הפלסטיות המדהימה של אדריכלות גרעיני נשלטת על ידי מנגנוני epigenetic דינאמי כולל ללא קידוד RNAs, DNA מתילציה, שינוי מיקום נוקלאוזום וכן היסטון הרכב השינוי. כאן נתאר פרוטוקול Formaldehyde-Assisted בידוד של הרגולציה אלמנטים (שלהם) אשר מאפשר קביעת כרומטין נגישות בצורה פשוטה, זולה הדירים.
ביטוי גנים המתאימים בתגובה רמזים חוץ-תאית, כלומר, ספציפיים ברקמות או שושלת ג’ין שעתוק, אנושות תלויה מאוד מוגדרים מצבים של הארגון כרומטין. הארכיטקטורה דינמי של הגרעין נשלטת על ידי מנגנונים מרובים ומעצבת את התוכניות פלט תעתיק. חשוב, לכן לקבוע לוקוס ספציפיים כרומטין נגישות באופן אמין זה רצוי עצמאית של נוגדנים, יכולים להיות מקור מבלבלים פוטנציאל ההשתנות ניסיוני. נגישות כרומטין ניתן למדוד באמצעות שיטות שונות, כולל את הבדיקה Formaldehyde-Assisted בידוד של הרגולציה אלמנטים (שלהם), המאפשרים קביעת כרומטין כללי הנגישות במספר נמוך יחסית של תאים. כאן נתאר פרוטוקול שלהם המאפשר זיהוי פשוטה, אמינה ומהירה של אזורים גנומית עם תפוסה חלבון נמוכה. בשיטה זו, ה-DNA covalently חייב את החלבונים כרומטין באמצעות פורמלין כסוכן crosslinking, לכסנתם לחתיכות קטנות. ה-DNA חופשי לאחר מכן מועשר באמצעות פנול: כלורופורם החילוץ. היחס של ה-DNA חינם נקבעת לפי תגובת שרשרת של פולימראז כמותית (qPCR) או רצף הדנ א (DNA-seq) לעומת דגימת הבקרה המייצג DNA הכולל. האזורים עם מבנה כרומטין רופפת יותר מועשר בדוגמת ה-DNA חינם, ובכך מאפשר זיהוי אזורים גנומית עם דחיסת כרומטין נמוכה יותר.
ה-DNA גנומי של התאים האיקריוטים צמוד גדושות לתוך נוקליאוזומים, אשר צריך להסירו או ועיצבנו מחדש על מנת לאפשר את האינטראקציה של חלבונים אחרים עם ה-DNA. הפעלת גנים ברמת השעתוק של גנים מוביל בדרך כלל תצורה פתוחה יותר של מבנהו nucleosomal, בפרט נוקלאוזום +11, כדי להקל על שעתוק על ידי RNA פולימראז. בנוסף, אזורים רגולטוריות כגון היזמים משפרי עוברים שינויים דינמיים בנגישות כרומטין שלהם כדי לאפשר האינטראקציה עם כרומטין מגבילים או גורמי שעתוק2. מספר גישות פותחו כדי לזהות אזורים אלה ללא נוקלאוזום. אלה כוללים את רגישות nucleases כגון DNase אני3 או נוקלאז micrococcal4, אשר ניתן לגשת רק את ה-DNA כאשר הוא לא כרוך בצורה הדוקה סביב נוקליאוזומים. שיטות אחרות לצורך זיהוי כרומטין פתוח או DNA חינם כוללים בתיווך transposase שילוב של אלמנטים retrotransposable (Assay עבור Transposase-נגיש כרומטין, ATAC)5, או באמצעות immunoprecipitation (ChIP) כרומטין נוגדנים נגד שינויים היסטוניים. השיטה שלהם אינה מבוססת על הקיבולת של אנזים כדי להגיע אל ה-DNA או הכריכה של נוגדן ל חלבון מסוים, אך במקום זה מסתמך על הטיהור של אזורים ללא