Aqui, apresentamos um protocolo para gerar um modelo de rato quimérico fígado humano de hipercolesterolemia familiar, usando hepatócitos de células-tronco derivadas de humanas pluripotentes induzidas. Este é um modelo valioso para testar novas terapias para hipercolesterolemia.
Hipercolesterolemia familiar (FH) é principalmente causada por mutações do receptor (LDLR) de lipoproteína de baixa densidade e resulta em um aumento do risco de doença cardiovascular precoce devido à marcada elevação de LDL colesterol (LDL-C) no sangue. As estatinas são a primeira linha de drogas hipolipemiantes para tratamento de FH e outros tipos de hipercolesterolemia, mas estão surgindo novas abordagens, em particular PCSK9 anticorpos, que agora estão sendo testados em ensaios clínicos. Para explorar novas abordagens terapêuticas para FH, novas drogas ou novas formulações, nós precisamos apropriado na vivo de modelos. No entanto, diferenças nos perfis metabólicos lipídios em comparação com os seres humanos são dos principais problemas dos modelos animais disponíveis de FH. Para resolver esse problema, geraram um modelo de rato quimérico fígado humano usando células-tronco pluripotentes FH induzida (iPSC)-derivado de hepatócitos (iHeps). Utilizamos camundongos/Ldlr– / –/Rag2– / –/Il2rg– / – (LRG) para evitar rejeição imune de células humanas transplantadas e avaliar o efeito do LDLR-iHeps deficientes em um LDLR nulo de plano de fundo. Transplantado FH iHeps poderíamos repovoar a 5-10% do fígado do rato LRG baseado na coloração de albumina humana. Além disso, o iHeps engrafted respondeu às drogas hipolipemiantes e recapitulada observações clínicas de maior eficácia de anticorpos PCSK9 comparado com estatinas. Nosso modelo de fígado humano quimérico, portanto, poderia ser útil para testes pré-clínicos de novas terapias para FH. Usando o mesmo protocolo, semelhantes humanos fígados quiméricoes ratos para outras variantes genéticas de FH, ou mutações correspondente a outras doenças hereditárias do fígado, também pode ser gerado.
Receptor da lipoproteína de baixa densidade (LDLR) capta o colesterol LDL (LDL-C) no sangue de modular a síntese de colesterol no fígado. Mutações no gene LDLR são a causa mais frequente de hipercolesterolemia familiar (FH)1. As estatinas têm sido, tradicionalmente, a primeira linha de medicação para tratar a FH e outros tipos de hipercolesterolemia (herdada ou adquirida). As estatinas inibem a 3-hidroxi-3-metilglutaril-coenzima A redutase para reduzir a síntese de colesterol no fígado2. Além disso, as estatinas aumentam os níveis de LDLR na superfície do hepatócito para promover plasma apuramento de LDL-C. No entanto, uma ressalva importante do tratamento com estatinas é que simultaneamente induzem a expressão de proprotein convertase subtilisina/hexin 9 (PCSK9), uma enzima que se liga ao LDLR para promover sua degradação3. Este efeito é responsável para a resposta insuficiente ou mesmo nula de estatinas observadas em muitos pacientes. Estudar este mecanismo, inesperadamente, levou à descoberta de uma forma alternativa para tratar a hipercolesterolemia. Anticorpos PCSK9 recentemente aprovados pela FDA estão sendo usados atualmente em ensaios clínicos e mostram maior eficácia e melhor tolerância do que as estatinas4. O sucesso de anticorpos PCSK9 implica também que pode haver outras possibilidades terapêuticas para modular a via de degradação de LDLR (além de PCSK9) em pacientes com hipercolesterolemia. Da mesma forma, não há interesse em desenvolver novos inibidores de PCSK9 diferente de anticorpos, por exemplo, siRNA oligos5.
