Мы представляем протокол, который объединяет изоляцию клеток и запись цельноклеточного патч-зажима для измерения электрических свойств первичных диссоциированных эпителиальных клеток из эпидидимидов кауды крысы. Этот протокол позволяет исследовать функциональные свойства первичных эпидидиальных эпидиальных клеток для дальнейшего выяснения физиологической роли эпидидимиса.
Эпидидимис является важным органом для созревания спермы и репродуктивного здоровья. Эпидидиальный эпителий состоит из сложно связанных типов клеток, которые отличаются не только молекулярными и морфологическими особенностями, но и физиологическими свойствами. Эти различия отражают их разнообразные функции, которые вместе создают необходимую микросреду для развития постпикулярных сперматозоидов в эпидидимальном просвете. Понимание биофизических свойств эпидидиальных эпителиальных клеток имеет решающее значение для выявления их функций в области спермы и репродуктивного здоровья как в физиологических, так и в патофизиологических условиях. Хотя их функциональные свойства еще не полностью выяснены, эпидидиальные эпителиальные клетки могут быть изучены с использованием метода патч-зажима, инструмента для измерения клеточных событий и мембранных свойств отдельных клеток. Здесь мы описываем методы изоляции ячеек и записи патч-зажима цельной ячейки в meaЧто электрические свойства первичных диссоциированных эпителиальных клеток из эпидидимидов кауды крысы.
Эпидидимом в мужском репродуктивном тракте является орган, облицованный слоем эпителиальных клеток мозаики. Как и в других эпителиальных тканях, различные клеточные типы эпидидиального эпителия, включая основные клетки, прозрачные клетки, базальные клетки и клетки иммунологических и лимфатических систем, работают согласованным образом, чтобы действовать как барьер на фронте трубочки и как Поддерживающие клетки для созревания спермы и физиологии 1 , 2 , 3 . Таким образом, эти эпителиальные клетки играют важную роль в репродуктивном здоровье.
Эпителиальные клетки, как правило, рассматриваются как невосприимчивые клетки, которые неспособны генерировать все или ничтожные потенциалы действия в ответ на деполяризующие стимулы из-за отсутствия каналов Na + или Ca 2+ с напряжением 4 , 5 . Однако эпителиальные клетки экспрессируют uniНаборов ионных каналов и транспортеров, которые регулируют их специализированные физиологические роли, такие как секреция и транспортировка питательных веществ 6 . Поэтому различные эпителиальные клетки обладают характерными электрическими свойствами. Например, основные клетки экспрессируют CFTR для переноса жидкости и хлора и экспрессируют TRPV6 для реабсорбции кальция, тогда как прозрачные клетки экспрессируют V-АТФазу протонового насоса для люминальной подкисления 1 , 7 , 8 , 9 . Сообщалось о некоторых перевозчиках и ионных каналах, которые регулируют физиологические особенности эпидиальных эпителиальных клеток, но функциональные свойства эпидиальных эпидиальных клеток в значительной степени еще не поняты 10 , 11 , 12 , 13 .
белыйOle-cell patch-clamp – это хорошо зарекомендовавший себя метод для изучения внутренних свойств как возбудимых, так и невосприимчивых клеток, и особенно полезен для изучения функций прежде всего диссоциированных клеток в образцах гетерогенных клеток; Напряжение-зажим используется для измерения пассивных свойств мембраны и ионных токов отдельных ячеек 14 , 15 . Пассивные свойства мембраны включают входное сопротивление и емкость. Первый параметр указывает на внутреннюю проводимость мембраны, в то время как последняя подразумевает площадь поверхности клеточной мембраны (фосфолипидный бислой, где расположены ионные каналы и транспортеры, который служит в качестве тонкого изолятора, разделяющего внеклеточные и внутриклеточные среды). Мембранная емкость прямо пропорциональна площади поверхности клеточной мембраны. Вместе с сопротивлением мембраны, отражаемым входным сопротивлением, постоянная времени мембраны, wПоказывает, насколько быстро потенциал клеточной мембраны реагирует на поток токов ионного канала, можно определить. В связи с этим, комбинируя текущие характеристики отклика от серии этапов напряжения, применяемых к клеткам, определяются биофизическая кинетика и свойства клеток 15 , 16 , 17 , 18 .