נוקלאוזום באמצעות פנול: כלורופורם חילוץ6,7. בשיטה זו, ה-DNA covalently נמדד כרומטין חלבונים על ידי הסוכן crosslinking פורמלדהיד, הוא לכסנתם לאחר מכן לחלקים קטנים על ידי sonication. כרומטין אציקלוביר אזורים יהיה crosslinks DNA/חלבון בשפע, ואילו DNA אזורים עם נוקליאוזומים אין או כמה יהיו מעט או ללא מתחמי DNA/חלבון תפור. מיצוי פנול: כלורופורם מאפשר טיהור של הלא-תפור DNA חופשי בשלב מימית, בעוד תפור ה-DNA חלבונים לכידת את שלב אורגנים פנול או מימית-אורגנית לאטמוספרה יחד עם החלבונים. כימות של ה-DNA. חינם זה בהשוואה הפניה של דנ א סה כ מאפשרת זיהוי האזורים חינם כרומטין. השיטה שלהם יכול לשמש עבור אפיון אזורי גנומית בודדים כפי שמתואר כאן, אך מתאים גם הזיהוי של הגנום כולו כרומטין נגישות כאשר מצמידים רצף עמוק כפי שמתואר מודלים שונים8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13. התוצאות המתקבלות על-ידי שלהם-seq ושיטות אחרות כגון האטא ק-seq חופפות במידה רבה14. השיטה שלהם היא מאוד חזקים, זול וקל לבצע שיטה לזיהוי אזורים ללא נוקלאוזום. בניגוד לשיטות אחרות, היא אינה דורשת ניסויים פיילוט כדי לקבוע את מידת העיכול כנדרש nucleases (DNase seq, MNase-seq) או transposases (האטא ק-seq) המתאים, דנו בפירוט סקירה האחרונות15. הפרמטרים היחידים יותאם הם sonication תנאים, במקרים מסוימים הזמן קיבוע. מאמר זה מתאר פרוטוקול פשוטה זה סכמטי מוצגים באיור 1, זה לא דורש שום ציוד מיוחד חוץ sonicator. הפרוטוקול יכול להתבצע תוך זמן קצר יחסית והופך שלהם שיטה קלה ואמינה כדי לבדוק נגישות כרומטין במספר סוגי תאים שונים החל ריאות תאים11 לתאים יסודי המתקבל העכבר כבדי16.
שלהם היא שיטה עמיד וזול המאפשר זיהוי אזורים ללא נוקלאוזום. היא מבוססת על העיקרון כי ה-DNA סביב נוקליאוזומים ניתן בקלות תפור שינויים היסטוניים. מיצוי פנול: כלורופורם משמש כדי להפריד את הלא-תפור ואת שברי DNA נטול חלבון חלבון מכורך הדנ א, אשר נמצא בשלב פנול התחתון והן במידה מסוימת, לאטמוספרה (איור 1). לכן, האזורים ללא נוקלאוזום במדיניותן של השבר של DNA חופשי בשלב מימית. מספר פרסומים לתאר את הפרוטוקולים מפורט של שלהם שיטת23,24,25,26, אשר ניתן להתייעץ עם כדי להשלים את ההליך המתואר כאן.
בדומה לשיטות אחרות כדי לקבוע את הכרומטין, השיטה שלהם גם אנושות תלוי הטיה אופטימלית של ה-DNA. אם השברים ארוכות מדי, בכל אזור נטול נוקלאוזום להיות רעולי פנים על-ידי ה-DNA כרומטין מכורך סמוכים. אם השברים הם קטנים מדי, זיהוי ע י qPCR או רצף עמוק הופך להיות קשה מאוד. מסיבה זו, sonication ה-dna הוא פרמטר קריטי זה חייב להיות מבוקר וממוטב על מנת לקבל שברי סביב 200-300 bp אורך, אשר מייצגים נוקליאוזומים 1-2 (איור 4).
