概要

Polysome profilage en Leishmania, les cellules humaines et des testicules de souris

Published: April 08, 2018
doi:

概要

L’objectif global de la technique de profilage polysome est analyse de l’activité traductionnelle de différents mRNAs ou transcriptome ARNm au cours de la synthèse des protéines. La méthode est importante pour les études de règlement de la synthèse de protéine, l’activation de la traduction et répression en santé et les maladies humaines multiples.

Abstract

Expression de la protéine appropriée au bon moment et dans les bonnes quantités est la base de la fonction des cellules normales et de survie dans un environnement en évolution rapide. Pendant longtemps, les études d’expression de gène étaient dominées par la recherche au niveau transcriptionnel. Cependant, les niveaux d’équilibre des ARNm ne concordent pas bien avec la production de protéines et la traductibilité du mRNA varie grandement selon les conditions. Chez certains organismes, comme le parasite Leishmania, l’expression de la protéine est réglementée principalement au niveau traductionnel. Des études récentes ont démontré que le dérèglement de cette protéine traduction est associé avec le cancer, métabolique, neurodégénératives et autres maladies humaines. Polysome profilage est une méthode puissante pour étudier la régulation traduction protéique. Il permet de mesurer l’État translationnelle des ARNm individuels ou examiner la traduction sur une échelle de tout le génome. La base de cette technique est la séparation des polysomes, ribosomes, leurs sous-unités et l’ARNm libre lors de la centrifugation d’un cytoplasme lysat par un gradient de saccharose. Nous présentons ici un polysome universel profilage protocole utilisé sur trois modèles différents – parasite Leishmania majeur, des cellules humaines cultivées et tissus d’origine animales. Leishmania cellules poussent librement en suspension et des cellules humaines cultivées croissent en monocouche adhérente, tandis que des testicules de souris représentent un échantillon de tissus d’origine animale. Ainsi, la technique est adaptée à l’ensemble de ces sources. Le protocole pour l’analyse des fractions polysomique permet la détection des ARNm individuels par RT-qPCR, protéines par Western blot et l’analyse des ARN ribosomiques par électrophorèse. La méthode peut être étendue par examen des mRNAs association avec le ribosome au niveau du transcriptome par profonde RNA-seq et analyse des protéines associées aux ribosomes par spectrométrie de masse des fractions. La méthode peut être facilement ajustée aux autres modèles biologiques.

Introduction

Régulation de l’expression de gène dans les cellules est contrôlée par des mécanismes transcriptionnels, post-transcriptionnel et post-traductionnelle. Les progrès dans le séquençage en profondeur RNA permettent l’étude des niveaux d’ARNm stationnaire sur une échelle de tout le génome à un niveau sans précédent. Cependant, les découvertes récentes ont révélé que d’ARNm stationnaire n’est pas toujours corrélée avec la production de protéine1,2. Le sort d’un relevé de notes individuel est très complex et dépend de nombreux facteurs comme des stimuli internes/externes, stress, etc.. Régulation de l’expression génique au cours de la synthèse des protéines fournit une autre couche de contrôle d’expression nécessaire pour une réponse rapide dans des conditions changeantes. Polysome (ou « polyribosomique »), le profilage, la séparation et la visualisation de traduire activement des ribosomes, est une méthode puissante pour étudier la régulation de la synthèse protéique. Bien que, ses premières applications expérimentales est apparu dans les années 19603, polysome profilage est actuellement une des techniques plus importants en protéines translation studies4. Seul ARNm peut se traduire par plus d’un ribosome conduisant à la formation d’un polysome. Relevés de notes peuvent être calés sur les ribosomes avec cycloheximide5 et ARNm contenant des nombres différents de polysomes se distingue dans le processus de fractionnement polysome de saccharose ultracentrifugation dégradé6,7 , 8 , 9. l’analyse des fractions polysomique RNA puis permet de mesurer des changements dans les États translationnelles de différents mRNAs à l’échelle du génome et au cours de différentes conditions physiologiques4,7, 10. la méthode a été également utilisée pour révéler les rôles de 5′ UTR et 3′ UTR des séquences dans le contrôle de l’ARNm traduisibilité11, examiner le rôle des miARN dans la répression traductionnelle12, découvrir des défauts dans la biogenèse des ribosomes13 et comprendre le rôle des protéines associées aux ribosomes avec des maladies humaines14,15. Au cours de la dernière décennie, un rôle croissant pour la régulation de l’expression génique au cours de la traduction a émergé qui illustre son importance dans les maladies humaines. Les éléments de preuve pour le contrôle de la traduction dans le cancer, métabolique et maladies neurodégénératives est écrasante15,16,17,18. Par exemple, le dérèglement du contrôle de la traduction eIF4E dépendant contribue à autisme associés déficits15 et FMRP participe au blocage des ribosomes sur mRNA liés à l’autisme,14. Ainsi, polysomique de profilage est un outil très important pour l’étude des défauts de régulation traductionnelle dans plusieurs maladies humaines.