Para testar novas terapias para FH e em geral qualquer outro tipo de hipercolesterolemia, modelos apropriados na vivo são necessários. Um grande problema do atual na vivo modelos, principalmente de ratos6 e7, de coelhos são suas diferenças fisiológicas com seres humanos. Crucialmente, esses problemas incluem um perfil metabólico diferente de lipídios. A geração de animais quimérico fígado humano8 pode ajudar a superar esta ressalva. O mouse quimérico fígado humano é um tipo de mouse “humanizado”, com seu fígado repovoado com hepatócitos humanos, por exemplo, de hepatócitos humanos primários (pHH)9. Um problema com poeira é que não podem ser expandidos ex vivo, rapidamente perdem sua função após o isolamento, e são uma fonte limitada. Uma alternativa a poeira é o uso de células-tronco pluripotentes induzidas (iPSC)-derivado de hepatócitos (iHeps)10. Nomeadamente, iPSCs são específicas do paciente e podem ser cultivadas indefinidamente, então iHeps podem ser produzidos sob demanda, que é uma vantagem significativa sobre pHH fresco. Além disso, iPSCs pode também ser facilmente alterado geneticamente com nucleases desenhador para corrigir ou introduzir mutações em um plano isogénicas para permitir mais fiel comparações11.
Humano rato quimérico fígado com poeira engrafted mostrar semelhanças aos seres humanos no fígado perfis metabólicos, respostas de droga e susceptibilidade à hepatite vírus infecção12. Isso os torna um bom modelo para estudar hiperlipidemia na vivo. Os modelos do rato mais utilizados baseiam-se o rato/Fah– / –/Rag2– / –/Il2rg– / – (FRG)13 e a uPA rato transgénico8, em que até 95% do mouse o fígado pode ser substituído por poeira. Curiosamente, um relatório recente descreveu um humano FH fígado quimérico mouse (baseado no mouse FRG) com poeira de um paciente carregando um homozigoto para a mutação LDLR 14. Neste modelo, os hepatócitos humanos repovoados não tinham nenhum LDLR funcional, mas os hepatócitos de rato residual, reduzindo assim o utilitário para a realização na vivo testes de drogas que depender da via LDLR.
Aqui, nós relatamos um protocolo detalhado, baseado em nosso trabalho recentemente publicado15 para engrafting FH iHeps no fígado do rato/Ldlr– / –/Rag2– / –/Il2rg– / – (LRG). Este rato quimérico fígado humano é útil para a modelagem de FH e realizando testes de droga in vivo.
Estudos anteriores usando iHeps em roedores confirmaram que eles são uma maneira eficaz de estudar doenças hepáticas hereditárias17. Ainda mais expandir o uso dessa tecnologia e modelos animais de FH atuais são suboptimal, nós engrafted FH iHeps em camundongos LRG e mostrou que o engrafted LDLR + /- ou heterozigota LDLR-mutante FH iHeps pode reduzir o nível de LDL-C de plasma de ratos e responder aos hipolipemiantes drogas na vivo.
Exis…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pela ciência de Shenzhen e tecnologia Conselho básico programa de pesquisa (JCYJ20150331142757383), programa de pesquisa de prioridade estratégica da Academia Chinesa de Ciências (XDA16030502), Hong Kong Research Grant Conselho tema com base em pesquisa Esquema (T12-705/11), programa de cooperação do Conselho de bolsas de pesquisa da região administrativa especial de Hong Kong e a Fundação Nacional de ciências naturais da China (12/N-HKU730 e 81261160506), equipe projeto de pesquisa das ciências naturais de Guangdong Fundação (2014A030312001), ciência de Guangzhou e (201607010086), do programa de tecnologia e ciência da província de Guangdong e programa de tecnologia (2016B030229007 e 2017B050506007).
