כאן, אנו מציגים שיטה עבור תרבות vivo ex של עצמות murine ארוך בשלבים העוברי והיילוד, מתאים לניתוח העצם ופיתוח הסחוס הומאוסטזיס בתנאים מבוקרים תוך לכידה בתהליך vivo.
עצמות ארוכות הן מבנים מורכבים ודינמיים, אשר נובעים endochondral אוסיפיקציה דרך הסחוס ביניים. הגישה המוגבלת לעצמות אנושיות בריאות הופכת ערך במיוחד לשימוש בדגמי היונקים, כגון עכבר ועכברוש, כדי לבדוק היבטים שונים של צמיחת העצם והומאוסטזיס. בנוסף, הפיתוח של כלים גנטיים מתוחכמים בעכברים מאפשר מחקרים מורכבים יותר של צמיחה עצם ארוך מבקש הרחבה של טכניקות המשמשות לחקר צמיחת העצם. כאן, אנו מציגים פרוטוקול מפורט עבור התרבות לשעבר vivo murine העצם, אשר מאפשר את המחקר של העצם ואת הסחוס באופן הדוק מבוקרת תוך לכידה של רוב בתהליך vivo. השיטה המתוארת מאפשרת את התרבות של מגוון העצמות, כולל עצמות השוקה, עצם הירך והמסרק, אך אנו מתמקדים בעיקר בתרבות הבאליס. כמו-כן, ניתן להשתמש בה בשילוב עם טכניקות אחרות, כגון הדמיה בזמן הדמייה חיה או טיפול תרופתי.
צמיחת איברים צריך להיות מכוון הדוק כדי למנוע את המראה של הפרעות גדילה, וכרוך בוויסות של סוגי תאים מרובים, מסלולים מולקולריים ומוצלב בין חלקים שונים של הגוף. טכניקות הדמיה חיוניים כדי לטפל בשינויים המתרחשים במשך הזמן בעובר הולך וגדל, הן בתנאים נורמליים, כמו גם לאחר המושרה הנגרמת במערכת. עוברים עם התפתחות תוך רחמי, כגון מודלים מכרסם בשימוש נרחב, להציג אתגר נוסף עבור הדמיה חיה וטיפול בסמים, אשר ניתן להתגבר חלקית על ידי שימוש בטכניקות לשעבר התרבות הvivo. כדי ללכוד בהצלחה את התהליכים הvivo ולהשיג תוצאות משמעותיות, זה הופך להיות חיוני כדי למצוא את התנאים הנכונים culturing עבור כל איבר או רקמה.
רוב העצמות של השלד היונקים לגדול דרך endochondral האוסיפיקציה, שם הסחוס העובריים (מורכב של תאים המכונים כונדרוציטים) כוננים האורך והוא מוחלף בהדרגה על ידי עצם. תהליך זה קורה בלוחות צמיחה, הממוקם בסוף העצמות הארוכות, שבו שלושה אזורים ניתן להבחין: נח, מתרבים, ו יפרטרופית1,2. ראשית, כונדרוציטים עגולות באזור מנוחה המעבר לתוך כונדרוציטים האופניים טורי באזור ההתרבות. בשלב הבא של בידול, כונדרוציטים אלה להפוך יפרטרופית ולהתחיל הפרשה סוג X קולגן. כונדרוציטים יפרטרופית לארגן את הצעדים הבאים של האוסיפיקציה: הם מפרישות מולקולות איתות מפתח, כגון גורם הצמיחה רקמת חיבור, עצם מורפולפרוטאין חלבונים ו קיפוד הודי, ולהפנות את המינרליזציה של המטריצה, לגייס כלי הדם לחלק המרכזי של העצם, ו, על אפופטוזיס, לאפשר אוסטאופתית (העצם להרכיב תאים) כדי לפלוש למטריקס כדי ליצור את מרכז האוסיפיקציה העיקרי3,4. מטריקס מינרליזציה מקלה על חדירת כלי הדם שדרכו האוסטאופה מחליפים את הסחוס היורד בעזרת מטריצת עצם5. האוסטאופתי ביותר לפלוש מטריצה הסחוס מן perichondrium, שכבה סיבי העוטפת את הסחוס6. לחילופין, שיעור של כונדרוציטים יפרטרופית מסוגלים לשרוד ולשנות את היכולת לעבור מעבר לעצמות7,8,9. האורך הסופי של העצם נובע הצמיחה המצטברת של הסחוס חולף, שיעור הצמיחה שלו בתורו תלוי במספר ובגודל של יפרטרופית כונדרוציטים, ואת ייצור המטריצה שלהם10. בנוסף, הוכח לאחרונה כי משך השלב האחרון של היפרפרס התואם לאורך הסופי של העצם11. לכן, רגולציה הדוקה של התפשטות והבידול של תאים אלה נדרש כדי להבטיח גודל העצם הנכון.