Analyse des protéines des fractions polysomique dans différentes conditions physiologiques dissèque la fonction des facteurs associés aux ribosomes pendant la traduction. La technique de profilage polysome a été utilisée dans de nombreuses espèces, y compris les levures, les cellules de mammifères, plantes et protozoaires10,19,20,21. Parasites protozoaires comme Trypanosoma et Leishmania pièce contrôle transcriptionnel limité de l’expression génique. Leurs génomes sont organisés en groupes de gènes polycistronique qui n’ont pas réglementés promoteur de transcription22. Au lieu de cela, l’expression des gènes du développement est surtout contrôlée au niveau de la traduction des protéines et à la stabilité des ARNm dans trypanosomatide espèce23,24. Compréhension du contrôle de la traduction en l’absence de régulation de la transcription est donc particulièrement importante pour ces organismes. Polysomique de profilage est un outil puissant pour étudier la régulation post-transcriptionnelle de l’expression génique à Leishmania25,26,27,28.

Les récents progrès dans la détection des niveaux d’ARNm individuels par le real time PCR quantitative (RT-qPCR) et pleine transcriptome par séquençage de nouvelle génération, ainsi que technologies de protéomique, apporte la résolution et les avantages du profilage polysomique à un nouveau niveau. L’utilisation de ces méthodes peut être étendue par l’analyse des différentes fractions polysomique par séquençage en RNA profondeur combiné à l’analyse protéomique pour surveiller l’État translationnelle de cellules sur une échelle de tout le génome. Cela permet l’identification de nouveaux acteurs moléculaires régissant la traduction dans différentes conditions physiologiques et pathologiques. Nous présentons ici un polysome universel profilage protocole utilisé sur trois modèles différents : le parasite Leishmania majeur, des cellules humaines cultivées et tissus d’origine animales. Nous présentons des conseils sur la préparation des lysats de cellules de différents organismes, l’optimisation des conditions du gradient, choix des inhibiteurs de la RNase et l’application de la RT-qPCR, Western blot et électrophorèse RNA pour analyser les fractions de polysome dans cette étude.

Protocol

Tous les traitements animales et la manipulation des tissus obtenus dans l’étude ont été réalisés selon les protocoles approuvés par le Comité de l’urbanisme à la Texas Tech University Health Science Center, selon le National Institutes of et d’institutionnels animalier Lignes directrices de santé bien-être animal, numéro de protocole 96005. S’il vous plaît sacrifier des animaux vertébrés et préparer les tissus selon les lignes directrices animalier institutionnel et du Comité de l’emploi. Si la…

Representative Results

Dans cette étude, nous décrivons l’application de la technique de profilage polysomique à trois sources différentes : parasite Leishmania majeurdes cellules humaines cultivées et des testicules de souris. Leishmania cellules poussent librement dans les milieux liquides en suspension, des cellules humaines cultivées se développent dans la monocouche adhérente sur les plaques et les testicules de souris représentent un échantillon de tissu. La méthode peut ê…

Discussion

Fractionnement de polysome par gradient de saccharose combinés avec de l’ARN et analyse des protéines des fractions est une méthode puissante pour analyser translationnelle statut des différents mRNAs ou le translatome entier ainsi que des rôles de facteurs protéiques régulant translationnelle machines au cours de l’état normal, physiologique ou une maladie. Polysomique de profilage est une technique particulièrement adaptée pour étudier la régulation traductionnelle organismes tels que les trypanosomatid…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs remercient Ching Lee pour aide à l’enregistrement audio. La recherche a été soutenue par les fonds de démarrage de la Texas Tech University Health Sciences Center et par le centre d’Excellence pour la Neuroscience translationnelle et thérapeutique (CTNT) accorde le PN-CTNT 2017-05 AKHRJDHW à A.L.K. ; en partie par des subventions des NIH R01AI099380 K.Z. James C. Huffman et Kristen R. Baca étaient des érudits CISER (Centre pour l’intégration des souches éducation et recherche) et appuyés par le programme.