Materials | |||
40 µm Cell strainer | BD | B4-VW-352340 | |
6-Well plate | Thermofisher | 140675 | Extracellular matrix coated |
Accutase | Millipore | SCR005 | |
Acetylcholine | Sigma Aldrich | A6625 | Dissolve in water |
Antigen retrieval solution | IHC World | IW-1100-1L | |
Calcium chloride | Sigma Aldrich | C8106 | CaCl2 |
Cell dissociation enzyme | Thermofisher | 12604-013 | TrypLE |
D-glucose | Sigma Aldrich | D8270 | |
Dimethyl sulfoxide | Sigma Aldrich | D5879 | DMSO |
DMEM | Thermofisher | 10829 | Knockout DMEM |
DNase I | Roche | 11284932001 | |
EDTA | USB | 15694 | 0.5 M, PH=8.0 |
Extracellular matrix (for cell suspension) | Corning | 354234 | Matrigel |
Extracellular matrix (for iHep differentiation) | Corning | 354230 | Matrigel |
Hepatocyte basal medium | Lonza | CC-3199 | |
Hepatocyte culture medium | Lonza | CC-3198 | |
High-fat and high-cholesterol diet | Research Diet | D12079B | |
Human Activin A | Peprotech | 120-14E | |
Human hepatocyte growth factor | Peprotech | 100-39 | |
Human iPSC maintenance medium | STEMCELL Technologies | 5850 | mTeSR1 |
Human oncostatin M | Peprotech | 300-10 | |
Ketamine 10% | Alfasan | N/A | |
L-glutamine | Thermofisher | 35050 | |
LDL-C detection kit | WAKO | 993-00404 and 993-00504 | |
Magnesium chloride | VWR | P25108 | MgCl2 |
Meloxicam | Boehringer Ingelheim | NADA 141-213 | |
Monopotassium phosphate | USB | S20227 | KH2PO4 |
Non-essential amino acids | Thermofisher | 11140 | |
PBS | GE | SH30256.02 | Calcium and magnesium-free |
PCSK9 antibodies | Sanofi and Regeneron Pharmaceuticals | SAR236553/REGN727 | Alirocumab |
Phenobarbital | Alfamedic company | 013003 | |
Phenylephrine | RBI | P-133 | Dissolve in water |
Potassium chloride | Sigma Aldrich | P9333 | KCl |
Povidone-iodine | Mundipharma | Betadine | |
Recombinant mouse Wnt3a | R&D Systems | 1324-WN-500/CF | |
ROCK inhibitor Y27632 | Sigma Aldrich | Y0503-5MG | |
RPMI 1640 | Thermofisher | 21875 | |
Serum replacement | Thermofisher | 10828 | |
Silicone coated petri dish | Dow Corning | Sylgard 184 silicone elastomer kit | |
Simvastatin | Merck Sharp & Dohme | ZOCOR | |
Sodium bicarbonate | Sigma Aldrich | S6297 | NaHCO3 |
Sodium chloride | Sigma Aldrich | S7653 | NaCl |
Trypan blue solution 0.4% | Thermofisher | 15250061 | |
U-46619 | Cayman | 16450 | Dissolve in DMSO |
Xylazine 2% | Alfasan | N/A | |
β-mercaptoethanol | Thermofisher | 31350 | |
Name | Company | Catalog Number | コメント |
Antibodies | |||
AAT | DAKO | A0012 | 1:400 |
ALB | Bethyl Laboratories | A80-129 | 1:200 |
ASGPR | Santa Cruz | Sc-28977 | 1:100 |
HNF4A | Santa Cruz | Sc-6557 | 1:35 |
NANOG | Stemgent | 09-0020 | 1:200 |
OCT4 | Stemgent | 09-0023 | 1:200 |
Name | Company | Catalog Number | コメント |
Mice | |||
Il2rg-/- | Jacson lab | 003174 | |
Ldlr-/- | Jacson lab | 002077 | |
Rag2-/- | Jacson lab | 008449 | |
Name | Company | Catalog Number | コメント |
Equipments | |||
Automated cell counter | Invitrogen | Countess | |
Gamma irradiator | MDS Nordion | Gammacell 3000 Elan II | |
Insulin syringe | BD | 324911 | |
Powerlab | ADInstruments | Model 8/30 | |
Slides scanning system | Leica biosystems | Aperio scanScope system | |
Sliding Microtome | Leica biosystems | RM2125RT | |
Stereomicrocope | Nikon | SMZ800 | |
Tissue processing system | Leica biosystems | ASP200S | |
Wire myograph | DMT | 610M | |
Name | Company | Catalog Number | コメント |
Softwares | |||
Digital slide viewing software | Leica | Aperio ImageScope Version 12.3.2 | |
Image J | NIH | Version 1.51e | |
Image processing software | Adobe | Photoshop CC Version 2015 | |
Microscope imaging software | Carl Zeiss | AxioVision LE Version 4.7 |