למרות הידע הניכר שנרכש לאורך השנים על הארגון והפיתוח של לוחות הצמיחה, מרבית המסקנות הללו מבוססות על התבוננות בסעיפים היסטלוגיים קבועים. שימוש ברקמות מספק מידע רב ערך אודות תהליך זה, אך ניתן לרכבו עם חפצים טכניים, כך שהוא לא יכול לשמש תמיד באופן אמין להערכת שינויים מורפולוגיים או בגודל בין שלבים שונים. בנוסף, כמו צמיחת העצם הוא תהליך דינמי, התמונות דו מימדי סטטי (2D) מציעים תובנה מוגבלת לתוך התנועה של התאים בצלחת הצמיחה, בעוד הדמיה הזמן לשגות על רקמה חיה יכול להציע מידע חשוב על ההתנהגות של כונדרוציטים בצלחת הצמיחה.
כל המגבלות הללו ניתן לפתרון פוטנציאלי באמצעות תרביות עצם vivo לשעבר. בעוד שפרוטוקולי תרבות העצם פותחו לפני זמן מה, הם הוחלו על עצמות ארוכות של מורטין. רוב המחקרים משתמשים בעצמות האפרוח בשל היתרונות הטכניים המוצעים על-ידי דגם האפרוח12,13. תרבויות אורגאוטימית (ממשק אוויר/נוזלים) הוחלו על מורים עובריים, שהיו מתוחזקים בתרבות במשך 10 ימים14. הכלים הגנטיים המתוחכמים הזמינים בעכבר להפוך את המודל הזה מאוד מושך לשמש לשעבר בתרבות העצם vivo. המחקרים שהשתמשו בעכברים כדי להסתכל על גדילה העצם עבד בעיקר עם עצמות המסרק15, כנראה בשל גודלם הקטן ומספרים גדולים יותר המתקבלים לעובר16. למרות שנחשב באופן מסורתי עצמות ארוכות, מטאטסי להיכנס הזדקנות (מאופיין התפשטות מופחתת אינוולוציה של צלחת הצמיחה17) מוקדם יותר מאשר עצמות ארוכות אחרות vivo, ולכן הצמיחה המתמשכת שלהם לשעבר vivo אינו ממש את התהליך הvivo. לצורך מאמר זה, נשתמש במונח עצמות ארוכות לעצמות מאזורי הגפיים האבובי והביניים. מספר מחקרים קודמים השתמשו בעצמות murine ארוך, כגון שוקה, בתרבויות vivo לשעבר נצפתה צמיחה משמעותית של הסחוס אבל מעט ההתקשות18. השתמשנו גם בתרבויות הבאליס לאחרונה, בעיקר כדי ללמוד כchondrocyte dynamics19. מחקרים אחרים השתמשו בראשי הירך מעכברים צעירים20 או רק את החלק המרוחק של עצם הירך לתרבות21. כמה יצירות אחרונות יותר בהצלחה לשלב את התרבות הvivo ex של עצמות מלאות עם הדמיה זמן ההדמיה כדי לרכוש תלת מימדי (3d) סרטים של כונדרוציטים ברקמת העכבר חי22,23. המחברים הצליחו להתבונן בעבר אירועים מבלי שיבחינו בסידור מחדש של כונדרוציטים לאזור מתרבים23 בדוגמה טובה של היישום הפוטנציאלי של תרבות vivo ex העצם. החלופה, כלומר, ניתוח תמונות סטטיות, דורשת טכניקות עקיפות ומורכבות. זה היה לידי ביטוי על ידי מחקר שנערך לאחרונה הערכת החשיבות של שיבוטים transversally לצמיחת הסחוס, שם מעקב גנטי עם זנים רבים העכבר העיתונאי בשילוב עם מידול מתמטי שימשו24. לכן, התרבות הvivo לשעבר עשוי לעזור להשיג תובנה תהליכים דינמיים בצורה מהירה וישירה יותר.