Materials

Instruments:
Gradient master Biocomp Instruments Inc. 108
Piston Gradient Fractionator Biocomp Instruments Inc. 152
Fraction collector Gilson, Inc. FC203B
NanoDrop One Thermo Scientific NanoDrop One
Nikon inverted microscope Nikon ECLIPSE Ts2-FL/Ts2
2720 Thermal Cycler Applied Biosystems by Life Technologies 4359659
CO2 incubator Panasonic Healthcare Co. MCO-170A1CUV
HERATHERM incubator Thermo Scientific 51028063
Biological Safety Cabinet, class II, type A2 NuAire Inc. NU-543-400
Revco freezer Revco Technologies ULT1386-5-D35
Beckman L8-M Ultracentifuge Beckman Coulter L8M-70
Centrifuge Eppendorf 5810R
Centrifuge Eppendorf 5424
Ultracentrifuge Rotor SW41 Beckman Coulter 331362
Swing-bucket rotor Eppendorf A-4-62
Fixed angle rotor Eppendorf F-45-30-11
Quant Studio 12K Flex Real-Time PCR machine 285880228 Applied Biosystems by life technologies 4470661
TC20 Automated cell counter Bio-Rad 145-0102
Hemacytometer Hausser Scientific 02-671-51B
Software 
Triax software  Biocomp Instruments Inc.
Materials:
Counting slides, dual chamber for cell counter Bio-Rad 145-0011
1.5 mL microcentrifuge tube USA Scientific 1615-5500
Open-top polyclear centrifuge tubes, (14 mm x 89 mm) Seton Scientific 7030
Syringe, 5 mL BD 309646
BD Syringe 3 mL23 Gauge 1 Inch Needle BD 10020439
Nunclon Delta Surface plate, 14 cm Thermo Scientific 168381
Nunclon Delta Surface plate, 9 cm Thermo Scientific 172931
Nalgene rapid-flow 90mm filter unit, 500 mL, 0.2 aPES Thermo Scientific 569-0020
BioLite 75 cm3 flasks Thermo Scientific 130193
Nunc 50 mL conical centrifuge tubes Thermo Scientific 339653
Chemicals:
Trizol LS Ambion by Life Technologies 10296028
HEPES Fisher Scientific BP310-500
Trizma base Sigma T1378-5KG
Dulbecco's Modified Eagle's Medium-high glucose (DMEM) Sigma D6429-500ML
Fetal Bovine Serum (FBS) Sigma F0926-50ML
Penicillin-Streptomycin (P/S) Sigma P0781-100ML
Lipofectamine 2000 Invitrogen 11668-019
Dulbecco's phosphate buffered saline (DPBS) Sigma D8537-500ML
Magnesium chloride hexahydrate (MgCl2x6H2O) Acros Organics AC413415000
Potassium Chloride (KCl) Sigma P9541-500G
Nonidet P 40 (NP-40) Fluka (Sigma-Aldrich) 74385
Recombinant Rnasin Ribonuclease Inhibitor Promega N2511
Heparin sodium salt Sigma H3993-1MU
cOmplete Mini EDTA-free protease inhibitors Roche Diagnostics 11836170001
Glycogen Thermo Scientific R0551
Water Sigma W4502-1L
Cycloheximide Sigma C7698-1G
Chloroform Fisher Scientific 194002
Dithiotreitol (DTT) Fisher Scientific BP172-5
Ethidium Bromide Fisher Scientific BP-1302-10
Ethylenediaminetetraacetic acid disodium dehydrate (EDTA) Fisher Scientific S316-212
Optimem Life Technologies 22600050
Puromycin dihydrochloride Sigma P8833-100MG
Sucrose Fisher Scientific S5-3KG
Trypsin-EDTA solution Sigma T4049-100ML
Hgh Capacity cDNA Reverse Transcriptase Kit Applied Biosystems by life technologies 4368814
Power SYBR Green PCR Master Mix Applied Biosystems by life technologies 4367659
HCl Fisher Scientific A144SI-212
Isopropanol Fisher Scientific BP26324
Potassium Hydroxide (KOH) Sigma 221473-500G
Anti-RPL11 antibody Abcam ab79352
Ribosomal protein S6 (C-8) antibody Santa Cruz Biotechnology Inc. sc-74459
1xM199 Sigma M0393-10X1L
Lithium cloride Sigma L-9650
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Fisher Scientific D128-500
Gel Loading Buffer II Thermo Scientific AM8546G
UltraPure Agarose Thermo Scientific 16500-100
Trichloracetic acid (TCA) Fisher Scientific A322-100
SuperSignal West Pico PLUS chemiluminescent substrate Thermo Scientific 34580
Formaldehyde Fisher Scientific BP531-500
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) Sigma L5750-1KG
Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) Sigma P7626-5G
RNeasy Mini kit Qiagen 74104
Adenosine 5′-triphosphate disodium salt hydrate (ATP) Sigma A1852-1VL
Cytosine 5'-triphosphate disodium salt hydrate (CTP) Sigma C1506-250MG
Uridine 5'-triphosphate trisodium salt hydrate (UTP) Sigma U6625-100MG
Guanosine 5'-triphosphate sodium salt hydrate (GTP) Sigma G8877-250MG
SP6 RNA Polymerase NEB M0207S
Pyrophoshatase Sigma I1643-500UN
Spermidine Sigma S0266-1G

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記事を引用
Karamysheva, Z. N., Tikhonova, E. B., Grozdanov, P. N., Huffman, J. C., Baca, K. R., Karamyshev, A., Denison, R. B., MacDonald, C. C., Zhang, K., Karamyshev, A. L. Polysome Profiling in Leishmania, Human Cells and Mouse Testis. J. Vis. Exp. (134), e57600, doi:10.3791/57600 (2018).

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