В настоящей статье мы описываем процедуры выделения эпителиальных клеток из эпидидимиса кауды крысы и шаги для измерения мембранных свойств различных типов клеток в диссоциированной клеточной смеси с использованием цельноклеточного пластыря. Мы показываем, что основные эпидидимальные клетки проявляют отличные мембранные электрофизиологические свойства и что проводимости можно легко идентифицировать из других типов клеток.
В этом протоколе ферментативная дисперсия эпидидимидов кауды крысы последовательно давала здоровые эпителиальные клетки. Качество эпидидиальных эпителиальных клеток для экспериментов с патч-зажимами зависит от нескольких критических шагов в протоколе. Например, центрифугирование…
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим доктора Кристофера Антоса за полезные комментарии к тексту. Эта работа была поддержана начальным финансированием Университета Шанхая, присужденным Винни Шум, и финансированием Национального фонда естественных наук Китая (NNSFC № 31471370).
Instrument of AXON system | |||
Computer controlled amplifier | Molecular Devices – Axon | Multiclamp 700B patch-clamp amplifier | |
Digital Acquisition system | Molecular Devices – Axon | Digidata 1550 converter | |
Microscope | Olympus | BX-61WI | |
Micromanipulator | Sutter Instruments | MPC-325 | |
Recording chamber and in-line Heater | Warner Instruments | TC-324C | |
Instrument of HEKA system | |||
Patch Clamp amplifier | Harvard Bioscience – HEKA | EPC-10 USB double | |
Microscope | Olympus | IX73 | |
Micromanipulator | Sutter Instruments | MPC-325 | |
Recording chamber and in-line Heater | Warner Instruments | TC-324C | |
Other Instrument | |||
Micropipette Puller | Sutter Instrument | P-1000 | |
Recording Chamber | Warner Instruments | RC-26G or homemade chamber | |
Borosilicate capillary glass with filament | Sutter Instrument / Harvard Apparatus | BF150-86-10 | |
Vibration isolation table | TMC | 63544 | |
Digital Camare | HAMAMASTU | ORCA-Flash4.0 V2 C11440-22CU | |
Reagents for isolation | |||
RPMI 1640 medium | Gibco | 22400089 | |
Penicillin/Streptomycin | Gibca | 15140112 | |
IMDM | ATCC | 30-2005 | |
IMDM | Gibco | C12440500BT | |
Collagenase I | Sigma | C0130 | |
Collagenase II | Sigma | C6885 | |
5-α-dihydrotestosterone | Medchemexpress | HY-A0120 | |
Fetal bovine serum | capricorn | FBS-12A | |
Micropipette internal solutions (K+-based solution) (pH 7.2, 280-295 mOsm) | |||
KCl, 35mM | Sigma/various | V900068 | |
MgCl2 · 6H2O, 2mM | Sigma/various | M2393 | |
EGTA, 0.1mM | Sigma/various | E4378 | |
HEPES, 10mM | Sigma/various | V900477 | |
K-gluconate, 100mM | Sigma/various | P-1847 | |
Mg-ATP, 3mM | Sigma/Various | A9187 | |
The standard external recording physiological salt solution (PSS) (pH 7.4, 300-310 mOsm) | |||
NaCl, 140mM | Sigma/various | V900058 | |
KCl, 4.7mM | Sigma/various | V900068 | |
CaCl2, 2.5mM | Sigma/various | V900266 | |
MgCl2 · 6H2O, 1.2mM | Sigma/various | M2393 | |
NaH2PO4, 1.2mM | Sigma/various | V900060 | |
HEPES, 10mM | Sigma/various | V900477 | |
Glucose, 10mM | Sigma/various | V900392 | |
For pH adjustment | |||
NaOH | Sigma/various | V900797 | Purity >=97% |
KOH | Sigma/various | 60371 | Purity >=99.99% |