כאן, אנו מציגים שיטה לתרבות ארוכה של עצמות ממורין, אשר ניתן לשלב עם טיפולים מולקולריים שונים ו/או עם הדמיה בזמן ההדמיה החיה. פרוטוקול זה מתאים את השיטות המשמשות בדוחות קודמים15,18,25, אך מטפל בנושאים נוספים ומתמקד בעצמות ארוכות כגון השוקה, במקום בעצמות המסרק. לבסוף, הוא חוקר את הפוטנציאל של שימוש מבחינה סטטיסטית השוואות לזווג חזק על ידי culturing עצמות שמאל וימין בנפרד בנוכחות של חומרים שונים.
שיטות התרבות vivo העצם שימשו זמן מה כדי להעריך את הביולוגיה של צמיחת העצם28, אבל כבר לעתים רחוקות להחיל את העצמות הארוכות murine. עם התפתחות של טכניקות דימות, תרבות העצם vivo ex מציעה דרך אטרקטיבית לחקור את צמיחת העצם בזמן אמת בהגדרה הדומה היטב בתנאים vivo. בתרחיש זה, חשוב להגדיר את התנאים…
The authors have nothing to disclose.
היינו רוצים להודות אלכסנדרה ג’וינר על התמיכה שלה כאשר הפרוטוקול הזה היה להיות מבוסס, Edwina מקגלין ו-יי צ’נג צ’אנג עבור שיתוף חומצה retinoic. המכון האוסטרלי לרפואה רגנרטיבית נתמך על ידי מענקים מממשלת המדינה של ויקטוריה והממשלה האוסטרלית.
5-Ethynyl-2'-deoxyuridine | Santa Cruz | CAS 61135-33-9 | |
5-Bromo-2′-deoxyuridine | Sigma | B5002 | |
50mL Conical Centrifuge Tubes | Falcon | 352070 | |
60 mm TC-treated Center Well Organ Culture Dish, 20/Pack, 500/Case, Sterile | Falcon | 353037 | |
Adobe Photoshop | Adobe | CS4 | |
Ascorbic acid | Sigma | A92902 | |
Base unit for the scope | Zeiss | 435425-9100-000 | |
Betaglycerophosphate | Sigma | G9422 | |
Binocular scope | Zeiss | STEMI-2000 | |
Bovine Serum Albumin (BSA) fraction v | Roche/Sigma | 10735086001 | |
DigiRetina 500 camera | Aunet | ||
Dissection kit | Cumper Robbins | PFS00034 | |
DMEM | Gibco | 11960044 | |
DMSO | Sigma | D8418 | |
Eppendorf 2-mL tubes | Eppendorf | 0030120094 | |
Ethanol 96% | Merk | 159010 | |
Forceps Dumont#5 Inox08 | Fine Science Tools | T05811 | |
Heracell 150 CO2 incubator | Thermo Fisher | 51026282 | |
Minimum Essential Medium Eagle | Sigma | M2279 | |
Multiwell 24 well | Falcon | 353047 | |
Paraformaldehyde | Sigma | 158127 | |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Gibco | 15140-122 | |
Plastic pipettes 1mL Sterile Individually wrapped | Thermo | 273 | |
Syringe filter 0.2 um | Life Sciences | PN4612 | |
Terumo syringe 20 mL | Terumo | DVR-5174 | |
Tretinoin (retinoic acid) | Sigma | PHR1187-3X | |
Trinocular scope | Aunet | AZS400T |