen te bepalen. Standaard beoordelingscriteria voor de klassieke Darts methode zijn onder meer gelkleuring, massaspectrometrie en Western blotting12,<sup class…
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd deels gesteund door NIH Research Grants R01NS103931, R01AR062207, R01AR061484, en een DOD Research Grant W81XWH-16-1-0482.
100X Protease inhibitor cocktail | Sigma-Aldrich | P8340 | Dilute to 20X with ultrapure water |
293T cell line | ATCC | CRL-3216 | DMEM medium with 10% FBS |
Acetic acid | Sigma-Aldrich | A6283 | |
BCA Protein Assay Kit | Thermo Fisher | 23225 | |
Calcium chloride | Sigma-Aldrich | C1016 | |
Cell scraper | Thermo Fisher | 179693 | |
Coomassie Brilliant Blue R-250 Staining Solution | Bio-Rad | 1610436 | |
Dimethyl sulfoxide(DMSO) | Sigma-Aldrich | D2650 | |
GraphPad Prism | GraphPad Software | Version 6.0 | statistical analysis and drawing software |
Hydrochloric acid | Sigma-Aldrich | H1758 | |
ImageJ | National Institutes of Health (NIH) | Version 1.52 | image processing and analysis software |
M-PER Cell Lysis Reagent | Thermo Fisher | 78501 | |
Phosphate-buffered saline (PBS) | Corning | R21-040-CV | |
Pronase | Roche | PRON-RO | 10 mg/ml |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S7653 | |
Sodium fluoride | Sigma-Aldrich | S7920 | |
Sodium orthovanadate | Sigma-Aldrich | 450243 | |
Sodium pyrophosphate | Sigma-Aldrich | 221368 | |
Trizma base | Sigma-Aldrich | T1503 | adjust to pH 8.0 |
β-glycerophosphate | Sigma-Aldrich | G9422 |