פרמטר נוסף אשר יכולים להשפיע על התוצאה הסופית היא crosslinking המדגם. למרות הנוהל קיבוע המתוארים כאן אינו חוקי עבור רוב שורות תאים, החוקר בקפידה יכול להעריך צעד זה עבור המדגם מסוים שנבחנה, במיוחד בעת שימוש ברקמות, איפה עוד קיבעון פעמים יכול להיות נחוץ לאפשר פורמלדהיד להגיע לתאים כל דגימת הרקמות.
בניגוד לשיטות אחרות, כגון DNase אני נוקלאז micrococcal רגישות יתר, צ’יפ או האטא ק, שלהם אין להסתמך על פעילות אנזימטי או נוגדנים ספציפיים, ולכן הוא אינו צריך טיטור או אופטימיזציה של התנאים התגובה. זה הופך שלהם שיטה אידיאלית כדי למדוד כרומטין נגישות עבור מעבדות עם ניסיון מועט בתחום כרומטין. בנוסף, טייס הניסויים נדרשים רק כדי למטב את השלב חיתוך הדנ א ואת הזמן crosslinking, בעת הצורך.
השיטה פותחה בתחילה שמרים6, אבל זה גם הוארך בתרבית של תאים. דנ א טהור עם השיטה שלהם יכול לשמש עבור רצף עמוק, המאפשר אפיון הגנום כולו המצב כרומטין. זה כבר הוכיח שימושי במספר מחקרים8,9,10,11,12,13,19,27, 28.
תוצאות של ניסויים שלהם-seq יציג החפיפה עם התוצאות המתקבלות על ידי שיטות אחרות כגון DNase-seq14, למרות מתעוררות כמה הבדלים. זאת בשל הבדלים מתודולוגיים לדוגמה נוקליאוזומים רגועה או שופצה עדיין יכול לעכב את המחשוף מאת DNase, בעוד אזורי ה-DNA אלה יהיה פחות נוטה לייצר DNA/חלבון crosslinks, ובכך ייקבע גם ללא נוקלאוזום אזורים באמצעות שלהם9. גם, נוכחותם של חלבונים שאינם-היסטון כגון RNA polymerases או קורא חלבונים עבור סימני epigenetic עלולה לגרום DNA/חלבון crosslinks, ובכך להתפרש וגדוש חלבון אזורים בניסויים שלהם. מגבלות אלה הן הטבועה בכל שיטת מצפני המדינה כרומטין, ובכך מעלה את הצורך להשתמש בשילוב של שיטות שונות להשגת תובנה מקיף.
The authors have nothing to disclose.
המחברים רוצה להודות טילמן Borggrefe (אוניברסיטת Giessen) עבור המכשיר sonication שיתוף בחביבות. העבודה מתוך M.L.S. נתמך על ידי מענקים את פתוח (SCHM 1417/8-3), SFB/TRR81, SFB1021, SFB1213, מצוינות לב-ריאה מערכת האשכולות (ECCPS, סיפורה ה 147/2), של דויטשה Krebshilfe (111447), התוכנית IMPRS-HLR אגודת מקס פלאנק.
Phenol:chloroform:isoamyl alcohol 25:24:1 | Carl Roth | A156.1 | |
Glycogen, 20 mg/ml | Thermo Fisher | R0561 | |
ABsolute QPCR Mix, SYBR-Green, Rox | Thermo Fisher | AB1162B | |
Proteinase K, 20 mg/ml | Thermo Fisher | EO0491 | |
RNase A, 10 mg/ml | Thermo Fisher | EN0531 | |
Leupeptin | Sigma | L8511 | |
Aprotinin | Sigma | A1603 | |
Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) | Sigma | 78830 | |
milliTUBE 1 ml AFA Fiber | Covaris | 520130 | |
Holder milliTUBE 1ml | Covaris | 500371 | |
Covaris S220 Focused-ultrasonicator | Covaris | ||
StepOnePlus Real-Time PCR System | Applied Biosistems | 4376600 |